Name: Un método para el trasplante de islotes pancreáticos para el epiplón en ratón (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-01-07T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 25 s
Description: Aprende el trasplante de islotes pancreáticos al epiplón en ratones diabéticos usando hidrogel. Este método evalúa la viabilidad de los islotes y monitorea los niveles de glucosa para avanzar en terapias contra la diabetes tipo I.

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Algunos de los autores de este trabajo fueron apoyadas en parte por subvenciones de nacional clave de R & D programa de China (2017YFC1103704), proyecto de Sanming de medicina en Shenzhen (SZSM201412020), Fondo para el alto nivel médico disciplina construcción de Shenzhen (2016031638), Shenzhen Fundación de ciencia y tecnología (JCJY20160229204849975, GJHZ20170314171357556, JCYJ20160425110110658), Fundación de Shenzhen de la Comisión de salud y planificación familiar (SZXJ2017021).

Todos los ratones utilizados en este estudio se obtuvieron en el Animal Medical Center de Guangdong Provincia. El uso de los animales fue aprobado por Hospital de la ética informe Comité de Shenzhen segunda personas, conforme a los principios del bienestar animal.
1. islote trasplante para el epiplón
Nota: Este protocolo requiere 2 personas para llevar a cabo.
<ol><li>Ensamble de materiales quirúrgicos que se enumeran en la tabla 1. Preparar campo aséptico en área con material estéril, tales como cortinas y materiales desechables y mantener condiciones de asepsia en cirugía. Esterilizar todos los instrumentos quirúrgicos. Usar batas estériles.</li>
	<li>Escoge los islotes usando una punta de pipeta de 200 μL bajo el estereomicroscopio. Cada ratón recibirá 450 – 500 islote equivalente (IEQ) por tansplant. Para cada animal, coloque suficiente islotes para un trasplante solo en un tubo de 1,5 mL estéril snap-top con 100 μl de medio CMRL 1066. Nota: Islotes pueden ser aislados en el día del trasplante, pero es mejor aislarlos del día anterior para permitir la recuperación para el proceso de aislamiento.</li>
	<li>Mantenga los tubos de la encajar a presión-tapa con islotes de hielo hasta el momento del trasplante.</li>
	<li>Descongelar el hidrogel de matriz de la membrana del sótano y mantenerlo en hielo después de haberlo sacado del congelador de-20 ° C. El hidrogel es líquido a 4 ° C a 10 ° C y se solidifica en temperaturas más altas.</li>
	<li>Pesar y etiquetar todos los ratones receptores diabéticos. Inyectar el pentobarbital sódico de 60 mg/kg por vía intraperitoneal. Prueba de la profundidad de la anestesia mediante la administración de un pellizco del dedo del pie. Dar un sodio de pentobarbital de 10 mg/kg adicionales si el animal reacciona a la pizca. Caso de no retirar el reflejo, el nivel de anestesia es correcto para la cirugía.</li>
	<li>Limpiar el sitio quirúrgico en el abdomen con etanol al 70%. Afeitarse el cabello desde el sitio con una hoja de razer y desinfectar la zona con yodoforo. Administrar veterinario ungüento para los ojos para evitar la sequedad bajo anestesia.</li>
	<li>Utilice las tijeras oftálmicas para abrir el abdomen a lo largo de la línea media del abdomen con una incisión de 4 a 5 cm. mover los intestinos al lado izquierdo y cubrir con una gasa empapada solución salina para evitar la deshidratación excesiva durante el procedimiento de la cirugía.</li>
	<li>Usar hisopos de algodón totalmente exponer el campo visual del estómago y localizar el epiplón (ubicado debajo del estómago). Usar dos pares de Pinzas finas para dilatar el epiplón. Tenga cuidado para evitar que se desgarre.</li>
	<li>El hidrogel se descongele completamente en este punto. Girar el tubo con los islotes de 30 s a 200 x g y eliminar el sobrenadante. Aspire 50 μl del hidrogel, añada al tubo que contiene los islotes y agite la mezcla suavemente evitando la formación de burbujas. Mantener los tubos en hielo durante el procedimiento.</li>
