Name: Homogénea tiempo resuelto Förster Resonancia energía basada en la transferencia de ensayo para la detección de la secreción de insulina (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-05-10T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 30 s
Description: Aprende a cuantificar la secreción de insulina mediante HTRF en células beta pancreáticas. Este método permite detectar rápidamente efectos de fármacos y comprender mecanismos de secreción estimulada por glucosa en investigación de diabetes.

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Los autores no tienen nada que revelar.

1. INS-1E células: mantenimiento y chapado
<ol><li>Mantener las células de la INS-1E en un incubador de2 ˚C/5% CO 37 humidificado y cultivadas con Medio RPMI 1640 suplementado con 5% (v/v) inactivado con calor suero fetal bovino, 2 mM L-glutamina, 10 mM HEPES, piruvato de sodio 1 m m, 100 U/mL de penicilina/estreptomicina solución, 50 μm β-mercaptoetanol. Células en Medio RPMI 1640 completo de 10 mL (por placa), de la cultura hasta llegar a 80-90% de confluencia, cuando pueden se tripsinizaron y pasados o utilizados para el análisis de la secreción de insulina.</li>
	<li>
Día 1: Los medios de comunicación de aspirar y lavar las células una vez con 5 mL de PBS precalentada. Agregar 0,5 mL de tripsina (0,025%) diluido 1:1 en 0.5 mL de PBS trypsinize las células e incubar durante 3-4 minutos a 37 ° c. Desactivar tripsina añadiendo 9 mL completo medios de comunicación y transferencia de células a un tubo de centrífuga de 15 mL por pipeteo.</li>
	<li>Pellet de células por centrifugación y Resuspenda el precipitado de células en medios frescos de aproximadamente 5 mL.</li>
	<li>Tomar 10 μl de las células re-suspensión y mezclar con 10 μl de colorante vital azul de tripano para verificar la viabilidad de las células. Contar las células vivas y muertas en 10 μl de esta mezcla usando un hemocitómetro. Nivel de viabilidad debe estar por encima del 90%. Diluir las células suspendidas de nuevo en medios frescos a 1 millón de células por mL.</li>
	<li>Semillas 0,5 mL INS-1E de células por pozo en una poly-L-lisina cubierto primero placa de 24 pozos, con una densidad de 500.000 células/pozo.</li>
	<li>
Día 2: Eliminar medios de 18-24 h después de la galjanoplastia y agregar 500 μL/pocillo de frescos medios RPMI 1640. Incube las células por otro 24 h permitir que las células se recuperan completamente del passaging paso previo. Este tiempo adicional permite que las células se difunda en la placa de cultivo de tejidos.</li>
</ol>2. insulina secreción ensayo (día 3)
<ol><li>Preparar el tampón KRB: 132,2 mM NaCl, 3,6 mM KCl 5 mM NaHCO3, 0,5 mM NaH2PO4, 0,5 mM MgCl2, 1,5 mM CaCl2y 0,001 g/mL albúmina sérica bovina (BSA), pH 7,4.</li>
	<li>Los medios de comunicación de las células de aspirar y lavar dos veces con PBS precalentada.</li>
	<li>Para el paso de la inanición de la glucosa, añadir 450 μL/pocillo KRB (que contiene BSA) sin glucosa por 1 h a 37 ˚C/5% CO2.</li>
	<li>Durante la etapa de hambre glucosa, preparar diluciones seriadas de lo medicamento en KRB conteniendo 200 mM glucosa (concentración 10 x).<ol>
<li>Preparar drogas en 10 veces la concentración final de KRB suplementado con glucosa de 200 mM (también 10 veces la concentración de glucosa del ensayo final). Si el stock de drogas (más el añadido 10 x glucosa) es en DMSO, asegúrese de que porcentaje de DMSO se mantiene constante a lo largo del ensayo (porcentaje ideal final de menos de 0.1% DMSO).</li>
		<li>Para los tratamientos dopaminérgicos y quinpirole, usar un rango de concentración de droga ensayo final de 100 μm a 100 pM (de mayor a menor concentración), con el último punto de la respuesta a la dosis que contiene ningún fármaco. Para bromocriptina, usar un rango de concentración de ensayo final del μm 10 a 22:00, con el último punto de la respuesta de dosis, siendo el control libre de drogas.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Después de hambre de la glucosa, añadir diluciones seriadas de drogas para el análisis para producir una respuesta a la dosis.</li>
	<li>Añadir 50 μL/pocillo de cada serie dilución a los pocillos correspondientes (análisis total volumen 500 μl).</li>
	<li>Para el paso del estímulo de la glucosa, incubar las células con las diluciones seriadas de drogas respectivo (en presencia de glucosa 20 mM) 90 min a 37 ˚C/5% CO2. Incluyen un conjunto de pozos de control: (1) estimulación con glucosa 20 mM sola en la ausencia de cualquier droga adicional (2) las células y que son estimuladas ni con drogas ni con glucosa (que ofrece una tasa basal de secreción).</li>
	<li>Después de la etapa de estimulación, retire cuidadosamente los sobrenadantes (uso directamente o almacenar a 4 ° c). Nota: Un paso de centrifugación suave de 5 min adicional (600 x g, 1 min) se puede introducir en este punto para eliminar cualquier célula restante en los sobrenadantes de ensayo.</li>
