Name: Una identificación basada en redes neuronal desarrollo competentes o incompetentes adulto de ovocitos de ratón (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-03-03T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 4 s
Description: Aprende a identificar ovocitos competentes en ratón mediante imagen de lapso de tiempo y velocimetría de partículas con redes neuronales. Este método no invasivo evalúa el potencial de desarrollo gamético en tiempo real.

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Este trabajo fue hecho posible gracias al apoyo de: Universidad de Pavia RFA 2016; Universidad de Parma FIL 2014, 2016; y Kinesis para el suministro de los recipientes de plástico necesario para llevar a cabo este estudio. Agradecemos al Dr. Shane Windsor (Facultad de ingeniería, Universidad de Bristol, Reino Unido) para proporcionar el software de Cell_PIV.

Todos los procedimientos que involucran animales fueron aprobados por el institucional Animal cuidado uso y comités de ética en la Universidad de Pavía. Animales fueron mantenidos bajo condiciones de 22 ° C, 60% de humedad y un ciclo de luz/oscuridad de 12:12 h.
1 aislamiento de ovario
<ol><li>Inyectar por vía intraperitoneal 2 cuatro a once semanas de edad CD1 ratones femeninos con 10 U de hormona folículo estimulante con una jeringa de insulina de 1 mL estériles.</li>
	<li>Espere 46-48 h.</li>
	<li>Peso del ratón y anestesiar con una inyección intramuscular de 50 mg/kg de Zoletil (Tiletamina y clorhidrato de cloridrate). Eutanasia por dislocación cervical.</li>
	<li>Sujete la piel que cubre la pared abdominal usando un par de pinzas de disección. Cortar la piel y la pared del cuerpo con un par de tijeras y abra la incisión con unas pinzas.</li>
	<li>Usando un par de pinzas, mueva las tripas a un lado, ubicar los cuernos uterinos y localización los ovarios en su extremidad.</li>
	<li>Suavemente Sujete el ovario con unas pinzas de relojero y utilice tijeras para cortar su ligamento del útero. Repita con el otro ovario.</li>
	<li>Transferir los ovarios recogidos en una célula de 35 mm cultura de Petri que contenga 1 mL de medio de aislamiento M2 pre-calentado a 37 ° C, 5% CO2 en aire.</li>
	<li>Retire la grasa y el oviducto con unas tijeras finas bajo un estereomicroscopio.</li>
</ol>2. aislamiento de Cumulus ovocito complejos
<ol><li>Perfore la superficie ovárica con pinza estéril y una aguja de insulina estéril de 1G hasta que pasivamente se liberan complejos de ovocito cumulus antral (AOC).</li>
	<li>Recoger los AOC con más de tres capas de células del cúmulo utilizando una controlado de boca tiró mano Pasteur micropipeta (200 μm de diámetro) y transferirlos en una caída de 300 μL de medio fresco M2.</li>
	<li>Eliminar las células del cúmulo que rodean los ovocitos utilizando una micropipeta Pasteur estirados a mano (a 80 μm de diámetro) transfiriendo suavemente hacia adentro y hacia afuera durante unos segundos,</li>
	<li>Repetidamente transferencia de ovocitos de una gota de 20 μl de medio de M2 a otro, hasta que las células del cúmulo se eliminan totalmente.</li>
</ol>3. cromatina ovocitaria basado en la organización clasificación
<ol><li>Preparar la solución de tinción de Hoechst 33342 a una concentración final de 0.05 μg/mL en M2 medio a partir de una solución madre de 5 mg/mL diluido en PBS 1 x.</li>
	<li>Ponga 3,5 μl micro gotas de solución en la parte inferior de una tapa de caja Petri de 35 mm de la tinción de Hoechst.</li>
	<li>Transferir cada ovocito solo en una gota de tinción de Hoechst, coloque el plato en un plato de calentamiento precalentado (37 ° C) y cubrirla con una tapa oscura para evitar la exposición de luz.</li>
	<li>Después de 10 min de incubación a temperatura ambiente, observar los ovocitos con un microscopio de fluorescencia con 10 aumentos bajo luz UV (330-385 nm), para no más de 1-2 s.</li>
	<li>Clasifican los ovocitos como un nucleolo rodeado (SN) (figura 1A), si presentan un anillo de cromatina de Hoechst-positivo que rodea al nucleolo.</li>
	<li>Clasifican los ovocitos como un nucleolo no rodeado (NSN), si su nucleolo no está rodeado de cromatina de Hoechst-positivo y muestra la dispersión heterochromatic puntos dentro del núcleo (figura 1B).</li>
</ol>4. clasificación de ovocitos neuronal basado en la red