	<li>Usar dos pares de pinzas para coger los bordes del epiplón y levantarlo suavemente para formar una ranura entre la pared gástrica y los intestinos que pueden alojar un volumen pequeño de líquido con el injerto del islote.</li>
	<li>Que la segunda persona ayuda en el procedimiento y aspirar la mezcla resuspendidos islote-hidrogel (todo el contenido del tubo) con una pipeta de 200 μL, entregar el contenido en la ranura.</li>
	<li>Asegúrese de que la mezcla está bien posicionada en la ranura suavemente levantando o bajando los bordes del epiplón. Completo de colocación de la mezcla en 3 minutos antes el hidrogel se solidifica como un efecto de la temperatura corporal. Después de establece el hidrogel, doblar el epiplón para cubrir el injerto. Nota: el epiplón se adhiere a la pared gástrica circundante como el hidrogel se solidifica.</li>
	<li>Después el hidrogel está completamente solidificado, utilizar bastoncillos de algodón para colocar de nuevo los intestinos hacia la cavidad abdominal, teniendo cuidado de no para tocar el sitio de trasplante.</li>
	<li>Añadir 20 μl de cefalosporina (5 ~ 10 mg) en la cavidad abdominal para prevenir la infección, entonces utilice sutura 4-0 para cerrar el abdomen.</li>
	<li>Retomar el ratón de su jaula y repita todos los pasos para cada destinatario de ratón. Mantener los ratones caliente y observe hasta que recuperar completamente la conciencia suficiente para mantener el recumbency esternal. Mantener los ratones aparte de otros animales hasta que han recuperado plenamente.</li>
	<li>Inyectar 50 μl de Cefazolina sódica (0,05 mg/mL) cada día durante una semana como profilaxis después de la cirugía. Administrar Bupivicaine + buprenorfina, es decir, aplicar 1-3 gotas de 0.25% Bupivicaine en el sitio de incisión por vía tópica antes de la colocación de clips de la herida. Administrar Buprenorphine(0.03 mg/ml with sterile 0.9% saline, 0.05-0.10 mg/kg) por vía la intraperitoneal (IP).</li>
	<li>Medir el nivel de glucosa en sangre no ayuno de una muestra de sangre de la vena de la cola usando un medidor de glucosa en sangre una vez al día después del trasplante. Cuando trasplantar en el epiplón, el injerto de islote puede tienen una función de retraso y no llegar a un nivel de glucosa en sangre completamente normal durante 2 – 3 semanas.</li>
	<li>Histología, saque el injerto omental el ratón al final del experimento después del trasplante. Fijar el tejido según los protocolos histológicos. El injerto puede ser analizado para estudios immunostaining o inmunofluorescencia.</li>
</ol>2. otro método para el trasplante al epiplón
Nota: Se puede sustituir un hidrogel de fibrina-trombina alternativo que se utiliza a temperatura ambiente para el hidrogel de matriz de la membrana del sótano. Consta de 2 componentes, una solución de proteína de sellador de fibrina (50 U/mL trombina y fibrinógeno 10 mg/mL). Cuando los componentes se mezclan, forman un coágulo que mantiene los islotes en su lugar.
<ol><li>Utilizar el fibrina thombin hidrogel compuesto a temperatura ambiente. Como en el paso 1.2, cada ratón recibirá equivalentes del islote de 450 – 500 (IEQ) por trasplante. Coloque los islotes en un tubo de 1,5 mL estéril snap-top con 100 μl de medio CMRL 1066. Inmediatamente antes del trasplante, aspirar los islotes en un tubo estéril de PE50 para una longitud de 10 cm y centrifugar suavemente (30 s a 200 x g) para formar un pellet suelto.</li>
	<li>Preparar el animal como se indicó anteriormente (pasos 1.5-1.8) con el epiplón repartido. Mezclar los componentes de hidrogel (10 μl/cada uno) y en el epiplón. (Figura 3D)</li>
	<li>Expulsar inmediatamente a los islotes de la tubería en el hidrogel. El hidrogel forma un coágulo alrededor de los islotes. (Figura 3E)</li>
	<li>Doblar el epiplón sobre el hidrogel y los islotes para formar una bolsa. (Figura 3F) Continuar con medidas de 1.13 a 1.18.</li>
</ol>