</ol>3. HTRF a medida la secreción de insulina
<ol><li>Diluir preferiblemente ensayo sobrenadantes 1:10 en KRB (sin BSA), en placas de 96 pocillos claro.</li>
	<li>Preparar la curva estándar de insulina para el ensayo de insulina HTRF (tabla 1).</li>
</ol><table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td>Solución estándar 500 ng/ml</td>
			<td>Diluciones seriadas</td>
			<td>Trabajo [insulina] ng/ml</td>
		</tr>
<tr>
<td>STD 7</td>
			<td>30 μL stock + 140 μl KRB</td>
			<td>150</td>
		</tr>
<tr>
<td>STD 6</td>
			<td>30 μL STD 7 + 45 μl KRB</td>
			<td>60</td>
		</tr>
<tr>
<td>STD 5</td>
			<td>30 μL STD 6 + 45 μl KRB</td>
			<td>24</td>
		</tr>
<tr>
<td>STD 4</td>
			<td>30 μL STD 5 + 45 μl KRB</td>
			<td>9.6</td>
		</tr>
<tr>
<td>ETS 3</td>
			<td>30 μL STD 4 + 45 μl KRB</td>
			<td>3.84</td>
		</tr>
<tr>
<td>STD 2</td>
			<td>30 μL STD 3 + 45 μl KRB</td>
			<td>1.54</td>
		</tr>
<tr>
<td>STD 1</td>
			<td>30 μL STD 2 + 45 μl KRB</td>
			<td>0,61</td>
		</tr>
<tr>
<td>STD 0</td>
			<td>KRB 45 μl</td>
			<td>0</td>
		</tr>
<tr>
<td colspan="3">Nota: Valores de STD es 500 ng/ml</td>
		</tr>
</tbody></table>Tabla 1. Diluciones seriadas para hacer la curva estándar de insulina.
<ol start="3"><li>Añadir las muestras de la curva estándar y los sobrenadantes de ensayo diluido a la placa HTRF. La medición de la insulina secretada por HTRF puede llevarse a cabo en un pozo de 96 o un formato de placa de 384 pozos, teniendo en cuenta que el volumen de ensayo debe volver a ajustarse. Uso 10 μL/pocillo de muestra en placas de medio área 96 pocillos blancas o 5 μL/pocillo en un plato blanco de 384 pozos de bajo volumen, fondo redondo (véase Tabla de materiales).</li>
	<li>Preparar mezcla de anticuerpo en solución tampón de detección (véase Tabla de materiales) en un donante de 1:2 (cryptate) / cociente del aceptador (XL-665). Nota: Más detalles específicos sobre el ensayo HTRF están disponibles del fabricante.</li>
	<li>Añada la mezcla de anticuerpos para el ensayo a 30 μL/pocillo (para un formato de ensayo de placa de la pozo 96) o 15 μL/pocillo (para un formato de ensayo de placa de 384 pocillos).</li>
	<li>Sellar la placa e incubar a temperatura ambiente.</li>
	<li>Leer la placa después de 2 h, 4 h o incubación durante la noche con anticuerpos usando el lector de la placa y el correspondiente módulo de óptica HTRF (337 665 620 nm) (véase Tabla de materiales y las instrucciones del fabricante). El principio de integración en 60 μs y el tiempo de integración a 400 μs. uso 200 parpadea por pozo. Nota: Estos parámetros se basaron en el uso de nuestro lector particular. La lectura a 620 nm y 665 nm puede variar entre diferentes instrumentos. Esta es una de las razones que se sugiere utilizar el cociente 665/620. En el cálculo de esta proporción, las diferencias potenciales de lector a lector se normalizará y proporcionan los valores constantes cualquiera que sea el instrumento utilizado para medir HTRF.</li>
</ol>4. normalización y análisis de datos
<ol><li>Calcular las concentraciones de insulina de los pocillos de ensayo mediante extrapolación de radiométrica lecturas de fluorescencia (665 nm/620 nm) a una segundo orden polinómico curva cuadrática (figura 2).</li>
</ol><img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57531/57531fig2.jpg"> Figura 2 : Curva estándar de insulina. Acción de la insulina humana de concentraciones conocidas se utilizó para generar la curva estándar de insulina. Los cocientes resultantes de HTRF (665 nm / 620 nm) se trazaron las concentraciones de insulina. Los datos han sido mejor ajuste a una curva de Polinomio cuadrático de segundo orden (R2 = 0.99996). Se trata de una curva estándar representativa. Barras de error = SEM. <a href="/files/ftp_upload/57531/57531fig2large.jpg" target="_blank">haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
<ol start="2"><li>Con los datos extrapolados como ng/mL de insulina secretada, normalizar (insulina secretada en respuesta al aumento de las concentraciones de ligando) al valor medio de los pozos de ensayo de secreción de insulina máxima % (condición de solo glucosa 20 mM).</li>
	<li>Utilice el ajuste de la curva (R2) de un solo experimento para calcular la variación intraplaca. Dentro del experimento, deriva los valores individuales de2 R de los duplicados la experimentales, que permite el cálculo del error estándar de la media de la curva de ajuste.</li>
	<li>Para determinar la variación interplaca, utilice los datos de por lo menos tres experimentos individuales para calcular el error estándar de la media para el valor de R2 de la curva de colectivo.</li>
</ol>

