Name: Diferenciación inducida de células similares a células M en monocapas de enteroide ileal derivadas de células madre humanas (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-07-26T14:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 34 s
Description: Aprende a diferenciar células M en monocapas ileales derivadas de células madre humanas mediante inducción con RANKL y TNF alfa. Este protocolo permite estudiar el desarrollo y función de células M en la inmunidad intestinal.

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Este trabajo fue apoyado por NIAID U19AI131126 al Dr. Isberg (Escuela de Medicina de la Universidad de Tufts) y al Dr. Kaplan (Universidad de Tufts); (JM es líder del Proyecto 2) y NIAID R21AI128093 a JM. ACF fue apoyado en parte por NIAID T32AI007077. SEB y MKE fueron apoyados por NIAID U19AI116497-05. Agradecemos a los miembros del laboratorio Mecsas, el laboratorio Ng, y al Dr. Isberg en la Escuela de Medicina de la Universidad de Tufts por sus discusiones útiles. <span style="font-size: 11pt; line-height: 115%; font-family: Calibri, sans-serif; color: black; background-image: initial; background-position: initial; background-size: initial; background-repeat: initial; background-attachment: initial; background-origin: initial; background-clip: initial;">La imagen confocal se realizó en el Tufts Center for Neuroscience Research, P30 NS047243.

Todos los métodos descritos aquí han sido aprobados por la Universidad Tufts IBC y el IRB.
1. Inducción de la diferenciación celular M en monocapas derivadas de enteroides ileales humanos
NOTA: Este protocolo utiliza enteroides ileales derivados de la biopsia de tejido humano. Consulte los protocolos publicados para conocer los métodos sobre cómo crecer y pasar estas células18,24. Los siguientes métodos para el desarrollo de monocapas fueron adaptados de Zou et al.24. Los métodos para inducir células M en cultivos derivados de enteroides ileales se adaptaron a partir de informes anteriores21,22,23. Todo el trabajo se lleva a cabo en una campana de cultivo de tejido estéril y las incubaciones se realizan en la incubadora de campana o cultivo de tejido como se indica. Consulte Tabla de materiales necesarios para preparar monocapas enteroideiales ileales y varios medios.
<ol><li>Crecer enteroides ileales durante 4-10 días en matriz extracelular (ECM) (ver Tabla de Materiales)(Figura 1), dependiendo de sus tasas de crecimiento intrínsecas, antes de sembrar sobre transolas.</li>
	<li>Recubrimiento de membranas transwell
	<ol>
<li>Coloque el número deseado de transpocillos en una placa de 24 pocillos creando un sistema de dos cámaras.</li>
		<li>Diluir ECM 25 veces en solución salina con fosfato estéril en frío (PBS) y añadir 100 l de solución diluida en frío en cada cámara superior en la membrana. NOTA: ECM y la solución diluida de ECM deben mantenerse en hielo hasta inmediatamente antes de la adición.</li>
		<li>Cubra la placa de 24 pocillos con tapa y coloque la placa en una incubadora de cultivo de tejido a 37 oC durante 2 h para permitir la solidificación de ECM en la membrana.</li>
		<li>Después de 2 h, retire la placa de la incubadora y colóquela en una campana de cultivo de tejido. Con pinzas estériles, invierta cada transpocor para eliminar suavemente la solución restante. Deje que las membranas se sequen en el capó con la tapa abierta mientras se recogen las células (pasos 1.3.1- 1.3.11).</li>
	</ol></li>
	<li>Disociación de los enteroides ileales en células individuales
	<ol><li>Retire la placa de los enteroides ileales de la incubadora y retire suavemente los medios de cultivo de cada pocal por aspiración al vacío o con una pipeta. NOTA: Un pozo de enteroides ileales que contienen aproximadamente 100 quistes sanos es suficiente para la semilla 1.5-2 pozos.</li>
		<li>Añadir 500 ml de hielo frío de 0,5 mM de ácido etilendiaminetetraacético (EDTA) a cada pocilido que contenga enteroides ileales suspendidos en ECM para romper el ECM. Pipetear hacia arriba y hacia abajo vigorosamente con un pipeteador P1000 establecido a 500 l para romper ECM liberando así enteroides ileales en la solución. Para mejorar la disolución de ECM, después de pipetear, agitar la placa vigorosamente a 4 oC durante 30 minutos.</li>
		<li>Recoger la solución de cada pozo en tubos cónicos de 15 ml. NOTA: Recoger hasta 10 pozos por tubo cónico de 15 ml para una óptima recolección de una sola célula.</li>
		<li>Pellet las células en una centrífuga a 140 x g y 4 oC durante 5 min. Pellet debe ser visible, pero se puede desalojar fácilmente, por lo que lentamente eliminar el sobrenadante por aspiración al vacío o con una pipeta. NOTA: Si le preocupa la pérdida de pellets y células, utilice una pipeta y guarde el sobrenadante en un tubo separado.</li>
		<li>Para digerir los enlaces de unión estrecha y dividir los enteroides ileales en células individuales, resuspenda el pellet en 500 ml de trippsina a temperatura ambiente por cada 5 pocillos recogidos en el paso 1.3.3. Usando un P1000, pipeta hacia arriba y hacia abajo para desagregar los grumos e incubar los tubos en un baño de agua de 37 oC durante 5 minutos o menos. NOTA: La optimización es necesaria para determinar la cantidad adecuada de tiempo necesario para incubar los tubos de modo que las células se rompan pero no se triprinen en exceso hasta el punto de que mueran. Utilice Trypan azul en el paso 1.3.9 para asegurarse de que las células son viables después del tratamiento con trippsina.</li>
		<li>Añadir 1 mL de DMEM/F12 avanzado con 10% de suero bovino fetal (FBS) por 500 ml de trippsina para inactivar la trippsina.</li>