<ol><li>Guariguata, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Global+estimates+of+diabetes+prevalence+for+2013+and+projections+for+2035%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes+research+and+clinical+practice%22%5BJournal%5D)">Global estimates of diabetes prevalence for 2013 and projections for 2035.</a> Diabetes research and clinical practice. 103 (2), 137-149 (2014).</li>
<li>Bellin, M. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Potent+Induction+Immunotherapy+Promotes+Long-Term+Insulin+Independence+After+Islet+Transplantation+in+Type+1+Diabetes%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Transplantation%22%5BJournal%5D)">Potent Induction Immunotherapy Promotes Long-Term Insulin Independence After Islet Transplantation in Type 1 Diabetes.</a> American Journal of Transplantation. 12 (6), 1576-1583 (2012).</li>
<li>Moberg, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Production+of+tissue+factor+by+pancreatic+islet+cells+as+a+trigger+of+detrimental+thrombotic+reactions+in+clinical+islet+transplantation%5BTitle%5D)+AND+%22The+lancet%22%5BJournal%5D)">Production of tissue factor by pancreatic islet cells as a trigger of detrimental thrombotic reactions in clinical islet transplantation.</a> The lancet. 360 (9350), 2039-2045 (2002).</li>
<li>Nilsson, B., Ekdahl, K. N., Korsgren, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Control+of+instant+blood-mediated+inflammatory+reaction+to+improve+islets+of+Langerhans+engraftment%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Opinion+in+Organ+Transplantation%22%5BJournal%5D)">Control of instant blood-mediated inflammatory reaction to improve islets of Langerhans engraftment.</a> Current Opinion in Organ Transplantation. 16 (6), 620-626 (2011).</li>
<li>Bellin, M. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Similar+islet+function+in+islet+allotransplant+and+autotransplant+recipients%2C+despite+lower+islet+mass+in+autotransplants%5BTitle%5D)+AND+%22Transplantation%22%5BJournal%5D)">Similar islet function in islet allotransplant and autotransplant recipients, despite lower islet mass in autotransplants.</a> Transplantation. 91 (3), 367-372 (2011).</li>
<li>Bruni, A., Gala-Lopez, B., Pepper, A. R., Abualhassan, N. S., Shapiro, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Islet+cell+transplantation+for+the+treatment+of+type+1+diabetes%3A+recent+advances+and+future+challenges%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes%2C+metabolic+syndrome+and+obesity%3A+targets+and+therapy%22%5BJournal%5D)">Islet cell transplantation for the treatment of type 1 diabetes: recent advances and future challenges.</a> Diabetes, metabolic syndrome and obesity: targets and therapy. 7, 211(2014).</li>
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<li>Cantarelli, E., Piemonti, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Alternative+transplantation+sites+for+pancreatic+islet+grafts%5BTitle%5D)+AND+%22Current+diabetes+reports%22%5BJournal%5D)">Alternative transplantation sites for pancreatic islet grafts.</a> Current diabetes reports. 11 (5), 364(2011).</li>
<li>Cantarelli, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Murine+animal+models+for+preclinical+islet+transplantation%3A+no+model+fits+all+%28research+purposes%29%5BTitle%5D)+AND+%22Islets%22%5BJournal%5D)">Murine animal models for preclinical islet transplantation: no model fits all (research purposes).</a> Islets. 5 (2), 79-86 (2013).</li>
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<li>Schmidt, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pancreatic+islets+find+a+new+transplant+home+in+the+omentum%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">Pancreatic islets find a new transplant home in the omentum.</a> Nature Biotechnology. 35 (1), 82017(2017).</li>
<li>Voigt, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prevalence+and+Progression+Rate+of+Diabetic+Retinopathy+in+Type+2+Diabetes+Patients+in+Correlation+with+the+Duration+of+Diabetes%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Clin+Endocrinol+Diabetes%22%5BJournal%5D)">Prevalence and Progression Rate of Diabetic Retinopathy in Type 2 Diabetes Patients in Correlation with the Duration of Diabetes.</a> Exp Clin Endocrinol Diabetes. , (2017).</li>
<li>Baidal, D. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bioengineering+of+an+Intraabdominal+Endocrine+Pancreas%5BTitle%5D)+AND+%22New+England+Journal+of+Medicine%22%5BJournal%5D)">Bioengineering of an Intraabdominal Endocrine Pancreas.</a> New England Journal of Medicine. 376 (19), 1887-1889 (2017).</li>
<li>Espes, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+restoration+of+vascularity+and+oxygenation+in+mouse+and+human+islets+transplanted+to+omentum+may+contribute+to+their+superior+function+compared+to+intraportally+transplanted+islets%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Transplantation%22%5BJournal%5D)">Rapid restoration of vascularity and oxygenation in mouse and human islets transplanted to omentum may contribute to their superior function compared to intraportally transplanted islets.</a> American Journal of Transplantation. , (2016).</li>
<li>Berman, D. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bioengineering+the+endocrine+pancreas%3A+intraomental+islet+transplantation+within+a+biologic+resorbable+scaffold%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes%22%5BJournal%5D)">Bioengineering the endocrine pancreas: intraomental islet transplantation within a biologic resorbable scaffold.</a> Diabetes. 65 (5), 1350-1361 (2016).</li>
<li>Delaune, V., Berney, T., Lacotte, S., Toso, C. <a target="_blank" href="https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/28109023">Intraportal islet transplantation: the impact of the liver micro-environment.</a> Transplant International. 30 (3), 227-238 (2017).</li>
<li>Espes, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+restoration+of+vascularity+and+oxygenation+in+mouse+and+human+islets+transplanted+to+omentum+may+contribute+to+their+superior+function+compared+to+intraportally+transplanted+islets%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Transplantation%22%5BJournal%5D)">Rapid restoration of vascularity and oxygenation in mouse and human islets transplanted to omentum may contribute to their superior function compared to intraportally transplanted islets.</a> American Journal of Transplantation. 16 (11), 3246-3254 (2016).</li>
<li>Hajizadeh-Saffar, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inducible+VEGF+expression+by+human+embryonic+stem+cell-derived+mesenchymal+stromal+cells+reduces+the+minimal+islet+mass+required+to+reverse+diabetes%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Inducible VEGF expression by human embryonic stem cell-derived mesenchymal stromal cells reduces the minimal islet mass required to reverse diabetes.</a> Scientific Reports. 5, (2015).</li>
</ol>

