Name: Entrega de Gene lentivirales asistida por láser ratón huevos fertilizados (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2018-11-01T14:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 3 s
Description: Aprenda a realizar entrega de genes lentivirales en huevos fertilizados de ratón mediante perforación láser de la zona pelúcida. Esta técnica eficiente permite desarrollar modelos animales transgénicos sin habilidades especializadas en micromanipulación.

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Esta investigación fue apoyada por el programa de investigación Intramural del Instituto Nacional de salud (NIH), nacional Instituto de Ciencias de salud ambiental (NIEHS). Agradecemos al Dr. Robert Petrovich y Dr. Jason Williams lectura crítica del manuscrito y consejos útiles. También nos gustaría reconocer y agradecer a Dr. Bernd Gloss, el núcleo de octavos de final, el servicio de citometría de flujo, la microscopía de fluorescencia y centro de la imagen y las instalaciones de la rama de medicina comparativa de la NIEHS por sus contribuciones técnicas. Nos gustaría agradecer al Sr. David Goulding desde la rama de medicina comparativa y la Sra. Lois Wyrick del centro de la imagen en el NIEHS por facilitarnos fotografías e ilustraciones.

Todos los animales procedimientos y tratamientos que se utilizan en este protocolo fueron cumpliendo con las directrices de cuidado de los animales de NIH/NIEHS y fueron aprobados por el cuidado Animal y el Comité uso (ACUC) en el NIH/NIEHS, Animal protocolo 2010-0004.
1. preparaciones
<ol><li>Prepara o compra recombinantes lentivirus no multiplicación llevando tu gen de interés. En este estudio, lentivirus SBI511 expresan la proteína fluorescente verde de copépodo (copGFP; abreviado a GFP) de un alargamiento factor 1a promotor fue usado para la transducción. Protocolos estándar2 fueron utilizados para producir y lentivirus título a concentraciones superiores de 1e8 transductoras unidades por mL (TU/mL). Nota: Tenga cuidado y blanquear todo el material que han estado en contacto con lentivirus. Consulte las directrices de su Instituto para el uso y manejo de los lentivirus.</li>
	<li>Configurar pares de crianza de la cepa de ratón deseado el día antes de la cosecha de embriones. En este experimento, se utilizó la cepa C57BL/6J de ratones. Utilizado para la colección de oviducto y los ovarios de ratones femeninos no fueron tratados con cualquier hormonas para la ovulación múltiple.</li>
	<li>2 – 24 h antes de la cosecha de huevos fertilizado de ratón, prepare varias placas de gota de24 (KSOM) potasio simple optimizado medio como sigue: Añadir una gota de 50 μL de medio KSOM en el centro de un plato de cultivo de tejidos tratados de 35 mm y cubrir con 2 mL de Dimetilpolisiloxano (DMPS5X) y en lugar a 37 oC, 5% CO2, 5% O2 y 90% N2 se equilibren. Nota: Utilizar platos desechables estériles y desechar después de la exposición a lentivirus.</li>
	<li>Preparar 1 x solución de hialuronidasa en medio M2 de solución madre (100 x, 30 mg/mL, almacenar a-20 ° C). 100 x solución fue preparada en agua.</li>
	<li>24 h post transducción asistida por láser de huevos fertilizado de ratón, configurar pares entre ratones machos y hembras vasectomía preparar seudopreñadas ratones hembra de cría.</li>
</ol>2. aislamiento del ratón huevos fertilizados
<ol><li>16 – 24 h post apareamiento, seleccione ratones hembra con tapones vaginales indicativos del éxito de apareamiento y eutanasia humanamente25. Los ratones utilizados en este estudio fueron sacrificados por dislocación cervical bajo CO2 o isoflurano inhalación profunda.</li>
	<li>Aislar los ovarios y oviductos según protocolos estándar25.</li>
	<li>Transferencia de los ovarios y oviductos en un plato de 35 mm que contiene medios M2.</li>
	<li>Para cada ovario, rasgón ampolla aparte para liberar óvulos fecundados rodeados de células del cúmulo.</li>
	<li>Transferencia de óvulos fecundados y células del cúmulo a un 35 mm plato que contiene hialuronidasa de x 1 en medio M2 e incuban a temperatura ambiente durante 3 a 5 min.</li>
	<li>Pipeta fertilizan huevos hacia arriba y hacia abajo para liberar las células del cúmulo.</li>
	<li>Transferencia de óvulos fecundados a un plato de 35 mm que contiene la pipeta hacia arriba y hacia abajo para lavar hialuronidasa y medios M2.</li>
	<li>Transferencia de óvulos fecundados a un plato de 35 mm que contiene KSOM y pipeta hacia arriba y hacia abajo para lavar los restantes medios de M2 y la hialuronidasa.</li>