<ol><li>Preparar cuatro gotas de medio de α-MEM suplementado con 5% suero bovino fetal inactivado con calor, 2 mM L-glutamina, taurina de 5 mM, 100 U/mL penicilina, estreptomicina μg/mL 75 y piruvato de sodio μg/μl 23.5 en un vaso de 35 mm de 2 μl inferior placa de Petri y cúbralos con precalentado (37 ° C) y pre equilibrado aceite mineral para evitar la evaporación media. Nota: Si utiliza un sistema de detección de células vivo, mantener las gotas en una distancia específica utilizando una cuadrícula dibujada de 7 mm x 7 mm como guía.</li>
	<li>Transferencia de 3 - 4 ovocitos a cada gota.</li>
	<li>Coloque la parte inferior de cristal plato de Petri en un sistema vivo de la célula de proyección, equipado con software de grabación Time-lapse (véase Tabla de materiales), que permite la observación de la maduración de ovocitos en un ambiente con temperatura estable (37 º C) y CO2 concentración (5%).</li>
	<li>Abra el software de grabación Time-lapse. En la pantalla aparece una ventana con un tiro directo de los ovocitos en el lado izquierdo y todos los botones de configuración en el lado derecho.</li>
	<li>Seleccione el centro de los ovocitos para colocar en el centro de la pantalla. Ajustar el foco si es necesario.</li>
	<li>Seleccione el botón de Ph y ajustar el Diámetro de la lámpara a 192; el tiempo de exposición a 1/125 s; la ganancia a 1.99; y la resolución de 1600 x 1200.</li>
	<li>Seleccione FL2 y ajuste el Diámetro de la lámpara a 5; el tiempo de exposición a 3 s; la ganancia a 2,37; y la resolución de 1600 x 1200.</li>
	<li>Seleccione el botón nuevo punto para grabar la posición del ovocito en la caída de la cultura. Repita la misma rutina para cada ovocito en la caída de la cultura.</li>
	<li>Seleccionar el tiempo y establezca el ciclo de adquisición 8 min y el Tiempo Total de 15 h.</li>
	<li>Seleccione Start Time-lapse para iniciar el ciclo de grabación.</li>
	<li>Abra el software MATLAB y escribir >>cell_piv; y luego seleccione la Herramienta de PIV.</li>
	<li>Elija la carpeta que contiene la película grabada y seleccionar cualquiera de los archivos .jpeg para cargar la secuencia de toda la imagen. Para cada ovocito, seleccione la región de interés (ROI) haciendo clic en el desplegable Seleccione la herramienta área.</li>
	<li>Seleccione Proceso PIV en el menú archivo. Seleccione el botón de la Herramienta Visor . Nota: El programa calcula los vectores de velocidad en el retorno de la inversión y produce automáticamente un archivo de datos, guardado como un archivo MAT.</li>
	<li>Seleccione el archivo .MTL para abrir. Seleccione el botón herramienta seleccionar ROI y dibuje un círculo alrededor del contorno de los ovocitos. En el menú Archivo, haga clic en guardar. Nota: Ahora se muestran los vectores de esta región y los datos de magnitud media en la ventana de gráfico actualizan para este nuevo retorno de la inversión.</li>
	<li>Abierto los datos de magnitud media recogidos de los cuadros todo Time-lapse graban en una hoja de cálculo, con, en las filas, la secuencia de Marcos y, en las columnas, cada ovocito solo analizado.</li>
	<li>Organizar los datos de ovocitos NSN y SN en 10 subgrupos.</li>
	<li>Utilizar 9 subgrupos para entrenar la red neuronal artificial de feed-forward iterativamente (FANN) y 1 subgrupo para la prueba ciega.<ol>
<li>Otro repita 9 veces, cambiar la muestra de prueba ciega (validación cruzada 10 veces).</li>
	</ol>
</li>
	<li>Abrir MATLAB, ejecutar el script a medida principal y, bajo pedido, introduzca el nombre del archivo con los datos del entrenamiento (train.txt), el número de ovocitos NSN y SN utilizado para que la formación y el lapso de tiempo intervalo a analizar (por lo general, de marco # 1-2 a # 112-113).</li>
	<li>Presione entrar para realizar el entrenamiento.</li>
	<li>Introduzca el nombre del archivo con los datos de prueba (test.txt).</li>
	<li>Abra el test_outputs_cyt del vector en espacio de trabajo MATLAB. Nota: Aparecerá una ventana en la pantalla que muestra, en la primera fila, la probabilidad de obtener verdaderos positivos (TP o verdadero NSN) y falsos positivos (FP o NSN falsos) de ovocitos NSN y SN, respectivamente; en cambio, en la segunda fila, la probabilidad de obtener falsos negativos (FN o SN falsas) y verdaderos negativos (TN o SN verdadero) de ovocitos NSN y SN, respectivamente.</li>
	<li>Utilice la fórmula: (TP+TN)/(TP+FP+FN+TN), para calcular la exactitud FANN, expresada como un porcentaje.</li>
</ol>