		<li>Pipetear hacia arriba y hacia abajo con un P1000 establecido en 500 l al menos 50 veces contra el lado del tubo cónico para desagregar aún más los grumos restantes en células individuales.</li>
		<li>Coloque un colador de células de 40 m sobre un cónico de 50 ml y agregue 1 ml de DMEM/F12 avanzado con un 10% de FBS para mojar el colador celular. Pipetear la suspensión de una sola celda del cónico de 15 ml sobre el colador. Lave el colador con 1 ml de Advanced DMEM/F12 con 10% FBS.</li>
		<li>Transfiera las células que pasaron a través del colador celular desde el cónico de 50 ml a un nuevo tubo cónico de 15 ml. Durante el paso de centrifugación 1.3.10, el pellet celular se verá más fácilmente en un tubo cónico de 15 ml. Cuente las células usando un hemocaquímetro. Utilice Trypan blue para verificar que las celdas siguen vivas. Típicamente, >95% viabilidad se observa.</li>
		<li>Mientras cuenta las células, centrifugar las células en el nuevo tubo de 15 ml a 400 x g y la temperatura ambiente durante 5 minutos. Retire cuidadosamente el sobrenadante con una pipeta, de nuevo ahorrando el sobrenadante en caso de que el pellet se desaloje.</li>
		<li>Preparar medios de crecimiento completos modificados25 (medios MCMGF+) complementados con 10 M Y-27632. Resuspenda las células peletadas a 2,5 x 105 células/200 l en MCMGF+. Vea los comentarios en la discusión sobre la optimización del número de semilla de celda. NOTA: Los medios MCMGF+ son Advanced DMEM/F12 con 75% de medios condicionados con L-Wnt3a, 10% Medios acondicionados de R-spondin, 5% Medios acondicionados de Noggin, 1x Suplemento B27, 1x Suplemento N2, 1 mM N-acetilcisteína, 50 ng/ml ratón recombinante EGF, 500 nM A-8301, 10 nM [Leu15]-Gastrin I, HEPES de 10 mM, 2 mM glutaMAX y 1x penicilina/estreptomicina (opcional).</li>
		<li>Asegúrese de que las membranas recubiertas de ECM preparadas en el paso 1.2 se hayan secado completamente, según se evalúe a simple vista. Lavar la cámara superior con 200 ml de MCMGF+. Añadir 200 ml de solución celular en cada cámara superior.</li>
		<li>Añadir 700 s de MCMGF+ con 10 M Y-27632 a cada cámara inferior. Colocar la placa en una incubadora de cultivo detejido de 37oC con 5% de CO2.</li>
		<li>Después de 1 día de crecimiento, retire los medios de la cámara superior y sustitúyalos por 200 ml de MCMGF+ fresco, para evitar el crecimiento de múltiples capas celulares.</li>
	</ol></li>
	<li>Sustitución del medio
	<ol>
<li>Una vez que las monocapas son confluentes del 80 %, por lo general entre los días 1-3 posteriores a la sembración, sustituya los medios basolaterales por medios de diferenciación (DM) para los pozos de control (consulte el paso 1.4.2 para obtener más detalles) o con los medios de célulaM para los pozos de inducción de células M (consulte el paso 1.4.3 para obtener más detalles). Sustituya el soporte en la cámara superior por DM para ambas condiciones. NOTA: DM es DMEM avanzado/F12 con 5% de medios acondicionados Noggin, 1x B27 Suplemento, 1x N2 Suplemento, 1 mM N-acetilcisteína, 50 ng/mL ratón recombinante EGF, 500 nM A-8301, 10 nM [Leu15]-Gastrin I, 10 mM HEPES Buffer, 2 mM GlutaMAX, y 1x Penicillin/Streptomycin (opcional ). Los medios de célulaM M son DM complementados con 200 ng/mL RANKL y 50 ng/mL TNF.</li>
		<li>Para los pozos de control que no deben contener células M, agregue 200 ml de DM a la cámara superior y 700 l DM a la cámara inferior.</li>
		<li>Para inducir células M, agregue 200 s de DM a la cámara superior y 700 l de medios celulares M a la cámara inferior.</li>
		<li>Sustituya el soporte cada 2 días. Para pozos de control, reemplace DM en las cámaras superior e inferior. Para los pozos de células M, reemplace DM en la cámara superior y medios de células M en la cámara inferior. NOTA: Para el día 7 después de la sembración celular, las células M son completamente inducidas en las monocapas.</li>
	</ol></li>
</ol>2. Verificación de la diferenciación de células M por qRT-PCR
NOTA: Realice el siguiente trabajo en un espacio de banco estéril sin ARSa. Consulte la Tabla de materiales para obtener una lista de los materiales preferidos para qRT-PCR.
<ol><li>Retire el medio de las cámaras superior e inferior y lave la cámara superior 2 veces suavemente con 300 ml de PBS a temperatura ambiente.</li>
	<li>Añadir 300 s de Trizol a cada cámara superior. Incubar a temperatura ambiente durante 5 min. ADVERTENCIA: Use guantes y protección para los ojos cuando utilice Trizol para evitar el contacto con la piel como se indica en las instrucciones del fabricante.</li>
	<li>Mientras tanto, etiquete los tubos de microcentrífuga para cada pocal y agregue 700 ml de Trizol a cada tubo.</li>
	<li>Recoger el homogeneizador celular pipeteando 3 veces hacia arriba y hacia abajo suavemente con un P1000 y transferir el contenido al tubo de microcentrífuga correspondiente. Vórtice para 5 s para mezclar.</li>
	<li>Mantenga las muestras a temperatura ambiente durante 3 minutos adicionales. A continuación, almacenar a -80 oC durante un mes.</li>
	<li>Siga la metodología qRT-PCR estándar para el aislamiento de ARN, el tratamiento DNase, la transcripción inversa y las reacciones qRT-PCR. Consulte la lista de imprimación en Tabla de materiales.</li>
</ol>3. Verificación de la diferenciación celular M por inmunofluorescencia
NOTA: Mantenga siempre la cámara inferior de la placa llena de PBS para que las membranas permanezcan húmedas. Este procedimiento se realiza en el banco. Consulte la Tabla de Materiales para obtener una lista de los materiales preferidos para la inmunofluorescencia.