	<li>Transferir huevos fertilizados a las placas de gota KSOM preparadas en el paso 1.3. Nota: Los huevos fertilizado de ratón en KSOM deben guardarse en una incubadora de cultivo de tejidos en 37 ° C, 5% CO2, 5% O2 y 90% N2 se equilibren. Quitar las placas de la incubadora durante más de 15 minutos puede causar daños a los embriones.</li>
	<li>Permiten huevos fertilizados recuperar durante 2 horas en la incubadora antes de pasar al siguiente paso.</li>
</ol>3. perforación de ratón fertilizado huevos con XYClone láser
<ol><li>Configurar y calibrar el laser de XYClone según las recomendaciones del fabricante. Otros láseres, que generalmente se utilizan para fertilización in vitro , pueden sustituirse por XYClone láser para perforar huevos fertilizados.<ol>
<li>Conecte el cable de caja de controlador de láser para el aparato de láser en el microscopio.</li>
		<li>Fije la caja del regulador del laser para el equipo que ejecuta el software del láser mediante un puerto USB. 3.1.3. Enchufe el controlador láser y enciéndalo.</li>
		<li>Mira por el ocular, perforar una muestra (p. ej. marcas de borrado en seco en un portaobjetos de vidrio).</li>
		<li>Utilice un destornillador pequeño (incluido en el kit de láser) para ajustar el X y Y del laser para que coincida con el LED de luz visible a través del ocular del microscopio y calibrar el láser.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Coloque una placa de gota KSOM que contengan huevos fertilizado de ratón en la platina del microscopio. No mantenga la placa fuera de la incubadora durante más de 15 minutos.</li>
	<li>Mire por el ocular del microscopio y zona pelúcida del embrión está en foco y el láser de luz LED es visible.</li>
	<li>Mover la platina del microscopio a la zona con la luz del LED/laser.</li>
	<li>Utilizando el programa informático conjunto XYClone láser a 250 μs.</li>
	<li>Ajustar el tamaño de luz de LED a las dimensiones deseadas (posición 5 en este experimento).</li>
	<li>Perforar la zona de cada óvulo fecundado tres veces con el láser. La zona puede ser traspasado o adelgazado. Utilizando la configuración de arriba, el láser produce un orificio con un diámetro de 10 μm (figura 2). Nota: Con el objetivo de cerca el cuerpo polar aleja láser las células embrionarias.</li>
	<li>Permiten huevos fertilizados recuperar durante 2 horas en la incubadora de cultivo de tejidos antes de pasar al siguiente paso.</li>
</ol>4. transducción de señales del ratón fertilizado huevos sigue la perforación láser de XYClone
<ol><li>Pipeta 2 μL de lentivirus concentrado (mayor que el título de 1e8 TU/mL) sobre la gota KSOM de 50 μL. No no la pipeta hacia arriba y hacia abajo. Huevos fertilizados se conecte fácilmente a la punta de la pipeta. Basándonos en nuestra experiencia, 1e5 5e5 unidades transductoras de lentivirus en un volumen de menos de 3 μL es óptimo para la entrega del gene.</li>
	<li>Permiten huevos fertilizados convertirse en blastocistos por 4 días en la incubadora. No hay necesidad de cambiar los medios de comunicación.</li>
</ol>5. non-surgical transferencia de embriones de ratón Transduced ratones pseudo-embarazada
<ol><li>Utilizar ratones seudopreñadas, día 3,5 después de aparearse, preparado en el paso 1.5.</li>
	<li>Utilice el dispositivo de transferencia de embriones no quirúrgico (NSET) para implantar embriones de ratón en ratones seudopreñadas.<ol>
<li>Utilizando un microscopio quirúrgico o disección, insertar un espéculo vaginal para visualizar el cuello uterino.</li>
		<li>Inserte el dispositivo de transferencia de embriones no quirúrgico (NSET) aproximadamente 5 mm en el cuello uterino y depósito de embriones en un volumen de aproximadamente 2 μL. Nota: Un dispositivo estéril de NSET es utilizado para cada transferencia y desechado después del procedimiento. Todos los reactivos utilizados en la manipulación de los embriones deben ser estériles.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Transferencia de blastocistos saludables 10 – 15 en el volumen 2 de μL de KSOM cada ratones seudopreñadas.</li>
	<li>Seguir supervisar y medir la ganancia de peso en ratones seudopreñadas en próximos días para determinar si el NSET fue exitosa.</li>
	<li>Recuperar cachorros por que los ratones embarazados a dar a luz naturalmente o realizar una cesárea 17 días después el embrión transferir26. Una cesárea es a menudo necesaria si existen muy pocos embriones y crecen demasiado grandes para el parto natural.</li>
	<li>Obtener tejido de cachorros para la genotipificación para determinar la tasa de transgénesis27.</li>
</ol>