Los autores no divulgan conflictos de interés.

El trasplante de islote al hígado vía la vena porta es el más de uso general método de trasplante de islotes pancreáticos en humanos, pero todavía hay preocupaciones de eficacia y seguridad como vena porta trombosis y hígado esteatosis17. Estudios recientes muestran que el epiplón puede ser una alternativa adecuada para el hígado, pero necesita más investigación para llevarse a cabo antes de la traducción clínica12,14,<sup class...

Según la Federación Internacional de Diabetes (FID), mellitus de la diabetes afecta actualmente a 382 millones de personas, con un aumento proyectado a 592 millones personas en 20351. En ambos trasplante allogeneic y xenogeneicos islote, terapia inmunosupresora sistémica es necesaria. Sin inmunosupresión, rechazo inmune es una causa importante de pérdida de injerto2. También es un problema importante de pérdida de islotes trasplantados debido a la sangre inmediata mediada por reacción inflamatoria (IBMIR)3,4. Sin embargo, incluso en la ausencia de una respuesta inmune como syngeneic o modelos de auto-trasplante, las células del islote transplantadas en el hígado vía la vena porta se pierden debido a inflamación o a condiciones ambientales desfavorables, tales como sangre pobre de la fuente con menor oxigenación y nutrientes5,6. Como resultado, para garantizar la función metabólica a largo plazo, son necesarios para compensar la pérdida celular inicial que reduce el engraftment7números más altos de la isla.
En un intento por optimizar el engraftment de islote, varios sitios anatómicos alternativos han sido investigados experimentalmente como clínicamente, con prometedores, aún no definitivo resultados8. Mientras que algunos de los sitios alternativos ofrecen un acceso fácil y seguro (e.g., piel, cápsula renal, submucosa gástrica y cámara anterior del ojo) o una superficie más amplia para grandes masas de islote (e.g., cavidad peritoneal), supervivencia y fisiológicas rendimiento metabólico de los islotes trasplantados son todavía limitado y siguen siendo una preocupación9. La búsqueda de un lugar más adecuado para el engraftment del islote está en curso.
El epiplón fue uno de los muchos sitios anatómicos que fueron investigados en el desarrollo temprano del trasplante de islotes pancreáticos y probó un ambiente exitoso para islotes10,11,12,13, 14. Sin embargo, infusión intraportal islote se convirtió en el clínico opción debido en parte a la relativa simplicidad del procedimiento y modelos de éxito temprano en animales6. También, en parte, los negativos asociados con este sitio, particularmente masiva pérdida temprana de la isla, fueron menos restringir comprendido y menos en los primeros días del trasplante de islotes experimental como el campo madurado. Más reciente evidencia convincente que indica que la infusión intravascular del islote está lejos de ideal, el epiplón es reapareciendo como un sitio potencialmente valioso para la célula.
El epiplón (bajo la forma de una bolsa omental) ofrece ventajas relativas sobre el hígado15,16. Es fácilmente accesible y bien vascularizado. Permite la recuperación del injerto (si es necesario) o biopsia. El período isquémico experimentado por los islotes es reducido en comparación con el hígado, y el epiplón puede aceptar relativamente las masas gran islote que no es posible intraportally, donde un aumento de la presión portal pueden causar complicaciones.
Se utilizó un modelo de ratón syngeneic de trasplante en el protocolo de prueba en el estudio, emplear ratones machos C57BL/6 entre 6-8 semanas de edad con un peso de 20 a 25 beneficiarios del islote de g. fueron despojados de diabéticos con una sola inyección del streptozotocin con una dosis de 250 mg/kg ip. La inducción de la diabetes puede considerarse exitoso si el nivel de glucosa de la sangre del ratón es mayor de 24 mmol/L 48 h después de la inyección y se mantiene por encima de ese nivel durante un mínimo de 5 días.
Syngeneic islotes fueron aislados de páncreas de donantes pareados por edad siguiendo métodos previamente publicados con algunas modificaciones. En Resumen, la colagenasa fue inyectado en la vejiga de rozadura en lugar de la vía biliar. Esto fue hecha como una mejora para facilitar la facilidad de inyección. Infusión de colagenasa fue seguido por incubación, interrupción de tejido, separación de gradiente de densidad y selección de mano para obtener puros islotes. Islotes fueron cultivados durante la noche en CMRL 1066 suplementado con 10% inactivado con calor suero bovino fetal (FBS) en T175 frascos a 37 ° C, bajo 95% aire - 5% CO2 antes del trasplante.