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</ol>

Agradecemos a Nicolas Pierre (Cisbio pruebas biológicas) para consejos y Dr. Pierre Maechler (Universidad de Ginebra) para proporcionar generosamente las células INS-1E. Este trabajo fue apoyado por fondos del Departamento de defensa (grant PR141292 a Z.F.), John F. y Nancy A. Emmerling Fund de la Pittsburgh Fundación (Z.F.).

El ensayo de insulina HTRF aquí descrito ofrece un sistema rápido y eficiente para medir la secreción de insulina desde un sistema basado en células cultivada. Entre sus ventajas más importantes, este ensayo ofrece una señal de bajo fondo debido a la alta relación de señal a ruido. Además, hemos confirmado que la señal HTRF es estable por largos períodos de tiempo (> 24 h)7. Sin embargo, puesto que los anticuerpos monoclonales de insulina vinculante llegar rápidamente a la saturación de la Unión d...

La regulación del metabolismo energético es perfeccionada por una hormona anabólica insulina. Insulina es sintetizada y liberada por las células beta pancreáticas en respuesta a niveles crecientes de glucosa extracelular. La insulina liberada provoca la captación de glucosa por los tejidos sensibles a insulina1,2. Fisiológicamente, esto está relacionado con la elevación de la concentración de glucosa después de una comida, seguida por la secreción de insulina para regular la absorción de glucosa. Disturbios en la homeostasis de la glucosa conducen a trastornos metabólicos que culminan en resistencia a la insulina y, finalmente, en el inicio del tipo 2 diabetes2,3,4.
Aunque la secreción de insulina ha sido extensamente estudiada, sus mecanismos de regulación siguen siendo mal entendidos. Un área crítica de investigación ha sido la identificación de nuevos moduladores de la secreción de insulina por las células beta5,6,7,8. Estos estudios requieren una mejor comprensión de la relación de acoplamiento entre el estímulo de la glucosa y la secreción de insulina. Por lo tanto, la capacidad para controlar y cuantificar los niveles de secreción de insulina estimulada por glucosa (GSIS) exactamente ha sido esencial. Hasta la fecha, sin embargo, sólo un número limitado de métodos estaba disponible para permitir la cuantificación de GSIS utilizando líneas de células secretoras de insulina o islotes pancreáticos. Uno es el radioinmunoanálisis (RIA), que utiliza radioisótopos marcados insulina y anticuerpos. Las principales limitaciones de este enfoque incluyen problemas de seguridad debido a la manipulación y eliminación de materiales radiactivos. Además, este método es mano de obra intensiva, que implica múltiples lavado largo y pasos de incubación. Análisis enzima-ligado del inmunosorbente (ELISA) es otro enfoque costoso y mano de obra intensiva que utiliza anticuerpos para la detección de insulina. Variación en las afinidades de anticuerpo y en la eficacia del reconocimiento insulina son limitantes de este método y puede afectar la reproducibilidad de los resultados. ELISA ni RIA fue diseñado para experimentos de alto rendimiento. AlphaScreen es un ensayo homogéneo utilizado para la detección y medición de los niveles de secreción de insulina. Tecnología AlphaScreen se basa en la conversión de oxígeno ambiental en un estado de singlete de oxígeno excitado que puede reaccionar con especies quimioluminiscente, lo que resulta en la generación de QL. Porque el ensayo es homogéneo, se eliminan muchos de los pasos de lavado asociados de RIA y ELISA. Sin embargo, la inestabilidad de la señal debido a la naturaleza de la reacción es un factor limitante que afecte la lectura del ensayo. (TR-pinza, desarrollado por Heyduk y colegas9, es otro enfoque homogéneo para la medición de insulina basado en la Unión de dos anticuerpos diferentes a diferentes epítopes en la molécula de insulina. Los anticuerpos son cada químicamente ligado a doble trenzada DNA con trenzado DNA voladizos cortos complementarios solo. Unión