<ol><li>Sakuma, T., Barry, M. A., Ikeda, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lentiviral+vectors%3A+basic+to+translational%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemical+Journal%22%5BJournal%5D)">Lentiviral vectors: basic to translational.</a> Biochemical Journal. 443 (3), 603-618 (2012).</li>
<li>Salmon, P., Trono, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Production+and+titration+of+lentiviral+vectors%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Protocols+in+Human+Genetics%22%5BJournal%5D)">Production and titration of lentiviral vectors.</a> Current Protocols in Human Genetics. , Chapter 12 Unit 12 10 (2007).</li>
<li>Lois, C., Hong, E. J., Pease, S., Brown, E. J., Baltimore, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Germline+transmission+and+tissue-specific+expression+of+transgenes+delivered+by+lentiviral+vectors%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Germline transmission and tissue-specific expression of transgenes delivered by lentiviral vectors.</a> Science. 295 (5556), 868-872 (2002).</li>
<li>Filipiak, W. E., Saunders, T. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Advances+in+transgenic+rat+production%5BTitle%5D)+AND+%22Transgenic+Research%22%5BJournal%5D)">Advances in transgenic rat production.</a> Transgenic Research. 15 (6), 673-686 (2006).</li>
<li>McGrew, M. J., Sherman, A., Lillico, S. G., Taylor, L., Sang, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+conservation+between+rodents+and+chicken+of+regulatory+sequences+driving+skeletal+muscle+gene+expression+in+transgenic+chickens%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Developmental+Biology%22%5BJournal%5D)">Functional conservation between rodents and chicken of regulatory sequences driving skeletal muscle gene expression in transgenic chickens.</a> BMC Developmental Biology. 10, 26(2010).</li>
<li>Zhang, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Production+of+transgenic+pigs+mediated+by+pseudotyped+lentivirus+and+sperm%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Production of transgenic pigs mediated by pseudotyped lentivirus and sperm.</a> PLoS One. 7 (4), e35335(2012).</li>
<li>Zhang, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transgenic+quail+production+by+microinjection+of+lentiviral+vector+into+the+early+embryo+blood+vessels%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Transgenic quail production by microinjection of lentiviral vector into the early embryo blood vessels.</a> PLoS One. 7 (12), e50817(2012).</li>
<li>Wassarman, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zona+pellucida+glycoproteins%5BTitle%5D)+AND+%22Annul+Review+of+Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Zona pellucida glycoproteins.</a> Annul Review of Biochemistry. 57, 415-442 (1988).</li>
<li>Clift, D., Schuh, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Restarting+life%3A+fertilization+and+the+transition+from+meiosis+to+mitosis%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Molecular+Cell+Biology%22%5BJournal%5D)">Restarting life: fertilization and the transition from meiosis to mitosis.</a> Nature Reviews Molecular Cell Biology. 14 (9), 549-562 (2013).</li>
<li>Fong, C. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Blastocyst+transfer+after+enzymatic+treatment+of+the+zona+pellucida%3A+improving+in-vitro+fertilization+and+understanding+implantation%5BTitle%5D)+AND+%22Human+Reproduction%22%5BJournal%5D)">Blastocyst transfer after enzymatic treatment of the zona pellucida: improving in-vitro fertilization and understanding implantation.</a> Human Reproduction. 13 (10), 2926-2932 (1998).</li>
<li>Nijs, M., Van Steirteghem, A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessment+of+different+isolation+procedures+for+blastomeres+from+two-cell+mouse+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Human+Reproduction%22%5BJournal%5D)">Assessment of different isolation procedures for blastomeres from two-cell mouse embryos.</a> Human Reproduction. 2 (5), 421-424 (1987).</li>
<li>Ribas, R. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+zona+pellucida+removal+on+DNA+methylation+in+early+mouse+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Biology+of+Reproduction%22%5BJournal%5D)">Effect of zona pellucida removal on DNA methylation in early mouse embryos.</a> Biology of Reproduction. 74 (2), 307-313 (2006).</li>
<li>Gordon, J. W., Scangos, G. A., Plotkin, D. J., Barbosa, J. A., Ruddle, F. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+transformation+of+mouse+embryos+by+microinjection+of+purified+DNA%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+National+Academy+of+Science+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Genetic transformation of mouse embryos by microinjection of purified DNA.</a> Proceedings of National Academy of Science U S A. 77 (12), 7380-7384 (1980).</li>
<li>Kaneko, T., Sakuma, T., Yamamoto, T., Mashimo, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simple+knockout+by+electroporation+of+engineered+endonucleases+into+intact+rat+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Simple knockout by electroporation of engineered endonucleases into intact rat embryos.</a> Scientific Reports. 4, 6382(2014).</li>
<li>Hosokawa, Y., Ochi, H., Iino, T., Hiraoka, A., Tanaka, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Photoporation+of+biomolecules+into+single+cells+in+living+vertebrate+embryos+induced+by+a+femtosecond+laser+amplifier%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Photoporation of biomolecules into single cells in living vertebrate embryos induced by a femtosecond laser amplifier.</a> PLoS One. 6 (11), e27677(2011).</li>