<table><tbody><tr><td><fuerte>Equipo</fuerte></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>5 pulgadas (12-13 cm) Tijeras</td><td>RWD Ciencias de la Vida&nbsp;</td><td>S12030-11</td><td></td></tr><tr><td>Pinzas finas</td><td>RWD Life Science</td><td>F11010-13</td><td></td></tr><tr><td>Pinzas para heridas pequeñas</td><td>RWD Life Science</td><td>R33003-01</td><td></td></tr><tr><td>Acutenaculum</td><td>RWD Life Science</td><td>F31044-13</td><td></td></tr><tr><td>Pinzas de tejido de 2 pares</td><td>RWD Life Science</td><td>&nbsp; F13023-10</td><td></td></tr><tr><td>4-0 Sutura con aguja</td><td>Chenghe, China</td><td>17094</td><td></td></tr><tr><td>200 &mu; L Pipeta y puntas</td><td>Gilson</td><td>PN11</td><td></td></tr><tr><td>One Touch ultraeasy Sistema básico de control de glucosa en sangre&nbsp; &nbsp;</td><td>Johnson & Hoja</td><td></td> de afeitar Johnson 33391713 <td></td></tr><tr><td></td><td>Philips</td><td>HC1099/15</td><td></td></tr><tr><td><fuerte>Material y animales</fuerte></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pentobarbital Sodio</td><td>Sigmaaldrich.com</td><td>P3761</td><td>Para anestesia&nbsp;</td></tr><tr><td>Hidrogel&nbsp;</td><td>bdbiosciences.com</td><td>356234</td><td>Matriz de membrana basal</td></tr><tr><td>Hidrogel de fibrina-trombina&nbsp;</td><td>Baxter.com</td><td>1501250</td><td>Los componentes se coagulan cuando se mezclan</td></tr><tr><td>con un 70% de etanol</td><td>Yingniu medical, Anhui, China</td><td>23170608</td><td></td></tr><tr><td>Iodophor</td><td>Lierkang medical technology, Shangdong, China</td><td>170521</td><td></td></tr><tr><td>solución salina normal</td><td>Baxter.com</td><td>2B1324</td><td></td></tr><tr><td>Cefalosporina</td><td>Lukang medical, Shangdong, China</td><td>150303</td><td></td></tr><tr><td>Cefazolina</td><td>Baxter.com</td><td>2G3508</td><td></td></tr><tr><td>ungüento lubricante para los ojos Major</td><td>Pharmaceuticals</td><td>203964</td><td></td></tr><tr><td>estreptozotocina</td><td>Sigmaaldrich.com</td><td>S0130</td><td></td></tr><tr><td>colagenasa tipo V</td><td>Sigmaaldrich.com</td><td>C9262</td><td></td></tr><tr><td>CMRL-1066 media</td><td>celltrans, Wenzhou, China</td><td>X018D1</td><td></td></tr><tr><td>histopaque</td><td>Sigmaaldrich.com</td><td>10771</td><td>gradiente de densidad</td></tr><tr><td>Tubería PE50</td><td>Braintreesci.com</td><td>PE50 100 FT</td><td>Polietileno .023" x .038</td></tr><tr><td>Calceína AM</td><td>Sigmaaldrich.com</td><td>C1359</td><td></td></tr><tr><td>Yoduro de propidio</td><td>Sigmaaldrich.com</td><td>P4864</td><td></td></tr><tr><td>compuesto de temperatura de corte óptima (OCT)</td><td>Tissue-Tek; Miles, Naperville, IL</td><td>4583</td> medio <td>de inclusión de</td></tr><tr><td>anticuerpos de insulina</td><td>Tecnología de señalización celular, Danvers, MA 01923</td><td>8138S</td><td></td></tr><tr><td>medios de tinción de hematoxilina</td><td>Tecnología de señalización celular, Danvers, MA 01923</td><td>14166S</td> medios de tinción de <td></td></tr><tr><td>eosina</td><td>Beyotime Biotech, China</td><td>C0109</td><td></td></tr><tr><td>DAPI</td><td>Thermo Fisher Scientific Inc.&nbsp;</td><td>D1306</td><td></td></tr><tr><td>C57Bl/6 Ratones</td><td>Centro Médico de Animales de la Provincia de Guangdong</td><td>/</td><td></td></tr><tr><td>Suero Fetal Bovino</td><td>GE Healthcare Life Sciences</td><td>SH30084</td><td></td></tr><tr><td>Matraces T175</td><td>Falcon</td><td>353112</td><td></td></tr><tr><td>1,5 mL Tubos con tapa a presión</td><td>Axygen</td><td>MCT-150-C</td><td></td></tr></tbody></table>