de los anticuerpos a la insulina los reúne y lleva a un dúplex de DNA trenzado doble. Cada anticuerpo también se asocia con un fluoróforo donador o aceptor respectivo, y la Asociación de lo dúplex de ADN reúne a estos fluoróforos para generar a transferencia de energía de Förster Resonancia (FRET). Una limitación potencial de TR-pinza, sin embargo, recae en el traste sí mismo. La incapacidad para disipar rápidamente la fluorescencia del fondo durante la reacción de traste puede conducir a niveles relativamente altos de fluorescencia del fondo y una baja relación señal a ruido en el ensayo. Por lo tanto, todavía existe una necesidad para un análisis confiable, robusto y rentable para cuantificar GSIS en un modo de alto rendimiento.
Los avances recientes en biofísica han culminado en el desarrollo de un ensayo de transferencia (HTRF) basado en resonancia de fluorescencia de tiempo resuelto homogénea energía. Específicamente, mientras que la transferencia de energía en el ensayo puede ser descrito como basada en el traste, más exactamente, que HTRF se basa en la luminiscencia energía resonancia transferencia (LRET)10 que es la transferencia no radiativo de energía entre el donador y aceptor especies11,12,13. Esta distinción es importante, desde el momento de una fluorescencia o amortiguamiento basado en interacción traste es muy diferente de lo que es para la LRET, aunque los mismos tipos de compuerta pueden ser usados para el traste y LRET. Además, el uso de tierras raras lantánidos cryptate compuestos, como el europio o cryptate Terbio en HTRF produce fluorescencia larga vida media12,14. Esto ofrece la ventaja de la introducción de un intervalo de tiempo (μs) entre la excitación de la donante y la medición de emisiones desde el aceptor (es decir, ensayo de tiempo resuelto). Este retardo permite tiempo suficiente para la fluorescencia de fondo disipar antes de la medición de la fluorescencia de emisión del aceptador. En consecuencia, la lectura es libre de fluorescencia no específica y por lo tanto, se logra una alta relación señal a ruido (figura 1). Además, la naturaleza homogénea del HTRF elimina la necesidad de pasos de lavado para lavar la especie independiente, haciendo el análisis mucho más rápido que métodos basados en la RIA o ELISA.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57531/57531fig1.jpg"> Figura 1: esquema del mecanismo de detección de insulina HTRF. Dos anticuerpos monoclonales independientemente generados específicamente reconocen y se unen a la insulina en sitios separados. Estos anticuerpos se conjugan bien europio cryptate donante o el receptor de XL665. Excitación del donante en 337 resultados nm en emisión a 620 nm. La transferencia de energía resultante causa XL665 emitir en una longitud de onda más larga, 665 nm. <a href="/files/ftp_upload/57531/57531fig1large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
Presentamos un protocolo detallado para que el uso de un enfoque basado en HTRF para determinar los niveles de GSIS de células INS-1E, una bien establecida secretoras de insulina derivadas de células beta rata insulinoma celular línea15. Además, este ensayo puede ser usado para identificar el perfil farmacológico de los reguladores moleculares de la secreción de insulina. Aplicamos este análisis de insulina basada en HTRF para examinar la dopamina D2-como regulación del receptor de GSIS. Cada vez más estudios han revelado que el neurotransmisor dopamina es un importante regulador de GSIS8,16,17,18,19,20, 21 , 22. la dopamina afecta GSIS en forma autocrina/paracrina negativo a través de acciones de la dopamina D2-como los receptores (D2, D3, D4 receptores) expresados en la superficie de las células pancreáticas beta8 , 16 , 19. usando este análisis, confirmar el papel de la dopamina como un regulador negativo de GSIS y demostrar que la dopamina D2-como bromocriptina agonistas de receptor y quinpirole también reducen GSIS.