<ol><li>Retire el medio de la cámara superior y lave 2 veces suavemente con 300 ml de PBS a temperatura ambiente. Añadir 100 s de temperatura ambiente 4% PFA en PBS a la cámara superior. Cubra la placa con papel de aluminio y deje reposar durante 25 minutos a temperatura ambiente. Retire 4% PFA. ADVERTENCIA: El 4% de PFA debe eliminarse adecuadamente como residuos químicos peligrosos.</li>
	<li>Lavar la cámara superior 3x con 300 sL de PBS a temperatura ambiente. En este punto, las muestras pueden permanecer a 4 oC hasta un mes antes de la tinción. Una vez manchadas, las muestras deben visualizarse dentro de una semana para obtener imágenes de la mejor calidad.</li>
	<li>Incubar las monocapas con 100 l de albúmina sérica bovina (BSA) al 5% disuelta en PBS durante 30 minutos en la oscuridad a temperatura ambiente para bloquear las monocapas.</li>
	<li>Preparar la solución de anticuerpos primarios GP2 en 1% de BSA en PBS a una dilución de 1:100. Añadir 100 l por pozo. Mancha durante 1 h a temperatura ambiente en la oscuridad. Retire la solución. NOTA: No permeabilizar las monocapas antes de que se produzca la mancha primaria para GP2 porque se logra una tinción óptima de la superficie GP2 primaria de las células M sin permeabilización.</li>
	<li>Lave la cámara superior 3 veces con 300 ml de PBS a temperatura ambiente.</li>
	<li>Preparar la solución de manchas secundarias de IgG antiratón de cabra etiquetada fluorescentemente a 1:200, faloidina a 1:100 y DAPI en 1% BSA + 0.1% tritón en PBS. Añadir 100 l por pozo. Mancha durante 30 min a temperatura ambiente en la oscuridad. NOTA: Tritón se añade a la solución de manchas secundaria para permeabilizar las células durante este paso para una mancha de faloidina adecuada.</li>
	<li>Lavar 3 veces con PBS de 300 l.</li>
	<li>Coloque una gota de 5 l de solución de montaje (Tablade materiales)en una corredera de vidrio. Retire el pozo de la placa de 24 pocillos e invierta. Corte cuidadosamente la membrana del pozo usando un bisturí. Coloque la membrana con las células hacia arriba sobre la gota de solución de montaje en la corredera de vidrio. Añadir 10 l de solución de montaje en la parte superior y central de la membrana y colocar un cubreobjetos en la parte superior para sellar la membrana entre la corredera de vidrio y la cubierta.</li>
	<li>Secar los portaobjetos a temperatura ambiente en la oscuridad durante 24 h. Las diapositivas manchadas deben visualizarse en el microscopio confocal dentro de 1 semana después de la tinción.</li>
</ol>

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<li>Mantis, N. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+adherence+of+IgA+to+murine+Peyer%27s+patch+M+cells%3A+evidence+for+a+novel+IgA+receptor%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Immunology%22%5BJournal%5D)">Selective adherence of IgA to murine Peyer's patch M cells: evidence for a novel IgA receptor.</a> Journal of Immunology. 169 (4), 1844-1851 (2002).</li>
<li>Rios, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antigen+sampling+by+intestinal+M+cells+is+the+principal+pathway+initiating+mucosal+IgA+production+to+commensal+enteric+bacteria%5BTitle%5D)+AND+%22Mucosal+Immunology%22%5BJournal%5D)">Antigen sampling by intestinal M cells is the principal pathway initiating mucosal IgA production to commensal enteric bacteria.</a> Mucosal Immunology. 9 (4), 907-916 (2016).</li>
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</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

Para desarrollar monocapas que se diferencien adecuadamente en los principales tipos de células intestinales y células M, es fundamental tener en cuenta varios factores. Los enteroides ileales deben cosecharse de cultivos DeCM que son indiferenciados y tienen una alta proporción de células madre Lgr5+. Visualmente, la mayoría de los enteroides ileales en las referencias culturales ECM no deben oscurecerse y multilobulares, y la expresión LGR5 debe detectarse en estas referencias culturales mediante el análisis qRT-PCR. El control de calidad de los medios acondicionados es esencial para la propagación de cultivos indiferenciados a lo largo del tiempo y debe completarse para cada lote de medios acondicionados que se produce. El control de calidad se puede completar probando un nuevo lote de medios en algunos cultivos de ECM y comparando la morfología de los enteroides ileales con un lote anterior de medios en el transcurso de una semana. La expresión LGR5 debe seguir siendo relativamente similar en los cultivos enteroide ileales cultivados en el nuevo lote de medios en comparación con el lote anterior.