un método para el trasplante de islotes pancreáticos para el epiplón en ratón

A Method for Islet Transplantation to the Omentum in Mouse

Trasplante de islotes pancreáticos se ha propuesto ser un potencial tratamiento para la diabetes tipo 1. Reciente evidencia convincente indica que infusión intravascular del islote está lejos de ser ideal y por lo tanto, el epiplón es reapareciendo como un sitio potencialmente valioso para el trasplante de islotes pancreáticos. Este experimento requiere el aislamiento de islotes de alta calidad y la implantación de los islotes a los destinatarios diabéticos. Trasplante para el epiplón requiere pasos quirúrgicos que pueden demostrarse mejor visualmente. Aquí, se presentan los pasos detallados para este procedimiento. Aquí se describen dos métodos de mezcla de los islotes aislados con hidrogel antes de colocar la mezcla en la bolsa omental de ratones diabéticos. Diferentes hidrogeles se utilizan para las diferentes condiciones. Niveles de glucosa en sangre de los receptores de ratón diabético de syngeneic islotes en el epiplón fueron monitoreados durante 35 días. Algunos animales fueron sacrificados después de 14 días para realizar el análisis inmuno-histoquímico. Este enfoque preclínicos de trasplante puede utilizarse como datos preliminares previos a la traducción a un trasplante clínico.

Post-Digestive estado del páncreas se muestra en la figura 1A. Purificada islotes se muestran en la figura 1B. Tinción de ditizona y pruebas de viabilidad de los islotes se muestran en la figura 2. Los pasos principales del trasplante de islotes pancreáticos en el epiplón se muestran en la figura 3. Los niveles de glucosa de la sangre de los recipientes después del trasp...

Se introduce un método para el trasplante omental de islotes en un ratón. Los islotes aislados se mezclan con hidrogel y la mezcla se coloca en la bolsa omental de un ratón diabético. Luego, se controla la glucosa en la sangre, y se realiza el análisis inmuno-histoquímico.

Un método para el trasplante de islotes pancreáticos para el epiplón en ratón

Islet transplantation has been proposed to be a potential treatment for type 1 diabetes. Recent compelling evidence indicates that intravascular islet ...

Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo del trasplante de islotes, como el trasplante de islotes al omentum. Las implicaciones de esta técnica se extienden hacia la terapia de la diabetes tipo I porque el omentum es ree emergiente como un sitio de valor potencial para el trasplante de islotes. La principal ventaja de esta técnica es que los islotes aislados se mezclan con hidrogel y la mezcla se coloca en la bolsa de omentum de ratón diabético.Comience preparando un campo aséptico en el área quirúrgica con material estéril como cortinas y desechables. Coloque los instrumentos quirúrgicos esterilizados en el campo aséptico. Escoja los islotes del donante bajo el microscopio estéreo usando una punta de pipeta de 200 microlitros.Para cada animal, recoger 450 a 500 islotes y transferir a un tubo superior estéril de 1,5 mililitros snap superior con 100 microlitros de CMRL 10 66 medio. Coloque el tubo sobre hielo hasta que esté listo para el trasplante. Una vez cosechados los islotes, descongela el hidrogel de matriz de membrana del sótano sobre hielo.Pesar y etiquetar todos los ratones receptores diabéticos. Después de anestesiar el primer ratón de acuerdo con un protocolo aprobado institucionalmente, pruebe la profundidad de la anestesia mediante la administración de un pellizco del dedo del Si no hay reflejo de abstinencia, el nivel de anestesia es correcto para la cirugía.Administrar la pomada veterinaria a los ojos para evitar la sequedad mientras está bajo anestesia. Frota el abdomen con 70%etanol. Luego afeita el cabello del sitio de la cirugía.Cubra al animal con una cortina estéril y desinfecte la zona con un exfoliante de yodo. Después de usar tijeras oftálmicas para crear una incisión de 4 a 5 centímetros a lo largo de la línea media del abdomen, mueva los intestinos hacia el lado izquierdo y cúbralo con gasa empapada en solución salina para prevenir la deshidratación durante el procedimiento de cirugía. Luego usa hisopos de algodón para exponer completamente el estómago y localizar el omento debajo del estómago.En este punto, el hidrogel debe ser completamente descongelado. Gire el tubo que contiene los islotes a 200 g durante 30 segundos. Después del giro, retire el sobrenadante.A continuación, aspirar 50 microlitros del hidrogel añadirlo al tubo que contiene los islotes y mezclar suavemente evitando la formación de burbujas. A continuación, utilice dos pares de fórceps para recoger los bordes del omento y elevarlo suavemente para formar una ranura entre la pared gástrica y los intestinos. En este punto de la cirugía, se necesita una segunda persona para aspirar la mezcla de hidrogel de islotes resuspendido con una punta de pipeta de 200 microlitros y entregarla en la ranura.Asegúrese de que la mezcla esté bien posicionada en la ranura elevando o bajando suavemente los bordes del omento. Completar el posicionamiento de la mezcla dentro de tres minutos antes de que el hidrogel se solidifique. Después de que el hidrogel se ponga, dobla el omento para cubrir el injerto.El omento se adhiere a la pared gástrica circundante a medida que el hidrogel se solidifique. Cuando el hidrogel esté completamente solidificado, utilice hisopos de algodón para reposicionar los intestinos en la cavidad abdominal teniendo cuidado de no tocar el lugar del trasplante. A continuación, dispensar 200 microlitros de un antibiótico adecuado en la cavidad abdominal para prevenir la infección.Luego usa la sutura 4 O para cerrar el abdomen. Generalmente los individuos nuevos en este método lucharán porque los sitios del omento en ratones es pequeño y agotador para evaluar. Coloque el ratón en una jaula de recuperación calentada hasta que recupere completamente la reclinaciones externas.Al día siguiente y todos los días posteriores durante una semana, inyectar antibiótico como profilaxis post-cirugía. Además, mida el nivel de glucosa en sangre no en ayunas a partir de una muestra de sangre de vena de cola usando un medidor de glucosa en sangre una vez al día después del trasplante. Al trasplantarse al omentum, el injerto de islote puede tener una función retardada y no alcanzar un nivel de glucosa en sangre completamente normal durante dos a tres semanas.El tejido injertado fue recuperado del ratón eutanizado 14 días después del trasplante. Aquí el injerto es visible como un grupo de núcleos después de la tinción DAPI. La funcionalidad del tejido injertado se revela mediante tinción de inmunofluorescencia con anticuerpos anti-insulina.La tinción de H&E muestra los tejidos injertados rodeados por los adipocitos del omento. Una vez masterada, esta técnica se puede hacer en una hora si se realiza correctamente. Al intentar este procedimiento, es importante recordar también que el ratón omentum es frágil.Siguiendo este procedimiento, otros métodos como se utilizan en diferentes escuelas secundarias, el rendimiento de MB en todo lo que responderá a preguntas particulares como la propagación del islote en la vascuolización y el rendimiento. Después de este desarrollo, esta técnica allanó el camino para que los investigadores en su y trasplante exploraran el tratamiento para la diabetes tipo I en más de un extracto. Después de ver este video, usted debe tener una buena comprensión de cómo trasplantar los islotes al omentum en el ratón.

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Research

Investigación

JoVE Journal

Biology

Biología

El protocolo fue desarrollado para ofrecer de forma limpia y fácil de islotes o células bajo la cápsula renal de ratones. Las células se concentran en pastillas en el tubo final utilizado para trasplantar las células en la cápsula renal. La facilidad de esta técnica reduce el estrés de las células y el ratón.