<li>Horii, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Validation+of+microinjection+methods+for+generating+knockout+mice+by+CRISPR%2FCas-mediated+genome+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Validation of microinjection methods for generating knockout mice by CRISPR/Cas-mediated genome engineering.</a> Scientific Reports. 4, 4513(2014).</li>
<li>Hamra, F. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Production+of+transgenic+rats+by+lentiviral+transduction+of+male+germ-line+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+National+Academy+of+Science+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Production of transgenic rats by lentiviral transduction of male germ-line stem cells.</a> Proceedings of National Academy of Science U S A. 99 (23), 14931-14936 (2002).</li>
<li>Kanatsu-Shinohara, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Production+of+transgenic+rats+via+lentiviral+transduction+and+xenogeneic+transplantation+of+spermatogonial+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Biology+of+Reproduction%22%5BJournal%5D)">Production of transgenic rats via lentiviral transduction and xenogeneic transplantation of spermatogonial stem cells.</a> Biology of Reproduction. 79 (6), 1121-1128 (2008).</li>
<li>Dann, C. T., Garbers, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Production+of+knockdown+rats+by+lentiviral+transduction+of+embryos+with+short+hairpin+RNA+transgenes%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Production of knockdown rats by lentiviral transduction of embryos with short hairpin RNA transgenes.</a> Methods in Molecular Biology. 450, 193-209 (2008).</li>
<li>Chandrashekran, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+generation+of+transgenic+mice+by+lentivirus-mediated+modification+of+spermatozoa%5BTitle%5D)+AND+%22FASEB+Journal%22%5BJournal%5D)">Efficient generation of transgenic mice by lentivirus-mediated modification of spermatozoa.</a> FASEB Journal. 28 (2), 569-576 (2014).</li>
<li>Woods, S. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laser-assisted+in+vitro+fertilization+facilitates+fertilization+of+vitrified-warmed+C57BL%2F6+mouse+oocytes+with+fresh+and+frozen-thawed+spermatozoa%2C+producing+live+pups%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Laser-assisted in vitro fertilization facilitates fertilization of vitrified-warmed C57BL/6 mouse oocytes with fresh and frozen-thawed spermatozoa, producing live pups.</a> PLoS One. 9 (3), e91892(2014).</li>
<li>Tanaka, N., Takeuchi, T., Neri, Q. V., Sills, E. S., Palermo, G. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Laser-assisted+blastocyst+dissection+and+subsequent+cultivation+of+embryonic+stem+cells+in+a+serum%2Fcell+free+culture+system%3A+applications+and+preliminary+results+in+a+murine+model%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Translational+Medicine%22%5BJournal%5D)">Laser-assisted blastocyst dissection and subsequent cultivation of embryonic stem cells in a serum/cell free culture system: applications and preliminary results in a murine model.</a> Journal of Translational Medicine. 4, 20(2006).</li>
<li>Martin, N. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((En+masse+lentiviral+gene+delivery+to+mouse+fertilized+eggs+via+laser+perforation+of+zona+pellucida%5BTitle%5D)+AND+%22Transgenic+Research%22%5BJournal%5D)">En masse lentiviral gene delivery to mouse fertilized eggs via laser perforation of zona pellucida.</a> Transgenic Research. 27 (1), 39-49 (2018).</li>
<li>Lawitts, J. A., Biggers, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Culture+of+preimplantation+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Enzymology%22%5BJournal%5D)">Culture of preimplantation embryos.</a> Methods in Enzymology. 225, 153-164 (1993).</li>
<li>Stein, P., Schindler, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+oocyte+microinjection%2C+maturation+and+ploidy+assessment%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Mouse oocyte microinjection, maturation and ploidy assessment.</a> Journal of Visualized Experiments. (53), (2011).</li>
<li>Nagy, A., Gertsenstein, M., Vintersten, K., Behringer, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Caesarean+section+and+fostering%5BTitle%5D)+AND+%22CSH+Protocols%22%5BJournal%5D)">Caesarean section and fostering.</a> CSH Protocols. 2006 (2), (2006).</li>
<li>Chum, P. Y., Haimes, J. D., Andre, C. P., Kuusisto, P. K., Kelley, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genotyping+of+plant+and+animal+samples+without+prior+DNA+purification%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Genotyping of plant and animal samples without prior DNA purification.</a> Journal of Visualized Experiments. (67), (2012).</li>
<li>Bin Ali, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improved+pregnancy+and+birth+rates+with+routine+application+of+nonsurgical+embryo+transfer%5BTitle%5D)+AND+%22Transgenic+Research%22%5BJournal%5D)">Improved pregnancy and birth rates with routine application of nonsurgical embryo transfer.</a> Transgenic Research. 23 (4), 691-695 (2014).</li>
<li>Liu, K. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Integrase-deficient+lentivirus%3A+opportunities+and+challenges+for+human+gene+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Gene+Therapy%22%5BJournal%5D)">Integrase-deficient lentivirus: opportunities and challenges for human gene therapy.</a> Current Gene Therapy. 14 (5), 352-364 (2014).</li>
<li>Sauvain, M. O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genotypic+features+of+lentivirus+transgenic+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Virology%22%5BJournal%5D)">Genotypic features of lentivirus transgenic mice.</a> Journal of Virology. 82 (14), 7111-7119 (2008).</li>
</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