Durante la preparación de los enteroides ileales para la sembración en monocapas, es importante pipetear vigorosamente la solución celular después de la incubación con trippsina para dividir los enteroides ileales en células individuales. Los grumos celulares pueden conducir a la formación de varias capas cuando se sembran para monocapas. Además, es esencial determinar empíricamente el número de celdas necesarias para formar una monocapa para cada línea enteroide ileal individual que se obtiene. Típicamente, este valor puede variar de 2.5 x 105 – 5.0 x 105 células/bien, pero depende del grado de enteroides ileales quísticos a no quísticos en cultivos y varía para cada línea enteroide ileal individual. Por experiencia, los enteroides ileales cultivados en ECM que parecen menos quísticos requieren una mayor densidad de sembración celular para lograr monocapas. Es aconsejable lavar la cámara superior después de 1 día de crecimiento pipeteando suavemente los medios hacia arriba y hacia abajo 2-3 veces y reemplazando con medios de crecimiento fresco. Este proceso desaloja las células que han aterrizado encima de otras células, lo que reduce la probabilidad de formación de varias capas. Cambiar los medios de la cámara superior de los medios de crecimiento a los medios celulares M cuando las monocapas son confluentes del 80 %, lo que suele ocurrir en el día 2 posterior a la sembración, ayuda a lograr una buena diferenciación celular M. La adición de RANKL/TNF a la cámara superior durante la inducción de la célula M no conduce al desarrollo de un mayor número de células M por monocapa y, por lo tanto, se puede dejar fuera de los medios de la cámara superior. Transwells de diferentes tamaños de poros se pueden utilizar en este protocolo sin afectar el desarrollo de células M; sin embargo, la densidad de semilla celular debe optimizarse para aquellos con tamaños de poro smás grandes. El colágeno IV se puede sustituir por ECM como recubrimiento de proteína de membrana de sótano para transpocillos o placas de pozos que pueden ser más adecuados para ciertas aplicaciones.
Las monocapas derivadas de enteroides ileales en transolas proporcionan un sistema de dos cámaras que permite la creación de superficies apicales y basolaterales definidas de tal manera que los 4-5 tipos diferentes de células intestinales epiteliales pueden polarizar para expresar marcadores de superficie en cada lado relativo al que se encuentra en el intestino. Se pueden agregar factores adicionales a ambos lados, como partículas, agentes infecciosos u otros tipos de células. Sin embargo, hasta la fecha persisten algunas limitaciones. Como se describe, este sistema es un sistema estático que carece de flujo fisiológico, contracciones intestinales, y el contenido intestinal. Además, la arquitectura villus-crypt se pierde por la formación de una monocapa plana. Estos sistemas carecen de las regiones de parches de Peyer, las células inmunitarias y las células estromales. Si la falta de células inmunes y estromales que residen de cerca debajo de las células M afecta las invaginaciones que no se observan en este sistema y otro funcionamiento fisiológico es un área importante de investigación futura. Este protocolo se puede adaptar a una placa de 96 pocillos o a un formato de placa multipozo. El procedimiento para el recubrimiento de la placa de 96 pocillos con ECM y la sembración con células individuales de enteroides ileales sigue siendo el mismo que para los transpocillos. La valoración de la densidad de sembración celular necesaria para obtener monocapas debe hacerse, pero normalmente oscila entre 1.0 x 105 – 3.0 x 105 células/bien en un formato de placa de 96 pocillos. Las células M se inducen reemplazando los medios de crecimiento por medios celulares M cuando las monocapas son 80% confluente típicamente por los días 1-3 dependiendo de la densidad inicial de la semilla celular.
Este método de diferenciación de células M de enteroides ileales in vitro proporciona mejoras significativas sobre el método Caco-2. Los enteroides ileales son células primarias y al menos 4-5 tipos de células epiteliales están presentes en el sistema. Además, las líneas de enteroides ileales derivadas de diferentes personas se pueden estudiar para investigar cómo la genética o el estado de la enfermedad influyen en el desarrollo y el comportamiento de las células M. La manipulación adicional de los enteroides ileales durante la diferenciación celular M permitirá una mejor comprensión del desarrollo de la célula M, incluida la caracterización de células precursoras de células M. Por último, dado que los mecanismos moleculares de la fagocitosis de célulasM y la transocitosis todavía no se entienden completamente 3,29, este modelo proporciona la oportunidad de estudiar y visualizar la absorción de antígenos y partículas por las células M.

Las células M (microfold) son células epiteliales intestinales especializadas que se encuentran principalmente en el epitelio asociado al folículo (FAE) del intestino que cubre pequeñas regiones linfoides que se denominan parches de Peyer1. Las células M tienen microvilli apicalirregulares irregulares cortas y están profundamente invaginadas ensu lado basolateral, lo que permite que las células inmunitarias residan cerca de su cuerpo celular 2. Esta morfología única permite a las células M tomar muestras de antígeno dellumen apical del intestino y entregarlo directamente a las células inmunitarias subyacentes 2. De esta manera, las células M son importantes para la vigilancia inmune en el intestino, pero también pueden ser explotadas por patógenos para la entrada en la lámina propria1,2,3,4,5, 6,7.
El estudio de las células M se ha visto obstaculizado por varios factores. En primer lugar, las células M se encuentran a baja frecuencia en el ratón y el intestino humano8. En los sistemas de células cultivadas, las células similares a las células M se han inducido a diferenciar se dicultando co-cultivando una línea celular de adenocarcinoma polarizado, Caco-2, con linfocitos B de parches de ratón Peyer o la línea celular del linfoma de células B, Raji B9,10 . Esto da como resultado un subconjunto de células Caco-2 que expresan los marcadores de célulasM Sialyl Lewis Un antígeno y UEA-1 en el epitelio polarizado 9,10. (Estos marcadores también se expresan en las células de la copa en los tejidos intestinales, por lo que hoy en día se utilizan con menos frecuencia como marcadores de células M definitivas11,12.) Este sistema celular Caco-2-M se ha utilizado para estudiar la acumulación de partículas y la translocación de bacterias13,14. Sin embargo, las células Caco-2 son una línea celular establecida a partir de un adenocarcinoma intestinal grande con el factor de confunción que diferentes fuentes de células Caco-2 muestran diferentes fenotipos entre los laboratorios15. Además, es posible que no recapitulen completamente los niveles de transcripción de las células M verdaderas, ya que carecen de la expresión de los marcadores de células M actualmente conocidos GP2 y SpiB16. Por lo tanto, se necesitan modelos de cultivo adicionales y más fisiológicamente relevantes para poder estudiar el desarrollo y las funciones de las células M.