<ol><li>Patrizio, P., Fragouli, E., Bianchi, V., Borini, A., Wells, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+methods+for+selection+of+the+ideal+oocyte%5BTitle%5D)+AND+%22Reprod.+Biomed.+Online%22%5BJournal%5D)">Molecular methods for selection of the ideal oocyte.</a> Reprod. Biomed. Online. 15 (3), 346-353 (2007).</li>
<li>Rienzi, L., Vajta, G., Ubaldi, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Predictive+value+of+oocyte+morphology+in+human+IVF%3A+a+systematic+review+of+the+literature%5BTitle%5D)+AND+%22Human.+Reprod.+Update%22%5BJournal%5D)">Predictive value of oocyte morphology in human IVF: a systematic review of the literature.</a> Human. Reprod. Update. 17 (1), 34-35 (2011).</li>
<li>Tan, J. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chromatin+configurations+in+the+germinal+vesicle+of+mammalian+oocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Hum.+Reprod%22%5BJournal%5D)">Chromatin configurations in the germinal vesicle of mammalian oocytes.</a> Mol. Hum. Reprod. 15 (1), 1-9 (2009).</li>
<li>Vigone, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcriptome+based+identification+of+mouse+cumulus+cell+markers+that+predict+the+developmental+competence+of+their+enclosed+antral+oocytes%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Genomics%22%5BJournal%5D)">Transcriptome based identification of mouse cumulus cell markers that predict the developmental competence of their enclosed antral oocytes.</a> BMC Genomics. 14, 380(2013).</li>
<li>Bui, T. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cytoplasmic+movement+profiles+of+mouse+surrounding+nucleolus+and+not-surrounding+nucleolus+antral+oocytes+during+meiotic+resumption%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Reprod.+Dev%22%5BJournal%5D)">Cytoplasmic movement profiles of mouse surrounding nucleolus and not-surrounding nucleolus antral oocytes during meiotic resumption.</a> Mol. Reprod. Dev. 84 (5), 356-362 (2017).</li>
<li>Zuccotti, M., Piccinelli, A., Giorgi Rossi, P., Garagna, S., Redi, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chromatin+organization+during+mouse+oocyte+growth%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Reprod.+Dev%22%5BJournal%5D)">Chromatin organization during mouse oocyte growth.</a> Mol. Reprod. Dev. 41 (4), 479-485 (1995).</li>
<li>Zuccotti, M., Garagna, S., Merico, V., Monti, M., Redi, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chromatin+organisation+and+nuclear+architecture+in+growing+mouse+oocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Cell.+Endocrinol%22%5BJournal%5D)">Chromatin organisation and nuclear architecture in growing mouse oocytes.</a> Mol. Cell. Endocrinol. 234 (1-2), 11-17 (2005).</li>
<li>Zuccotti, M., Merico, V., Cecconi, S., Redi, C. A., Garagna, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((What+does+it+take+to+make+a+developmentally+competent+mammalian+egg%3F%5BTitle%5D)+AND+%22Hum.+Reprod.+Update%22%5BJournal%5D)">What does it take to make a developmentally competent mammalian egg?</a> Hum. Reprod. Update. 17 (4), 525-540 (2011).</li>
<li>Inoue, A., Nakajima, R., Nagata, M., Aoki, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contribution+of+the+oocyte+nucleus+and+cytoplasm+to+the+determination+of+meiotic+and+developmental+competence+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Hum.+Reprod%22%5BJournal%5D)">Contribution of the oocyte nucleus and cytoplasm to the determination of meiotic and developmental competence in mice.</a> Hum. Reprod. 23 (6), 1377-1384 (2008).</li>
<li>Ajduk, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rhythmic+actomyosin-driven+contractions+induced+by+sperm+entry+predict+mammalian+embryo+viability%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Commun%22%5BJournal%5D)">Rhythmic actomyosin-driven contractions induced by sperm entry predict mammalian embryo viability.</a> Nat. Commun. 2, 417(2011).</li>
<li>Swann, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phospholipase+C-%CE%B6-induced+Ca2%2B+oscillations+cause+coincident+cytoplasmic+movements+in+human+oocytes+that+failed+to+fertilize+after+intracytoplasmic+sperm+injection%5BTitle%5D)+AND+%22Fertil.+Steril%22%5BJournal%5D)">Phospholipase C-ζ-induced Ca2+ oscillations cause coincident cytoplasmic movements in human oocytes that failed to fertilize after intracytoplasmic sperm injection.</a> Fertil. Steril. 97 (3), 742-747 (2012).</li>
<li>Thakur, A., Mishra, V., Jain, S. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Feed+forward+artificial+neural+network%3A+tool+for+early+detection+of+ovarian+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Sci.+Pharm%22%5BJournal%5D)">Feed forward artificial neural network: tool for early detection of ovarian cancer.</a> Sci. Pharm. 79 (3), 493-505 (2011).</li>
<li>Laudani, A., Lozito, G. M., Riganti Fulginei, F., Salvini, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((On+Training+Efficiency+and+Computational+Costs+of+a+Feed+Forward+Neural+Network%3A+A+Review%5BTitle%5D)+AND+%22Comput.+Intell.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">On Training Efficiency and Computational Costs of a Feed Forward Neural Network: A Review.</a> Comput. Intell. Neurosci. 2015, 818243(2015).</li>
</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