La capacidad de los lentivirus para integrarse en su genoma de host hace un vector ideal para genes estable. Vectores lentivirales pueden llevar hasta 8,5 pares del kilobase (kbp) de material genético que puede acomodar a promotores celulares específicos o inducibles, marcadores o moléculas fluorescentes. Incorporado material genómico puede replicar como parte de su genoma huésped y regularse para expresar o desactivar en puntos de tiempo deseado. Estos vectores permiten control spatiotemporal sobre expresión génica en l...

Este método proporciona instrucciones detalladas para permeabilizing la zona pelúcida de los huevos fertilizado de ratón para acercar a las células embrionarias para la entrega del gene por lentivirus. Lentiviruses son diseñados por naturaleza para la entrega eficaz de genes a células de mamíferos. Infectar células divisorias y no se dividen e integrar el genoma lentivirales su anfitrión cromosomas1. La gama de las células del huésped lentivirales se expande fácilmente por pseudotyping los lentivirus recombinante con la glicoproteína del virus de la estomatitis vesicular (VSV-G), debido al amplio tropismo del VSV-G proteína2. Después de transducción, lentivirales genes estable están integrados y expresados como parte de sus cromosomas de host creando una herramienta ideal para la generación de animales transgénicos. Si se entrega a las células embrionarias de la etapa temprana, el genoma lentivirales es replica y expresa en todo el organismo. Transducción de lentivirales ha llevado a la producción de ratones, rata, pollo, codorniz y cerdo3,4,5,6,7 entre otras especies de transgénicos. El método típico de la entrega del gene lentivirales, sin embargo, requiere de técnicos especializados y equipo especializado para superar la barrera de la zona pelúcida que encapsula los embriones de etapa temprana. El objetivo general de este método es describir cómo permeabilizar la zona usando un laser para facilitar la entrega del gene lentivirales.
Huevos de mamíferos están rodeados por la zona pelúcida que se endurece después de fertilización para proteger los huevos fertilizados contra polyspermy y limitar las interacciones ambientales8,9. La zona forma una barrera que aleja de lentiviruses las células embrionarias hasta que los embriones están sombreados como blastocisto. Cultivado ratón fertilizado los huevos traman después de 4 días y debe ser implantado en ratones seudopreñadas antes de incubación para el desarrollo normal en los cachorros. Por lo tanto, para la transducción, los lentiviruses son microinyectados antes de la eclosión de la zona en la cavidad perivitelino, el espacio entre la zona y las células embrionarias.
La zona pelúcida se quita a menudo para fertilización in vitro de óvulos humanos para aumentar la tasa de fertilización del10. Sin embargo, remoción química de ratón zona pelúcida adversamente afecta el desarrollo del embrión de ratón y es perjudicial para las células embrionarias11,12. Otros métodos para la entrega de genes en huevos fertilizado de ratón superan la barrera de la zona pelúcida por microinyección directa de ADN en el núcleo de la célula del13. Microinyección pronuclear es un medio eficaz de entrega de genes a los embriones. Sin embargo, puesto que cada embrión se lleva a cabo en el lugar individualmente para microinyección, la práctica puede ser laborioso y desperdiciador de tiempo para un usuario novicio.
Otros métodos como la electroporación y photoporation son útiles para transitorio y a corto plazo entrega de genes ratón fertilizado huevos14,15,16. Estos métodos son ampliamente utilizados para la entrega de recombinasas y CRISPR Cas9 componentes. Sin embargo, electroporación y photoporation entrega de genes no puede utilizarse eficazmente para crear transgénicos. Espermatozoides que se recogen del epidídimo de ratón pinchado también pueden ser transduced por lentivirus y utilizados para la fertilización in vitro para producir animales transgénicos17,18,19, 20.
En el presente Protocolo, la entrega del gene lentivirales a embriones de ratón facilita permeabilizing la zona utilizando un láser. El láser de XYClone fue desarrollado como una ayuda para el cultivo de células madre embrionarias22y en vitro fecundación21 . Es un aparato pequeño que es fácil de configurar y fácil de usar. Una vez instalado en un microscopio, que ocupa el espacio de un objetivo y permite que el software que lo acompaña para apuntar el láser mientras mira a través de los oculares del microscopio (ver Protocolo: la sección 3). Una vez que la zona está perforado por el láser de XYClone, lentivirus pueden introducirse en los medios de cultivo para gene entrega23. Lentiviruses múltiples podrían utilizarse para ofrecer simultáneamente varios genes cromosómicos incorporación.
Este protocolo describe cómo aislar y cultura ratón huevos fertilizados, muestra el uso del laser para la perforación de la zona pelúcida y demuestra la transducción de células embrionarias de ratón por lentivirus.