En los últimos diez años, el campo de los sistemas modelo derivados de enteroides del intestino ha estado avanzando rápidamente desde el descubrimiento inicial de que las células madre intestinales derivadas de la biopsia intestinal humana podrían autopropagarse y renovarse en cultivo 17 , 18. Es importante destacar que la eliminación de los factores de promoción de células madre de los medios de crecimiento permite que estos cultivos de células madre se diferencien en los muchos tipos de células que se encuentran en el intestino18. Además, los trabajos recientes sugieren la importancia de la señalización RANKL-RANK en el desarrollo de células M en el intestino19,20. El receptor RANK es un miembro de la familia DeNF de receptores que se expresa en células precursoras epiteliales en el intestino19, mientras que RANKL (el ligando del receptor RANK) es liberado por las células estromales de los parches del Peyer20. Dado que los tipos de células epiteliales presentes en los enteroides ileales no producen RANKL, la diferenciación celular M en los cultivos enteroideiales ileales puede deducirse mediante la adición de RANKL al medio de cultivo21,22. La inclusión de TNF en los medios de cultivo ayuda a apoyar el desarrollo de células M en enteroides ileales23. Aquí, describimos los métodos para inducir la diferenciación de células M en monocapas intestinales derivadas de enteroides ileales humanos. Nuestros métodos se basan en parte en modificaciones de los siguientes protocolos21,22,23.

<table><tbody><tr><td>[Leu15]-Gastrin I</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G9145</td><td>MCMGF+ y DM ingrediente Disolvente: PBS Concentración de stock: 10 &micro; M Concentración final: 10 nM</td></tr><tr><td>0,5 m EDTA</td><td>Invitrogen</td><td>15575020</td><td>Para la ruptura ECM Disolvente: PBS Concentración de material: 0,5 m Concentración final: 0,5 mM</td></tr><tr><td>40 &micro; filtro de células m</td><td>Corning</td><td>352340</td><td>Para excluir grumos de celdas individuales Solvente: Concentración de existencias: Concentración final:</td></tr><tr><td>A-8301</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>SML0788-5MG</td><td>MCMGF+ y DM ingrediente Disolvente: DMSO Concentración de existencias: 500 &micro; M Concentración final: 500 nM</td></tr><tr><td>DMEM/F12</td><td>Invitrogen</td><td>avanzado 12634-028</td><td>MCMGF+ y DM Medio basal Disolvente: Concentración de stock: Concentración final:</td></tr> <tr><td>Alexa Fluor 594 cabra anti-ratón IgG</td><td>Thermo Fisher</td><td>A-11005</td><td>Para tinción secundaria Solvente: Concentración de stock: Concentración final: 1:200</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 647 Phalloidin</td><td>Invitrogen</td><td>A22287</td><td>Tinción secundaria opcional para F-actina Disolvente: Concentración de stock: Concentración final: 1:100</td></tr><tr><td>B27 Suplemento</td><td>Invitrogen</td><td>17504-044</td><td>MCMGF+ y DM ingrediente Disolvente: Concentración de existencias: 50x Concentración final: 1x</td></tr><tr><td>Albúmina sérica bovina</td><td>Chem-Impex</td><td>00535</td><td>5% para solución de bloqueo Disolvente: PBS Concentración de existencias: Concentración final: 0,01</td></tr><tr><td>Cloroformo</td><td>Fisher Scientific</td><td>C298-500</td><td>Para aislamiento de ARN Disolvente: Concentración de existencias: Concentración final:</td></tr><tr><td>Cubreobjetos circulares</td><td>Thomas Scientific</td><td>1157B50</td><td>Para el montaje de membrana en portaobjetos de vidrio Solvente: Concentración de existencias: Concentración final:</td></tr> <tr><td>DAPI (4&prime;,6-diamidino-2-fenilindol)</td><td>Thermo Fisher</td><td>62247</td><td>Para tinción secundaria Solvente: PBS Concentración de existencias: 100x Concentración final: 1x</td></tr><tr><td>DEPC Libre de ARNasa tratada H2O</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP561-1</td><td>Para el aislamiento de ARN Disolvente: Concentración de existencias: Concentración final:</td></tr><tr><td>Kit de eliminación de ADN</td><td>Invitrogen</td><td>AM1906</td><td>Para el aislamiento de ARN Disolvente: Concentración de existencias: Concentración final:</td></tr> <tr><td>Alcohol etílico, 200 grados</td><td>Sigma Aldrich</td><td>EX0276-4</td><td>Para aislamiento de ARN Disolvente: Concentración de existencias: Concentración final:</td></tr><tr><td>Bisturí de plumas</td><td>VWR</td><td>100499-580</td><td>Para cortar membranas de transwells Disolvente: Concentración de stock: Concentración final:</td></tr><tr><td>Suero fetal bovino (FBS)</td><td>Gibco</td><td>26140079</td><td>Para inactivar tripsina Disolvente: Advanced DMEM/F12 Concentración de stock: 1 Concentración final: 0,1</td></tr><tr><td>Portaobjetos de vidrio</td><td>Mercedes Scientific</td><td>MER 7200/90/WH</td><td>Para el montaje de membrana en corredera de vidrio Disolvente: Concentración de existencias: Concentración final:</td></tr><tr><td>GlutaMAX</td><td>Invitrogen</td><td>35050-061</td><td>MCMGF+ y DM ingrediente Disolvente: Concentración de existencias: 200 mM Concentración final: 2 mM</td></tr><tr><td>Anticuerpo GP2</td><td>MBL International</td><td>D277-3</td><td>Tinción superficial para células M Disolvente: Concentración de existencias: Concentración final: 1:100</td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Invitrogen</td><td>15630-080</td><td>MCMGF+ y DM Ingrediente Disolvente: Concentración de existencias: 1 m Concentración final: 10 mM</td></tr><tr><td>IgA de suero humano</td><td>Lee BioSolutions</td><td>340-12-1</td><td>Para el análisis funcional de