Hay varios pasos críticos uno debe cuidar al realizar este protocolo con ovocitos de ratón, así como con los de otras especies. Una vez aisladas de sus folículos, ovocitos deben ser transferidos inmediatamente en las gotas de la grabación, como la separación de la cumulus compañero células activa el inicio de la transición de la GV para MII. Una posible modificación en el presente Protocolo podría ser la adición de 3-isobutil-1-metilxantina (IBMX) M2 medio utilizado para el aislamiento de los AOC. IBMX evita la activació...

Infertilidad femenina es una patología que afecta a un número creciente de mujeres. Según la Organización Mundial de la salud, 20% de las parejas son infértil, con un 40% debido a la infertilidad femenina. Además, un tercio de las mujeres sometidas a tratamientos contra el cáncer (300.000/año y 30.000 al año en Estados Unidos o Italia, respectivamente) desarrollar falla ovárica prematura.
Una estrategia para prevenir la infertilidad en pacientes con cáncer es el aislamiento y criopreservación de los folículos ováricos antes del tratamiento oncológico, seguido de maduración en vitro (MIV) de ovocitos GV a la etapa MII (transición de GV a MII). La disponibilidad de marcadores no invasivos de competencia desarrollo de ovocitos mejoraría a la fertilización y procesos de desarrollo y el éxito embarazo general1,2.
En función de su configuración de cromatina observada después de la tinción con el fluorocromo supravital Hoechst 33342, mamíferos adulto ovocitos se clasifican ya sea como un nucleolo rodeado (SN) o un nucleolo no rodeado (NSN)3. Además de su organización de la cromatina diferentes, estos dos tipos de ovocitos Mostrar muchas diferencias morfológicas y funcionales3,4,5,6,7,8 ,9, incluyendo su competencia meiótica y de desarrollo. Cuando aislado el ovario y madurado en vitro, tipo de ovocitos alcance la etapa MII y después de la inseminación de esperma, desarrollar a la fase de 2 células, pero sólo aquellos con una organización de la cromatina de SN pueden desarrollar a plazo9. Aunque bueno como un método de clasificación de selección competente vs incompetente ovocitos, el principal inconveniente es el efecto mutagénico que el fluorocromo sí mismo y, sobre todo, la luz UV utilizada para su detección podrían tener en las células.
Por todas estas razones, hemos buscado otros marcadores no invasivos asociados a la conformación de la cromatina SN o NSN que podría sustituir el uso de Hoechst manteniendo la misma precisión de clasificación alta. La observación de Time-lapse de las velocidades de movimiento citoplásmico (CMVs) está emergiendo como una característica distintiva del estado de la célula. Por ejemplo, estudios recientes demostraron que la asociación entre CMVs grabado en el momento de la fecundación y la capacidad del ratón y cigotos humanos preimplantacional completo y termino desarrollo10,11.