<table><tbody><tr><td>Placa blanca de media área de 96 pocillos</td><td>Greiner Bio-One</td><td>82050-042</td><td></td></tr><tr><td>Placa blanca de bajo volumen y fondo redondo de 384 pocillos</td><td>Corning</td><td>15100157</td><td></td></tr><tr><td>Insulina High Range Kit</td><td>Cisbio Bioassays</td><td>62IN1PEH&nbsp;</td><td>Kit de ensayo de insulina basado en HTRF de 10.000 pruebas</td></tr><tr><td>Lector de placas PHERAstar FSX</td><td>BMG Labtech</td><td>FSX</td><td>Lector de placas adaptado para lecturas de ensayos basadas en HTRF</td></tr><tr><td>Selladores de placas</td><td>Fisher Scientific</td><td>DY992</td><td>Para sellar la placa mientras se incuban los anticuerpos</td></tr><tr><td>Hemocitómetro</td><td>Hausser Scientific</td><td>3100</td><td></td></tr><tr><td>RPMI Medium 1640 (1x)</td><td>Gibco&nbsp;</td><td>11875-093</td><td>[+] L-glutamina</td></tr><tr><td>Tripsina 0.05%&nbsp;</td><td>Corning</td><td>25-052-CI</td><td>0,53 mM EDTA, (-) bicarbonato de sodio</td></tr><tr><td>DPBS (solución salina tamponada con fosfato de Dulbecco)</td><td>Corning</td><td>21-031-CV</td><td>Sin calcio y magnesio</td></tr><tr><td>Suero fetal bovino</td><td>Corning</td><td>35-010-CV</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Gibco&nbsp;</td><td>156-30-080</td><td></td></tr><tr><td>Piruvato de sodio</td><td>Gibco&nbsp;</td><td></td><td></td>11360070</tr><tr><td>Solución de penicilina/estreptomicina 100x</td><td>Corning</td><td>30-002 CT</td><td></td></tr><tr><td>2-mercaptoetanol</td><td>Sigma</td><td>M1348</td><td></td></tr><tr><td>Tinción azul de tripán (0,4%)</td><td>Gibco&nbsp;</td><td>15250-061</td><td></td></tr><tr><td>Clorhidrato de dopamina</td><td>Sigma</td><td>8502</td><td></td></tr><tr><td>Mesilato de bromocriptina</td><td>Tocris</td><td>427</td><td></td></tr><tr><td>(-)-Clorhidrato de quinpirol</td><td>Tocris</td><td>1061</td><td></td></tr><tr><td>Albúmina sérica bovina</td><td>Calbiochem</td><td>12659</td><td></td></tr><tr><td>Poli-L-Lisina</td><td>Sigma</td><td>P4832</td><td></td></tr><tr><td>Glucosa</td><td>Sigma</td><td>G7021</td><td></td></tr><tr><td>DMSO (dimetilsulfóxido)</td><td>Sigma</td><td>276855</td><td></td></tr></tbody></table>