las células M Disolvente: PBS Concentración de existencias: 1 mg/mL Concentración final: 10 &micro; g</td></tr><tr><td>L-Wnt3a Línea de celdas de medios acondicionados</td><td>de ATCC</td><td>CRL-2647</td><td>Consulte la hoja de producto de ATCC para L Wnt&shy; 3A (ATCC CRL2647) para el protocolo de medios condicionados; Ingrediente MCMGF+ Solvente: Concentración de existencias: Concentración final: 75% en MCMGF+ 0% en DM</td></tr><tr><td>Matrigel, GFR, libre de fenol</td><td>Corning</td><td>356231</td><td>Matriz extracelular (ECM) Disolvente: Concentración de stock: Concentración final:</td></tr> <tr><td>EGF recombinante de ratón</td><td>Invitrogen</td><td>PMG8043</td><td>Ingrediente MCMGF+ y DM Disolvente: PBS Concentración de existencias: 50 y micro; g/mL Concentración final: 50 ng/mL</td></tr><tr><td>N2 Suplemento</td><td>Invitrogen</td><td>17502-048</td><td>MCMGF+ y DM ingrediente Disolvente: Concentración de existencias: 100x Concentración final: 1x</td></tr><tr><td>N-acetilcisteína</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A9165-5G</td><td>Ingrediente MCMGF+ y DM Disolvente: H2O Concentración de existencias: 500 mM Concentración final: 1 mM</td></tr><tr><td>Medios condicionados Noggin</td><td>Línea celular regalo del Dr. Gijs van den Brink (Universidad de Amsterdam)</td><td></td><td>Ref 30 para protocolo de medios condicionados; MCMGF+ y DM Ingrediente Solvente: Concentración de existencias: Concentración final: 5% en MCMGF+ 5% en DM</td></tr><tr><td>Paraformaldehído (PFA)</td><td>MP Biomedicals</td><td>2199983</td><td>Para la fijación de monocapas Disolvente: PBS Concentración de existencias: 0,16 Concentración final: 0,04</td></tr><tr><td>PBS, -Mg, -Ca</td><td>Corning</td><td>MT21040CV</td><td>Disolvente para 0,5 mM EDTA Disolvente: Concentración de existencias: Concentración final:</td></tr><tr><td>Penicilina/estreptomicina</td><td>Invitrogen</td><td>15140-122</td><td>Ingrediente opcional de MCMGF+ y DM Disolvente: Concentración de existencias: 100x Concentración final: 1x</td></tr><tr><td>Prolong Gold</td><td>Invitrogen</td><td>P36930</td><td>Solución de montaje antidecoloración Disolvente: Concentración de existencias: Concentración final:</td></tr><tr><td>Qiagen RNeasy Kit</td><td>Qiagen</td><td>74106</td><td>Para el aislamiento de ARN Disolvente: Concentración de existencias: Concentración final:</td></tr><tr><td>RANKL humano recombinante</td><td>Peprotech</td><td>310-01</td><td>Se utiliza para inducir células M Disolvente: H2O Concentración de existencias: 0,1 mg/mL Concentración final: 200 ng/mL</td></tr><tr><td>TNFa murino recombinante</td><td>Peprotech</td><td>315-01A</td><td>Se utiliza para inducir células M Disolvente: H2O Concentración de existencias: 5 mg/mL Concentración final: 50 ng/mL</td></tr><tr>Línea celular de<td>medios acondicionados con R-espondina</td><td>de Trevigen</td><td>3710-001-01</td><td>Consulte el manual del producto Trevigen Cultrex Rspo1 Cells (línea celular HA-R-Spondin1 293T) para conocer el protocolo de medios acondicionados; MCMGF+ Ingrediente Disolvente: Concentración de existencias: Concentración final: 10% en MCMGF+ 0% en DM</td></tr><tr><td>Anticuerpo IgA secundario antihumano</td> Jackson <td>Immuno Research</td><td>109-545-011</td><td>Para tinción secundaria Disolvente: Concentración de stock: Concentración final: 1:200</td></tr><tr><td>Super Script IV Transcriptasa inversa</td><td>Thermo Fisher</td><td>18091200</td><td>Para la conversión de ARN en ADN Disolvente: Concentración de existencias: Concentración final:</td></tr><tr><td>Insertos Transwell, 24</td><td>Greiner Bio-One</td> de buen tamaño <td>662641</td><td>0,4 y micro; m Tamaño de poro Solvente: Concentración de stock: Concentración final:</td></tr> <tr><td>TritonX-100</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T8787</td><td>No es necesario durante la tinción primaria GP2 Disolvente: 1% BSA Concentración de existencias: Concentración final: 0.001</td></tr><tr><td>15596018</td><td>de Invitrogen</td><td>TRIzol</td><td>para el aislamiento de ARN Solvente: Concentración de existencias: Concentración final:</td></tr><tr><td>TrypLE Express</td><td>Invitrogen</td><td>12605010</td><td>Tripsina para la descomposición de enteroides en células individuales Disolvente: Concentración de existencias: Concentración final:</td></tr><tr><td>Y-27632</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Y-0503</td><td>Ingrediente MCMGF+ en el día 0 Disolvente: H2O Concentración de existencias: 5 mM Concentración final: 10 &micro; M</td></tr><tr><td>GAPDH imprimación</td><td></td><td></td> directa <td>CATGAGAAGTATGACAACAGCCT</td></tr><tr><td>GAPDH imprimación</td><td></td><td></td> inversa <td>AGTCCTTCCACGATACCAAAGT</td></tr><tr><td>GP2 imprimación</td><td></td><td></td> directa <td>CAATGTGCCTACCCACTGGA</td></tr><tr><td>GP2 imprimación inversa</td><td>ATGGCACCCACATACAGCAC</td>imprimación <td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td>delantera LYZ</td><td>CGCTACTGGTGTAATGATGG</td></tr><tr><td>LYZ imprimación inversa</td><td></td><td></td><td>TTTGCACAAGCTACAGCATC</td></tr><tr><td>MUC2 imprimación</td><td></td><td></td> directa <td>ATGCCCTTGCGTCCATAACA</td></tr><tr><td>MUC2 imprimación</td><td></td><td></td> inversa <td>AGGAGCAGTCCGTCAAAG</td></tr><tr><td>SI imprimación</td><td></td><td></td> directa <td>TCCAGCTACTACTCGTGTGAC</td></tr><tr><td>SI imprimación</td><td></td><td></td> inversa <td>CCCTCTCTTGGGAATTGTTCTG</td></tr><tr><td>SPIB imprimación directa</td><td></td><td></td><td>CAGCAGCCGCTTTTAGCCAC</td></tr><tr><td>Imprimación</td><td></td><td></td> inversa SPIB <td>GCATATGCCGGGGGAACC</td></tr><tr><td>LGR5 imprimación</td><td></td><td></td> directa <td>TCAGTCAGCTGCTCCCGAAT</td></tr><tr><td>LGR5 imprimación</td><td></td><td></td> inversa <td>CGTTTCCCGCAAGACGTAAC</td></tr></tbody></table>