Basado en estos estudios anteriores, Describimos aquí una plataforma para el reconocimiento de desarrollo competente o incompetente ratón adulto ovocitos5,6,7,8. La plataforma se basa en tres pasos principales: 1) ovocitos de folículos antrales en primer lugar se clasifican en función de su configuración de cromatina ya sea como un nucleolo rodeado (SN) o un nucleolo rodeado no (NSN); 2) imágenes Time-lapse de CMVs que ocurren durante la transición de la GV a MII de cada ovocito solo se toman y analizan con partículas imagen velocimetry (PIV); y 3) se analizaron los datos obtenidos con PIV con un Feed-forward Artificial Neural Network (FANN) clasificación ciega12,13. Nos dan detalles de los pasos más críticos del procedimiento diseñado para que el ratón que esté listo para ser probado y utilizado por otras especies de mamíferos (p. ej., bovinos, monos y seres humanos).

<table><tbody><tr><td>Folligon</td><td>Intervet</td><td>A201A02</td><td>Tratamiento hormonal</td></tr><tr><td>Hoechst 33342&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>B2261</td><td>Para la tinción de heterocromatina de ovocitos</td></tr><tr><td>Cultivo celular Placa de Petri 35 mm x 10 mm&nbsp;</td><td>Corning&nbsp;</td><td>430165</td><td>Para el aislamiento de AOC</td></tr><tr><td>EmbryoMax M2 Medio (1X), Líquido, con rojo fenol</td><td>Merck-Millipore</td><td>MR-015-D</td><td>Para el aislamiento de AOC</td></tr><tr><td>Medio MEM Alpha (1X) + Glutamax&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M4526</td><td>Para la maduración in vitro de ovocitos</td></tr><tr><td>Cultivo celular Placa de Petri de 35 mm con fondo de vidrio&nbsp;</td><td>WillCo&nbsp;</td><td>GWSt-3522</td><td>Para experimentos de imagen BioStation</td></tr><tr><td>IM-LM&nbsp;</td>Sistema de cribado de células <td>vivas</td><td>Nikon MFA91001</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>Pipeta Pasteur</td><td>Delchimica Scientific Glassware</td><td>6709230</td><td>Para la manipulación de folículos</td></tr><tr><td>Aceite mineral</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M8410</td><td>Para prevenir la contaminación y la evaporación del medio</td></tr><tr><td>Penicilina / Estreptomicina</td><td>Life Technologies</td><td>15070063</td><td>Para prevenir la contaminación del medio&nbsp;</td></tr><tr><td>Suero fetal bovino (FBS)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>ML16141079</td><td>Para el maquillaje y alfa; MEM medio&nbsp;</td></tr><tr><td>L-Glutamina&nbsp;</td><td>Life Technologies</td><td>25030</td><td>Para el maquillaje y alfa; MEM medio&nbsp;</td></tr><tr><td>Taurina</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T0625</td><td>Para maquillaje y alfa; MEM medio&nbsp;</td></tr><tr><td>Albúmina sérica bovina (BSA)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A3310</td><td>Para maquillaje y alfa; Medios MEM</td></tr><tr><td>Piruvato de sodio&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>&nbsp; P4562</td><td>Para confeccionar y alfa; Medios MEM</td></tr><tr><td>Zoletil (Tiletamina y Zolazepan cloridrato)</td><td>Virbac Srl QN01AX9</td><td></td><td>Para ratones anestesia</td></tr><tr><td>Cell_PIV software&nbsp;</td><td>Amablemente proporcionado por el Dr. Shane Windsor, Universidad de Bristol, Reino Unido</td><td>&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;-</td><td>&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;-</td></tr><tr><td>MATLAB</td><td>The MathWorks, Natick, MA&nbsp;</td><td>&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp;-</td><td>Para computación numérica multiparadigma</td></tr></tbody></table>

una identificación basada en redes neuronal desarrollo competentes o incompetentes adulto de ovocitos de ratón