<table><tbody><tr><td>Sistema de plásmido CD510B-1</td><td>Biosciences</td><td>CD510B-1</td><td>utilizado para empaquetar el lentivirus que expresa EF1a-copGFP</td></tr><tr><td>Dimetilpolisiloxano</td><td>Sigma</td><td>DMPS5X</td><td>cultivando embriones</td></tr><tr><td>hialuronidasa</td><td>Sigma</td><td>H3506</td><td>utilizado para eliminar células de cúmulos</td></tr><tr><td>XYClone Laser</td><td>Hamilton Thorne Biosciences</td><td></td><td>perforando huevos</td></tr> <tr><td>fertilizados de ratónDispositivo de transferencia de embriones no quirúrgico (NSET)</td><td>ParaTechs</td><td>60010</td><td>NSET de embriones</td></tr><tr><td><fuerte>KSOM medio</fuerte></td><td>Millipore</td><td>MR-020P-5F</td><td>cultivando embriones</td></tr><tr><td><fuerte>Composición de KSOM:</fuerte></td><td></td><td></td><td><fuerte>mg/100mL</fuerte></td></tr><tr><td>NaCl</td><td></td><td></td><td>555</td></tr><tr><td>KCl</td><td></td><td></td><td>18.5</td></tr><tr><td>KH2PO4</td><td></td><td></td><td>4.75</td></tr><tr><td>MgSO4 7H2O</td><td></td><td></td><td>4.95</td></tr><tr><td>CaCl2 2H2O</td><td></td><td></td><td>25</td></tr><tr><td>NaHCO3</td><td></td><td></td><td>210</td></tr><tr><td>Glucosa</td><td></td><td></td><td>3.6</td></tr><tr><td>Na-Piruvato</td><td></td><td></td><td>2.2</td></tr><tr><td>DL-Ácido láctico, sal</td><td></td><td></td> de sodio <td>0.174mL</td></tr><tr><td>10 mM EDTA</td><td></td><td></td><td>100&micro; L</td></tr><tr><td>Estreptomicina</td><td></td><td></td><td>5</td></tr><tr><td>Penicilina</td><td></td><td></td><td>6.3</td></tr><tr><td>0.5% rojo</td><td></td><td></td> fenol <td>0.1mL</td></tr><tr><td>L-Glutamina</td><td></td><td></td><td>14.6</td></tr><tr><td>MEM Aminoácidos Esenciales</td><td></td><td></td><td>1mL</td></tr><tr><td>MEM AA no esencial</td><td></td><td></td><td>0.5mL</td></tr><tr><td>BSA</td><td></td><td></td><td>100</td></tr><tr><td><fuerte>M2 medianamente</fuerte></td><td>Millipore</td><td>MR-015-D</td><td>cultivando embriones</td></tr><tr><td><fuerte>Composición de M2:</fuerte></td><td></td><td></td><td><fuerte>mg/100mL</fuerte></td></tr><tr><td>Cloruro de</td><td></td><td></td> calcio <td>25.1</td></tr><tr><td>Sulfato de magnesio (anhidro)</td><td></td><td></td><td>16.5</td></tr><tr><td>Cloruro de</td><td></td><td></td> potasio <td>35.6</td></tr><tr><td>Fosfato de potasio monobásico</td><td></td><td></td><td>16.2</td></tr><tr><td>Bicarbonato</td><td></td><td></td> de sodio <td>35</td></tr><tr><td>Cloruro de</td><td></td><td></td> sodio <td>553.2</td></tr><tr><td>Albúmina bovina</td><td>400</td>D-glucosa 100 Na-HEPES 54.3 Rojo fenol <td></td><td></td></tr><tr><td></td><td>1.1</td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ácido pirúvico</td><td></td><td></td><td>3.6</td></tr><tr><td>DL-ácido</td><td></td><td></td> láctico <td>295</td></tr></tbody></table>