homogénea tiempo resuelto förster resonancia energía basada en la transferencia de ensayo para la detección de la secreción de insulina

Homogeneous Time-resolved F&#246;rster Resonance Energy Transfer-based Assay for Detection of Insulin Secretion

La detección de la secreción de insulina es crítica para desdoblamiento mecanismos de secreción regulada, así como en estudios de metabolismo. Aunque numerosos ensayos de insulina han existido por décadas, el advenimiento reciente de la tecnología de transferencia de energía de resonancia Förster (HTRF) tiempo-resuelta homogénea ha simplificado significativamente estas mediciones. Esto es un ensayo óptico rápido, rentable, reproducible y robusto reliant con anticuerpos conjugados a brillante fluoróforos con emisiones de larga duración que facilita la transferencia de tiempo resuelto Förster Resonancia energía. Por otra parte, la detección de insulina HTRF es favorable para el desarrollo de ensayos de cribado de alto rendimiento. Aquí utilizamos HTRF para detectar la secreción de insulina en las células de la INS-1E, una línea de células derivadas de insulinoma de rata. Esto nos permite estimar los niveles basales de insulina y sus cambios en respuesta a la estimulación de la glucosa. Además, utilizamos este sistema de detección de insulina para confirmar el papel de la dopamina como un regulador negativo de la secreción de insulina estimulada por glucosa (GSIS). De manera similar, otras de la dopamina D2-como agonistas del receptor, quinpirole y bromocriptina, reducen GSIS en forma concentración dependiente. Nuestros resultados destacan la utilidad del formato de análisis de insulina HTRF en determinar el papel de numerosos fármacos en GSIS y sus perfiles farmacológicos.

Validamos nuestro análisis HTRF de insulina generando una curva estándar de insulina con insulina humana purificada estándares de concentraciones predefinidas (figura 2). Generación de la curva estándar nos permitida extrapolar las lecturas de fluorescencia radiométrica y así determinar los niveles de insulina secretada en respuesta a los tratamientos de drogas (figura 2). Variación intraplaca para ajuste de curvas fue mínima (<e...