A Neural Network-Based Identification of Developmentally Competent or Incompetent Mouse Fully-Grown Oocytes

Clínicas de infertilidad se beneficiarían de la capacidad para seleccionar al desarrollo competente vs incompetente ovocitos utilizando procedimientos no invasivos, mejorando así el resultado general del embarazo. Recientemente se desarrolló un método de clasificación basado en observaciones energizados microscopio de ovocitos de ratón durante su maduración en vitro de la vesícula germinal (VG) a la etapa de metafase II, seguida por el análisis de los movimientos citoplasmáticos que ocurre durante este período de lapso de tiempo. Aquí, presentamos protocolos detallados de este procedimiento. Ovocitos son aislados folículos antrales adulto y cultivados durante 15 h dentro de un microscopio equipado para Time-lapse análisis a 37 ° C y 5% CO2. Los cuadros son tomados a intervalos de 8 minutos. Las imágenes son analizadas utilizando el método de imagen de partícula Velocimetry (PIV) que calcula, para cada ovocito, el perfil de velocidades de movimiento citoplásmico (CMVs) que ocurren durante el período de la cultura. Por último, CMVs de cada ovocito solo son alimentados a través de una herramienta de clasificación matemática (red neuronal Artificial de Feed-forward, FANN), que predice la probabilidad de que un gameto al desarrollo competente o incompetente con una precisión de 91.03%. Este protocolo, configurar el ratón, ahora podría ser probado en ovocitos de otras especies, incluyendo a seres humanos.

La figura 2 muestra una representativa ovocitos desarrollo competentes e incompetentes, respectivamente al principio (GV) y al final (MII) del procedimiento IVM. MIV de ovocitos de ratón adulto ocurre en el cultivo de 15 h. La observación de Time-lapse registra la progresión de la meiosis y detecta grandes acontecimientos meiotic, incluyendo la GVBD y la extrusión del primer cuerpo polar.
El análisi...

Aquí, presentamos un protocolo para la evaluación no invasiva de competencia desarrollo de oocito durante su maduración en vitro de la vesícula germinal a la etapa de metafase II. Este método combina la proyección de imagen de Time-lapse con partículas imagen velocimetry (PIV) y análisis de redes neuronales.

Una identificación basada en redes neuronal desarrollo competentes o incompetentes adulto de ovocitos de ratón

Infertility clinics would benefit from the ability to select developmentally competent vs. incompetent oocytes using non-invasive procedures, thus ...

El objetivo general de este procedimiento es la identificación de occitos con capacidad de desarrollo posterior mediante una herramienta no invasiva. La principal ventaja de este método es que con la simple observación de los movimientos de los ovocitos que se producen durante la maduración in vitro, se puede evaluar el potencial de desarrollo de los gametos femeninos. Esta técnica se basa en la obtención de imágenes de lapso de tiempo junto con la velocimetría de imágenes de partículas, un análisis basado en redes neuronales.Aquí, describiremos los pasos tomados para demostrar que los ovocitos de ratón durante la transición de la etapa vesical germinal a la metafase dos, muestran un perfil diferente de dichos movimientos plásmicos significativamente correlacionados con su competencia o incompetencia en el desarrollo. Según la Organización Mundial de la Salud, la infertilidad es una patología que afecta a alrededor del 20 por ciento de las parejas y, además, un tercio de las mujeres que se someten a un tratamiento contra el cáncer corren el riesgo de sufrir una insuficiencia ovárica prematura. Esto corresponde a unas 300.000 o 30.000 mujeres en países como Estados Unidos o Italia,

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Research

Investigación

JoVE Journal

Developmental Biology

Biología del Desarrollo

Los ovocitos son propensos a la aneuploidía debido a errores en la segregación cromosómica durante la maduración meiótica. Huevos aneuploides puede causar infertilidad, abortos involuntarios o trastornos del desarrollo como el síndrome de Down. Aquí se describen los métodos para introducir los materiales de elección en los ovocitos y los métodos para estudiar la maduración meiótica y evaluar la ploidía.