entrega de gene lentivirales asistida por láser ratón huevos fertilizados

Laser-assisted Lentiviral Gene Delivery to Mouse Fertilized Eggs

Lentiviruses son eficientes vectores para la entrega de genes a células de mamíferos. Después de transducción, el genoma lentivirales estable se incorpora en el cromosoma del huésped y se pasa a la progenie. Así, son vectores ideales para la creación de líneas celulares estables, en vivo entrega de indicadores y transducción de los huevos sola célula fertilizada para crear animales transgénicos. Sin embargo, ratón huevos fertilizados y embriones de etapa temprana están protegidos por la zona pelúcida, una matriz de la glicoproteína que forma una barrera contra la entrega del gene lentivirales. Lentiviruses son demasiado grandes para penetrar en la zona y por lo general son entregados por microinyección de partículas virales en la cavidad perivitelino, el espacio entre la zona y las células embrionarias. El requisito para tecnólogos altamente capacitados y equipo especializado ha minimizado el uso de lentiviruses para la entrega de genes a los embriones de ratón. Este artículo describe un protocolo para permeabilizing los huevos fertilizado de ratón por la zona de perforación con láser. Perforación del laser no produce ningún daño a los embriones y permite lentiviruses acceder a las células embrionarias para la entrega del gene. Transduced embriones pueden convertirse en blastocistos in vitro y si implantados en ratones seudopreñadas, convertirse en crías transgénicas. El láser utilizado en este protocolo es eficaz y fácil de usar. Entregado por lentivirus estable los genes incorporan células embrionarias de ratón y son germinales transmisibles. Se trata de un método alternativo para la creación de ratones transgénicos que no requiere micromanipulación y microinyección de huevos fertilizados.

Desarrollo de los huevos fertilizado de ratón aislados/transduced puede comprobarse diariamente al microscopio (figura 1). Embriones sanos convierten en blastocisto dentro de 3 a 4 días. En este protocolo, 60 – 70% de los embriones convertirse en blastocisto23. De embriones transduced perforada por láser 114, 54 convertido en blastocisto (tasa del 47%) y 46 blastocistos expresan GFP (46/54 = 85%)23.
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Ratón huevos fertilizados y embriones de etapa temprana están protegidos por la zona pelúcida, una matriz de la glicoproteína que forma una barrera contra la entrega del gene. Este artículo describe un protocolo para perforar la zona con un láser para transducir las células embrionarias con vectores lentivirales y crear ratones transgénicos.

Entrega de Gene lentivirales asistida por láser ratón huevos fertilizados

Lentiviruses are efficient vectors for gene delivery to mammalian cells. Following transduction, the lentiviral genome is stably incorporated into the ...

Este es un método alternativo y fácil de usar para entregar genes de interés a los huevos de ratón fertilizados a través de la perforación láser de la zona pellucida y la entrega de genes lentivirales. La perforación asistida por láser del procedimiento de donante de ratón también puede aplicarse a los óvulos fertilizados de otras especies para facilitar la entrada de otros tipos de virus o reactivos de transfección. La principal ventaja de esta técnica es que no requiere habilidades especializadas para la micromanipulación y microinyección de los huevos de ratón fertilizados.Demostrar el procedimiento de aislamiento de óvulos de ratón fertilizado será Page Myers, un científico de investigación de la rama de Medicina Comparada en el NIEHS. 16 a 24 horas después del apareamiento, aislar los ovarios y ovucetos de ratones hembra con tapones vaginales, de acuerdo con los protocolos estándar. Cuando se hayan recogido todos los tejidos, desgarra la ampolla de cada ovario y libera los óvulos fertilizados, rodeados de células cumulous, y transfiere los huevos en células cumulous a un plato de 35 milímetros que contiene una x hialuronidasa en medio M2 fresco, para una incubación de tres a c

laser-assisted-lentiviral-gene-delivery-to-mouse-fertilized-eggs

Research

Investigación

JoVE Journal

Biology

Biología

Esta técnica quirúrgica ilustra la inyección de vectores de terapia génica y las células madre en el espacio subretiniano del ojo del ratón.