Aquí, presentamos homogénea tiempo resuelve FRET (HTRF) como un método eficiente para la detección rápida de la insulina secretada desde las células.

Homogénea tiempo resuelto Förster Resonancia energía basada en la transferencia de ensayo para la detección de la secreción de insulina

The detection of insulin secretion is critical for elucidating mechanisms of regulated secretion as well as in studies of metabolism. Though numerous ...

El objetivo general de este procedimiento es inducir y cuantificar con precisión los niveles de insulina secretada por las células secretoras de insulina. Este método puede ayudar a responder preguntas clave en el campo de la diabetes, como los principales mecanismos de la secreción de insulina estimulada por glucosa en las células beta pancreáticas. La principal ventaja de esta técnica es que puede cuantificar de forma precisa y rápida la secreción de insulina en respuesta a la estimulación de la glucosa y detectar los posibles efectos de los fármacos sobre la secreción.Las implicaciones de esta técnica se extienden hacia la terapia y el descubrimiento de fármacos para el tratamiento de la diabetes tipo 2, ya que nos permitirá comprender mejor los mecanismos de la disfunción metabólica inducida por fármacos. Aunque este método puede proporcionar información sobre la secreción de insulina de líneas de células beta inmortalizadas, también se puede aplicar a otros sistemas, como los islotes pancreáticos intactos. Por lo general, las personas nuevas en este método tendrán dificultades, debido a los múltiples pasos de manipulación de células y preparaciones de medicamentos.La primera vez que tuvimos la idea de este método fue cuando quisimos elaborar un ensayo rápido para investigar las acciones de los fármacos dopaminérgicos sobre la secreción de insulina. La demostración visual de este método es fundamental, ya que los pasos de manipulación de las células son difíciles de aprender debido a la naturaleza delicada de las células y a la importancia de la precisión para garantizar la coherencia del ensayo entre los experimentos. Primero, haga crecer las celdas INS-1E como se describe en el protocolo de texto.Una vez que las células alcancen la confluencia deseada, aspire el medio. Lavar las células con cinco mililitros de solución salina tamponada con fosfato. A continuación, agregue 0,5 mililitros de 025% de tripsina a las células y luego déjelas en la incubadora durante tres o cuatro minutos a 37 grados centígrados.Desactiva la tripsina añadiendo nueve mililitros de medio completo. A continuación, transfiera las celdas a un tubo de centrífuga de 15 mililitros. A continuación, centrifuga las células para formar un pellet.Después de la centrifugación, disuelva el pellet en cinco mililitros de medio fresco. Pipetear 10 microlitros de las células resuspendidas del tubo y mezclar con 10 microlitros de tinte vital azul de tripano para evaluar la viabilidad. A continuación, utilice un hemocitómetro para contar el número de células vivas y muertas y asegurarse de que el 90% de las células estén vivas.Después de contar, agregue un millón de células por mililitro en un medio RPMI 1640 fresco, luego siembre 0,5 mililitros de 500.000 células INS-1E en cada pocillo de una placa de 24 pocillos recubierta de poli-L-lisina. Deje la placa en la incubadora durante todo un día. Al día siguiente, retire el medio y agregue 500 microlitros de medio RPMI 1640 fresco en cada uno de los pocillos.Incube la placa durante otras 24 horas para que las células se esparzan en las superficies de los pocillos. Para realizar el ensayo, primero prepare el tampón KRB, luego aspire el medio de cada uno de los pocillos y lave con solución salina tamponada con fosfato precalentado, dos veces. A continuación, agregue 450 microlitros de tampón KRB, suplementado con albúmina sérica bovina, pero sin glucosa, en cada pocillo.Deje la placa de cultivo a 37 grados centígrados y 5% de dióxido de carbono durante una hora. Preparar diluciones seriadas de los fármacos en tampón KRB, suplementadas con una concentración final 10X de 200 milimolares