diferenciación inducida de células similares a células m en monocapas de enteroide ileal derivadas de células madre humanas

Induced Differentiation of M Cell-like Cells in Human Stem Cell-derived Ileal Enteroid Monolayers

Las células M (microfold) del intestino funcionan para transportar el antígeno desde el lumen apical hasta los parches subyacentes de Peyer y lamina propria donde residen las células inmunitarias y, por lo tanto, contribuyen a la inmunidad de la mucosa en el intestino. Se carece de una comprensión completa de cómo las células M se diferencian en el intestino, así como los mecanismos moleculares de la acumulación de antígenos por las células M. Esto se debe a que las células M son una población rara de células en el intestino y porque los modelos in vitro para las células M no son robustos. El descubrimiento de un sistema de cultivo de células madre autorenovador del intestino, llamado enteroides, ha proporcionado nuevas posibilidades para el cultivo de células M. Los enteroides son ventajosos sobre las líneas celulares cultivadas estándar porque se pueden diferenciar en varios tipos de células principales que se encuentran en el intestino, incluyendo células de copa, células Paneth, células enteroendocrinas y enterocitos. La citoquina RANKL es esencial en el desarrollo de células M, y la adición de RANKL y TNF-o a los medios de cultivo promueve un subconjunto de células de enteroides ileales para diferenciarse en células M. El siguiente protocolo describe un método para la diferenciación de células M en un sistema monocapa polarizado epitelial transwell del intestino utilizando enteroides ileales humanos. Este método se puede aplicar al estudio del desarrollo y la función de la célula M.

Los enteroides ileales cultivados en ECM son analizados visualmente y por qRT-PCR para su estado de salud relativo y estados de diferenciación como un medio de control de calidad para cultivos enteroides ileales y para su uso en monocapas. Los enteroides ileales indiferenciados cultivados en ECM parecen claros y quísticos en morfología, lo que indica la presencia de muchas células madre (Figura1A). Con el tiempo, los enteroides ileales indiferenciados cultivados en medios de crecimiento pueden adoptar un fenotipo intermedio donde algunos aparecerán quísticos y otros aparecerán opacos (Figura1B). Con frecuencia, nuestras muestras indiferenciadas se asemejan a las que se muestran en la Figura 1B en lugar de la Figura 1A. Estos cultivos intermedios contienen enterocitos más diferenciados terminalmente medidos por la expresión del marcador de enterocitos, la isomaltas de sucrasa (SI) y presumiblemente los enterocitos muertos extruidos en el lumen contribuyen a su aspecto denso. Los enteroides ileales se pueden utilizar en este estado intermedio para el desarrollo monocapa, pero debe tenerse en cuenta que la cantidad de células madre intestinales presentes en los cultivos puede ser baja, y algunos tipos de células diferenciadas pueden estar presentes (por ejemplo, véase qRT-PCR en muestras indiferenciadas cultivadas en ECM que se asemejan a la Figura 1B de la Figura 2). A modo de comparación, los enteroides ileales cultivados con medios de diferenciación en ECM durante más de 5 días aparecerán uniformemente oscurecidos y lobulares y las culturas con esta morfología no son buenas candidatas para la sembración de monocapas (Figura1C).
La expresión de genes de células madre y genes de diferenciación de células intestinales puede ser analizada por qRT-PCR como otro medio para evaluar el estado de salud de los enteroides ileales cultivados en ECM y sus capacidades de diferenciación una vez sembradas como monocapas en transolas. La expresión de un gen de células madre, LGR5, un gen de enterocitos, SI, un gen de células de copa, MUC2,y un gen de células Paneth, LYZ,se compara entre cultivos enteroide ileales indiferenciados cultivados en ECM y ileales diferenciados monocapas enteroide en presencia o ausencia de RANKL/TNF (Figura2). Mientras que los valores pueden diferir entre experimentos, la expresión de LGR5 debe disminuir después de la diferenciación de monocapas18,26. La expresión LGR5 no se detecta normalmente en las monocapas ileales diferenciadas sin RANKL y TNF para el día 7. Por el contrario, la expresión de marcadores de diferenciación de tipos de células específicas, como SI y MUC2, aumentan después de la diferenciación18. La expresión de LYZ generalmente disminuye después de la diferenciación en nuestras culturas. Si los cultivos enteroides ileales utilizados para hacer monocapas se parecen más a la Figura 1B que en la Figura 1A,los aumentos en los marcadores de diferenciación intestinal pueden ser modestos después de la diferenciación porque estos cultivos iniciales son heterogéneos en tipos de células intestinales y tienen un nivel basal más alto de SI y MUC2. Sin embargo, la diferenciación en monocapas todavía se produce como se evalúa por la pérdida de expresión de LGR5 y microscopía (ver más abajo). Además, la adición de RANKL y TNF a los medios de diferenciación reduce la pérdida de expresión LGR5 (Figura2). Paralelamente, la expresión de SI y MUC2 es ligeramente inferior a la de la condición diferenciada que carece de RANKL y TNF, aunque sus niveles aumentan por encima de la condición indiferenciada.