Inyección subretiniana de vectores de terapia génica y células madre en el ojo del ratón

Fuente: Lutz, D., et al. Evaluación de los parámetros de neuroplasticidad ultraestructural después de la transducción intrauterina del cerebro y la médula espinal del ratón en desarrollo. J. Vis. Exp. (2019).Este video demuestra la transducción viral mediante inyección en el útero en embriones de ratón. Se prepara una rata preñada para la cirugía y se hace una incisión en la línea media para exponer los cuernos uterinos. Se inyecta una mezcla de un virus que contiene el gen deseado y un tinte...

Transducción viral en el útero en un ratón

Fuente: Koza, P., et al. Generación de Ratones Transgénicos utilizando un Enfoque con Vector Lentiviral. J. Vis. Exp. (2020)Este video demuestra la administración asistida por microinyección de vectores lentivirales en embriones de rata fertilizados para lograr la integración estable de transgenes en la generación de ratas transgénicas.

Transducción de embriones fertilizados de rata mediante vectores lentivirales

Fuente: Chiarella, A. M. et. al., Represión de la transcripción génica mediante la redirección de la maquinaria celular con modificadores epigenéticos químicos. J. Vis. Exp. (2018)Este video demuestra la generación de células madre embrionarias de ratón modificadas genéticamente mediante la transducción con lentivirus. Las partículas lentivirales entregan un marcador de resistencia a antibióticos, lo que permite la integración genómica estable y la selección de células transducidas.

Generación de células madre embrionarias de ratón infectadas con lentivirus

Este video describe la inyección pronuclear de vectores lentivirales en el espacio perivitelina de un embrión de ratón fertilizado. El lentivirus contiene el transgén, que se incorpora al genoma del embrión fecundado, dando lugar finalmente a ratones transgénicos.

Inyección de perivitelina basada en vectores lentivirales: un método para transducir el gen de interés en ovocitos de ratón unicelulares fertilizados

En este video, demostramos la permeación asistida por láser de la capa protectora de la zona pelúcida en óvulos fertilizados de ratón para facilitar la entrega de genes lentivirales. El lentivirus permite la generación de animales transgénicos con un gen de interés integrado de forma estable en su genoma.

Administración de genes lentivirales asistida por láser: una técnica para permeabilizar óvulos fertilizados de ratón para facilitar la entrega de genes lentivirales

Este protocolo muestra cómo realizar la microinyección citoplasmática en cigotos de animales de granja. Esta técnica se puede utilizar para administrar cualquier solución en el embrión de una célula, como herramientas de edición del genoma para generar animales knockout.

Asistida por láser citoplasmática microinyección en el ganado cigotos

Estudios convencionales de pérdida de función de genes knockout animales han sido a menudo costoso y desperdiciador de tiempo. Basada en la electroporación CRISPR-mediada mutagénesis somática es una poderosa herramienta para entender gen funciona en vivo. Aquí, Divulgamos un método para analizar los fenotipos de nocaut en la proliferación de las células del cerebelo.

Mediada por CRISPR pérdida de función análisis en gránulo cerebeloso células usando en el útero electroporación basado en la transferencia de genes

Aquí, presentamos un protocolo para promover la integración del transgén y la producción de ratones transgénicos fundador con alta eficacia por una simple inyección de lentivirales vector en el espacio perivitelino de un ovocito fertilizado.

Lentivirales mediación producción de ratones transgénicos: un método Simple y altamente eficiente para el estudio directo de los fundadores

Este artículo tiene como objetivo proporcionar la metodología para la transgénesis lentiviral en embriones de rata utilizando múltiples inyecciones de una suspensión de virus en el espacio perivitelina cigota. Las ratas hembra que están apareadas con una cepa masculina fértil con un color de piel dominante diferente se utiliza para generar madres adoptivas pseudoembarazadas.

Generación de ratas transgénicas utilizando un enfoque vectorial lentiviral

Aquí presentamos un protocolo para desarrollar modelos de ratón modificados genéticamente utilizando células madre embrionarias, especialmente para ADN grande knock-in (KI). Este protocolo se ajusta utilizando la edición del genoma CRISPR / Cas9, lo que resulta en una eficiencia de KI significativamente mejorada en comparación con el método convencional de orientación de ADN linealizado mediado por recombinación homóloga.

Focalización génica altamente eficiente mediada por CRISPR/Cas9 en células madre embrionarias para desarrollar modelos de ratón manipulados genéticamente

Aprenda a realizar entrega de genes lentivirales en huevos fertilizados de ratón mediante perforación láser de la zona pelúcida. Esta técnica eficiente permite desarrollar modelos animales transgénicos sin habilidades especializadas en micromanipulación.

Entrega de Gene lentivirales asistida por láser ratón huevos fertilizados

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