El trasplante de islotes pancreáticos en la cápsula renal de ratones diabéticos

El trasplante de islotes aislados se ha propuesto ser un tratamiento potencial para la diabetes tipo 1. Aquí se describe un método para aislar los islotes de páncreas de ratón y trasplantarlas en el espacio subcapsular del riñón.

Un método para el aislamiento de los islotes murinos y Trasplante Renal subcapsular

Este video describe el protocolo para injertar islotes pancreáticos humanos en la cámara anterior del ojo del ratón para monitorear la revascularización de injertos de islotes humanos in vivo. También ayuda a comprender la contribución de las células receptoras frente a las del donante en la promoción de la encapsulación y vascularización del injerto.

Injerto de islotes pancreáticos: un método para implantar islotes pancreáticos en la cámara anterior del ojo de ratón para obtener imágenes in vivo

En este video, describimos un procedimiento para infundir células de los islotes pancreáticos en la vena porta hepática, seguido de la aplicación de espuma de gel para prevenir con éxito el sangrado. La hemorragia postoperatoria es una causa frecuente de alta mortalidad durante el trasplante de islotes.

Modelo murino de trasplante de islotes: un método quirúrgico para infundir islotes pancreáticos en la vena porta y prevención de la hemorragia postoperatoria

Este protocolo demuestra el aislamiento de los islotes murinos y la siembra en un andamio decelularizado. Los islotes soportados por el andamio fueron trasplantados en la almohadilla de grasa epididimal de ratones diabéticos inducidos por estreptozotocina (STZ). Los islotes sobrevivieron en el sitio del trasplante e invirtieron la condición hiperglucémica.

Transplante de islotes en el cojín de grasa epididimal de ratones diabéticos

Trasplante de islotes pancreáticos es una manera de lograr normoglycemia en diabetes tipo 1. Este artículo se centra en la técnica de trasplante vía intraportal para mantener niveles normales de glucosa en ratones diabéticos.

Intraportal trasplante de islotes pancreáticos en modelo murino

Aquí, presentamos un protocolo para la validación in vivo de terapia celular basada en hidrogel, ilustrada por el ejemplo del trasplante de islotes pancreáticos. Islote de matriz h-Omental (hOMING) implantación de relleno permite la implantación de una mezcla de células-hidrogel entre las capas omentales, cerca de los vasos sanguíneos, para maximizar el engraftment en un ambiente metabólico adecuado.

Trasplante de islotes intra-Omental utilizando relleno de islote de matriz h-Omental (hOMING)

En este protocolo, se describe un método de aislamiento de islotes murinos y trasplante en el tejido adiposo blanco subcutáneo inguinal. Los islotes murinos sinémicos aislados se trasplantan en un receptor murino utilizando un hidrogel de membrana del sótano. Se controla el nivel de glucosa en sangre de los receptores y se realiza un análisis histológico de los injertos de islos.

Modelo de trasplante de tejido adiposo blanco subcutáneo inguinal (ISWAT) de islotes murinos

Este método de trasplante de islotes cubiertos de grasa es adecuado para la detección de islotes injertados en la cavidad intraperitoneal. En particular, no requiere el uso de agentes bioaglutinantes o suturas.

Trasplante de islotes cubiertos de grasa utilizando tejido adiposo blanco epididimario

Aquí presentamos procedimientos quirúrgicos refinados para realizar con éxito el trasplante intraportal de islotes, un procedimiento quirúrgico clínicamente relevante pero técnicamente desafiante, en ratones.

Minimizar el sangrado de la vena porta posterior a la infusión durante el trasplante intrahepático de islotes en ratones

En este protocolo, discutimos la implementación de un modelo de trasplante hepático ortotópico (OLT) exitoso en ratones. Además, también se discuten los adyuvantes para analizar más a fondo la permeabilidad del aloinjerto después de una OLT exitosa en un ratón, específicamente utilizando exploraciones de microtomografía computarizada (microCT).

Trasplante hepático ortotópico exitoso en ratones mediante angiografía por microtomografía computarizada

Aprende el trasplante de islotes pancreáticos al epiplón en ratones diabéticos usando hidrogel. Este método evalúa la viabilidad de los islotes y monitorea los niveles de glucosa para avanzar en terapias contra la diabetes tipo I.

Un método para el trasplante de islotes pancreáticos para el epiplón en ratón

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