La microinyección de ovocitos de ratón, Maduración y Evaluación de ploidía

Aquí se presenta un protocolo para la caracterización de los ovocitos antrales ratón sobre la base de la organización nucleolar.

Aislamiento y caracterización de ratón antral Los ovocitos Sobre la base de organización de la cromatina nucleolar

Como las variantes genéticas asociadas con enfermedades humanas empiezan a ser descubierto, se está convirtiendo en cada vez más importante para el desarrollo de sistemas con los que evaluar rápidamente la importancia biológica de las variantes identificadas. Este protocolo describe los métodos para evaluar la función del gen humano durante la meiosis femenina utilizando ovocitos de ratón.

Uso de ovocitos de ratón para evaluar la función humana del Gene durante la Meiosis I

Cultivos de tejido ováricos se puede utilizar como modelos de la atresia de desarrollo, la ovulación y el folículo folículo e indicar mecanismos reguladores de procesos dinámicos de ovarianos.

Cultivo de tejido ovárico para visualizar fenómenos en ovario de ratón

Aquí, describimos, comparamos, y ponemos en contraste dos diversas técnicas para la cuenta exacta del folículo de tejidos ováricos fijos del ratón.

Enumeración exacta del folículo en ovarios adultos del ratón

Aquí, presentamos un protocolo optimizado para obtener imágenes de ovarios enteros para análisis cuantitativos y cualitativos utilizando inmunotinción de montaje completo, microscopía multifotónica y visualización y análisis 3D. Este protocolo se adapta al procesamiento de alto rendimiento, confiable y repetible que es aplicable para toxicología, diagnóstico clínico y ensayos genómicos de la función ovárica.

Inmunofluorescencia de ovario completo, limpieza y microscopía multifotónica para el análisis cuantitativo en 3D de la reserva ovárica en desarrollo en ratones

El error en la segregación cromosómica es una característica común en los ovocitos. Por lo tanto, estudiar el punto de control de ensamblaje del husillo da pistas importantes sobre los mecanismos necesarios para producir óvulos sanos. El presente protocolo describe tres ensayos complementarios para evaluar la integridad del punto de control del ensamblaje del huso en ovocitos de ratón.

Evaluación de la integridad del punto de control del ensamblaje del husillo en ovocitos de ratón

Los errores meióticos en las sinapsis y la recombinación son comunes en los ovocitos de mamíferos. El análisis riguroso de las proteínas involucradas en estos procesos es esencial para comprender cómo y por qué la ovogénesis a menudo sale mal. Las técnicas aquí presentadas permiten un seguimiento exhaustivo de la recombinación y las sinapsis para evaluar la calidad de los ovocitos en ratones.

Preparación de distribuciones de cromosomas meióticos de ovocitos de ratón para la evaluación de la sinapsis y la recombinación

Este protocolo describe procedimientos para la maduración in vitro de ovocitos de ratón, la fertilización in vitro y el posterior cultivo embrionario hasta la etapa de blastocisto.

Maduración in vitro, fertilización y cultivo de embriones preimplantacionales de ovocitos de ratón

Este protocolo describe en detalle el método para generar progenitores neurales a partir de células madre embrionarias utilizando un método de monocapa sin suero. Estos progenitores se pueden utilizar para derivar tipos de células neuronales maduras o para estudiar el proceso de especificación neuronal y son susceptibles de escalado en formato multipocillo para el cribado de compuestos.

Diferenciación neural de células madre embrionarias de ratón en el suero libre de monocapa Cultura

Aprende a identificar ovocitos competentes en ratón mediante imagen de lapso de tiempo y velocimetría de partículas con redes neuronales. Este método no invasivo evalúa el potencial de desarrollo gamético en tiempo real.

Una identificación basada en redes neuronal desarrollo competentes o incompetentes adulto de ovocitos de ratón

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