24 de agosto de 2018
Este protocolo describe un método para el cultivo a gran escala de Caenorhabditis elegans en medios sólidos. Como alternativa a la cultura líquida, este protocolo permite la obtención de parámetros de diferentes escalas basadas en la placa de cultivo. Esto incrementa la comparabilidad de los resultados, omitiendo las diferencias morfológicas y metabólicas entre la cultura de los medios líquidos y sólidos.
En el campo de C. elegans, este método puede ayudar a responder preguntas clave que requieren la producción de grandes poblaciones de nematodos y muestras utilizando cultivo en placa. Las principales ventajas de este protocolo son su fácil establecimiento y su facilidad de descripción, incluidas las trampas y las aplicaciones. Después de obtener una población sincronizada de nematodos, agregue aproximadamente un mililitro de tampón M nine a las placas y distribuya cuidadosamente el tampón balanceando las placas.
Después de esto, recoja los nematodos en un tubo de 15 mililitros. Ahora, invierta el tubo y use un microscopio para evaluar la densidad de los nematodos. Ajuste la densidad de la suspensión según sea necesario y continúe evaluándola bajo el microscopio.
Aplique 150 microlitros de la suspensión directamente sobre las placas con puntas de pipeta modificadas. Para asegurar una distribución uniforme de nematodos entre las placas, invierta el tubo de suspensión a intervalos regulares. En primer lugar, lavar los nematodos con una punta de pipeta modificada con aproximadamente 500 microlitros de tampón M nine.
Usando el mismo tampón, continúe separando los nematodos hasta que la mayoría de los animales se recolecten en suspensión. A continuación, tome los nematodos con una punta de pipeta modificada y transfiéralos a una placa con OP50. Las puntas de pipeta modificadas disminuyen el esfuerzo cortante y el daño a los nematodos debido a un diámetro mayor.
Luego, deje que el plato se seque. Antes de recolectar muestras, prepare nitrógeno líquido para congelar los nematodos recolectados. A continuación, coloque el tampón M nine en hielo.
Aplique un mililitro de tampón M nine a cada plato y revuelva suavemente para lavar cada plato. Luego, tome el volumen del tampón M nine y transfiéralo a nuevos tubos de 15 mililitros. Centrifugar el tubo brevemente a 800 veces g, antes de eliminar la mayor parte del tampón M nine.
A continuación, lave las muestras tres veces con 10 mililitros de tampón M nine para eliminar las bacterias. Con una pipeta de vidrio, transfiera cada pellet a un tubo vacío de 1,5 mililitros. Utilice la pipeta de vidrio para extraer un mililitro de tampón M nine del segundo tubo de 1,5 mililitros, para enjuagar los nematodos de la pared de la pipeta.
Luego, lave los nematodos restantes de los tubos de 15 mililitros y transfiéralos a los tubos de muestra. A continuación, centrifugar los tubos de muestra a 19.000 veces g durante un minuto y eliminar la mayor cantidad posible de sobrenadante. Luego, selle cada tubo con una película de parafina y congélelos en nitrógeno líquido inmediatamente.
Guarde los tubos a menos 80 grados centígrados hasta la preparación del lisado. Agregue los mismos volúmenes de perlas de óxido de circonio de 0,5 milímetros y el doble del volumen de tampón de lisado con cóctel de inhibidores de proteinasa a cada muestra congelada. A continuación, coloque los tubos en un homogeneizador durante un minuto a velocidad nueve.
Centrifugar las muestras durante 30 minutos a cuatro grados centígrados y 19.000 veces g. Finalmente, transfiera el sobrenadante a un nuevo tubo en hielo y guárdelo a menos 80 grados Celsius para futuros experimentos. En este protocolo, se cultivaron grandes cantidades de C. elegans para su aplicación en la investigación de la diabetes.
El número de nematodos recolectados se correlacionó con el rendimiento de proteína del lisado, lo que demuestra que se puede lograr un aislamiento cuantitativo de proteínas reproducible utilizando este protocolo. Aquí se muestran los análisis de espectrometría de masas del metabolito reactivo metilglioxal y los productos finales de glicación avanzada formados por la exposición al metilglioxal. Se compararon los nematodos tratados con glucosa y los controles.
La transferencia de nematodos a través de una pipeta puede crear tensión de cizallamiento, lo que puede dañar a los nematodos. Los niveles de estrés oxidativo en nematodos pipeteados y nematodos transferidos con un alambre metálico no difirieron utilizando este protocolo. Siguiendo este procedimiento, se pueden realizar otros métodos como el western blot, con el fin de responder preguntas adicionales en proteómica.
Este protocolo también facilita experimentos que relacionan múltiples parámetros con la misma población.
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Este protocolo describe un método para el cultivo a gran escala de Caenorhabditis elegans en medios sólidos. Este enfoque facilita la producción de poblaciones y muestras grandes de nematodos, mejorando la comparabilidad de los resultados.
El cultivo a gran escala de C. elegans permite el aislamiento cuantitativo y reproducible de proteínas para el descubrimiento de biomarcadores relacionados con la diabetes, apoyando la validación de dianas en complicaciones neurodegenerativas. Este método proporciona un protocolo escalable y con mínimo estrés por cizalladura para el análisis proteómico de AGEs y ERO, directamente aplicable a la reducción mecanicista de riesgos en la fase inicial del descubrimiento de fármacos. Al facilitar la preparación sincronizada de poblaciones bajo condiciones controladas, mejora la confianza predictiva en modelos preclínicos de la patología diabética.
Este método se sitúa dentro del continuo de descubrimiento, desde la comprobación de hipótesis hasta la identificación de compuestos activos y la validación preclínica, apoyando específicamente la investigación sobre neurodegeneración relacionada con la diabetes.