de glucosa. Después de la etapa de inanición de glucosa, pipetear 50 microlitros de fármacos diluidos en serie en cada uno de los pocillos correspondientes.Para la estimulación de la glucosa, agregue los respectivos medicamentos diluidos en serie en presencia de 20 milimolares de glucosa. A continuación, incubar las células a 37 grados centígrados durante 90 minutos. Una vez finalizada la estimulación, recoja los sobrenadantes y transfiéralos a tubos de centrífuga de 1,5 mililitros marcados.Transfiera 10 microlitros de cada sobrenadante recolectado a una placa de 96 pocillos. Agregue 90 microlitros de KRB a cada pocillo para lograr una proporción de dilución de uno a 10. Mezclar las diluciones para asegurar la homogeneidad.A continuación, obtenga la curva estándar de insulina para el ensayo de insulina HTRF. A continuación, agregue 10 microlitros de cada una de las muestras de insulina estándar y los sobrenadantes de ensayo diluidos a una placa de 96 pocillos. Prepare la mezcla de anticuerpos en uno o dos donantes para aceptar una proporción en el tampón de detección.Después de preparar la mezcla de anticuerpos, agregue 30 microlitros a cada uno de los pocillos en una placa de 96 pocillos. Selle la placa e incube a temperatura ambiente. Después de dos horas de incubación, lea la placa con la mezcla de anticuerpos en el lector de placas.Utilice el módulo óptico HTRF apropiado a 665 y 620 nanómetros para la lectura y utilice 200 destellos para cada pozo. En primer lugar, se traza una curva estándar de insulina para extrapolar los valores reales de insulina a partir de las muestras de ensayo. La curva estándar muestra que la lectura de fluorescencia radiométrica obtenida aumenta significativamente en función de las concentraciones estándar de insulina humana predefinidas.A continuación, se estudia el nivel basal de secreción de insulina de las células INS-1E en presencia o ausencia de glucosa de 20 milimolares. A partir del gráfico, se muestra que las células segregan aproximadamente 100 nanogramos por mililitro de insulina en presencia de glucosa. Curiosamente, el nivel de insulina es casi la mitad, aproximadamente 15 nanogramos por mililitro en ausencia de glucosa.A continuación, las células se incuban en presencia de concentraciones crecientes de dopamina con 20 milimolares de glucosa. La insulina secretada se normaliza al valor promedio del porcentaje máximo de insulina de cada pocillo. El gráfico muestra que la dopamina inhibe el GSIS, lo que indica la importancia funcional de los receptores dopaminérgicos en el GSIS.Este gráfico muestra que la bromocriptina, un medicamento para la diabetes tipo 2, es más potente para inducir GSIS que la dopamina. Este gráfico muestra que con el aumento de la concentración de quinpirol, un agonista D2, aunque menos eficiente que la bromocriptina, muestra una potencia similar a la dopamina en la estimulación del GSIS. Una vez dominada, esta técnica se puede hacer en cuatro o cinco horas si se realiza correctamente.Al intentar este procedimiento, es importante recordar pipetear con cuidado y de manera constante. Después de este procedimiento, se pueden realizar otros ensayos funcionales, como el ensayo AMP HDRF cíclico, para responder a preguntas adicionales, como los efectos dopaminérgicos de los fármacos en la señalización posterior. Tras su desarrollo, esta técnica allanó el camino para que los investigadores en el campo del metabolismo exploraran otras vías de secreción endocrina tanto en líneas celulares inmortalizadas como en islotes pancreáticos.Después de ver este video, debería tener una buena comprensión de cómo medir con precisión la secreción de insulina de las células usando HDRF.

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Homogénea tiempo resuelto Förster Resonancia energía basada en la transferencia de ensayo para la detección de la secreción de insulina (Video) | JoVE Journal

Homogénea tiempo resuelto Förster Resonancia energía basada en la transferencia de ensayo para la detección de la secreción de insulina

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