La diferenciación celular M en monocapas se determina tanto por qRT-PCR como por inmunofluorescencia utilizando dos marcadores específicos de células M, incluyendo la glicoproteína de superficie celular 2 (GP2) y el factor de transcripción SpiB21. La expresión de GP2 y SPIB se regula en las monocapas derivadas de enteroides ileales en presencia de RANKL y TNF y no se detecta en muestras tratadas no RANKL y TNF (Figura3). La expresión de estos marcadores también se puede normalizar a un pedazo de tejido intestinal pequeño22,si está disponible. Esto permite que el cambio de pliegue de estos marcadores de células M se comparen con el tejido que tiene células M en lugar de controlar monocapas que no tienen expresión de estos marcadores y permite la estandarización entre experimentos en un laboratorio. Las células M también se detectan por expresión superficial de GP2 por inmunofluorescencia (Figura4). Típicamente, en una monocapa confluente, se observan células de 1 a 5 M en un campo de microscopio dado con aumento de 40veces por los días 6 a 8 post-sembrado en muestras tratadas con RANKL y TNF (Figura4A-D). No se ve ninguna expresión GP2 en los ejemplos no tratados (Figura4E). La vista ortogonal del plano XZ superpuesta con una sonda de faloide muestra estructuras de actina que rodean cada celda y la expresión GP2 en la superficie apical de las células M (Figura4F-G). Este modelo recapitula la baja frecuencia de las células M que se encuentran en el intestino humano1,2,8. Para purificar y aislar las células M para su estudio posterior, las células M se pueden teñir mediante la expresión de superficie GP2 y clasificarse mediante FACS para celdas GP2+.
Las células M se unen y transportan el antígeno desdeel lumen intestinal a las células inmunitarias que residen debajo del epitelio 2. Secretory IgA producido en el intestino se une a las bacterias y puede unirse a la superficie apical de las células M para facilitar el transporte de los microbios27,28. Para determinar si las células M desarrolladas en este modelo son capaces de unirse a IgA, IgA sérico humano se añade a la cámara superior, se permite atar durante 1 h, y luego las monocapas están preparadas para el análisis de inmunofluorescencia. La presencia de IgA en las células M se visualiza utilizando un anticuerpo secundario conjugado por flúor que reconoce la pesada cadena de IgA sérica humana. Las células M tratadas con IgA durante 1 h tienen IgA unida a la superficie apical (Figura5A),mientras que las células M en pozos de control que sólo fueron tratadas con el anticuerpo secundario a IgA no tienen señal detectable (Figura5B). Además, IgA se une específicamente a la superficie apical de las células M y no se encuentra unida a ninguna célula que carezca de mancha de superficie GP2. Además, las células M tienen una actinadensa característicamente más corta en su superficie apical 2. Para analizar la morfología celular M en este modelo, las monocapas derivadas de enteroides ileales se cultivan durante 7 días y se cosechan para el análisis de inmunofluorescencia de F-actina utilizando faloidetina. Las mediciones de la intensidad de píxeles de actina se calculan para las células M y para las celdas no M que están directamente adyacentes a cada celda M utilizando el software ImageJ (Figura6A). La intensidad de Actin se reduce en las células GP2+ M en este modelo y una imagen representativa se muestra en la Figura 6B. En general, las células M desarrolladas en este modelo monocapa derivado de enteroideial es que tienen expresión génica característica, morfología y algunas funciones de células M de células M intestinales humanas, como la unión a IgA.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59894/59894fig01.jpg"> Figura 1: Morfología representativa de los enteroides ileales humanos en ECM de una semana después de la división. (A) Enteroides ileales indiferenciados claros y quísticos. (B) Fenotipo intermedio con algunos enteroides ileales quísticos y algunos enteroides ileales lobulares opacos. (C) Enteroides ileales oscuros y diferenciados lobulares. Imágenes tomadas a través de la lente de un microscopio de luz óptica con aumento 4x usando una cámara iPhone7. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59894/59894fig01large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59894/59894fig02.jpg"> Figura 2: Expresión relativa de células madre y marcadores de diferenciación de enteroides ileales humanos cultivados en ECM o diferenciados como monocapas. Los enteroides ileales se cultivaron durante 7 días en ECM (Indiferenciado) o se cultivaron y diferenciaron como monocapas sin (Diferenciado) o con RANKL y TNF (Diferenciado +R/T). Cultivos enteroide ileales o monocapas fueron cosechados en Trizol para la extracción de ARN. La expresión génica fue determinada por qRT-PCR y se expresa en relación con GAPDH. Los datos son un promedio de 3 pozos independientes de enteroides ileales o monocapas por condición. Las barras de error indican que no se detecta EL ND. La significancia estadística se determinó en valores transformados en registros utilizando ANOVA unidireccional con la prueba de comparaciones múltiples de Dunnett en comparación con el Indiferenciado. ** p &lt; 0.01, *** p &lt; 0.001 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59894/59894fig02large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59894/59894fig03.jpg"> Figura 3: Expresión relativa de marcadores específicos de células M GP2 y SPIB a partir de monocapas derivadas de enteroides ileales humanos. Las monocapas tratadas y no tratadas con enteroide humano tratadas y no tratadas fueron cosechadas en Trizol para la extracción de ARN después de 7 días después de la sembrada. La expresión génica fue determinada por qRT-PCR y se expresa en relación con GAPDH. Los datos son un promedio de 6 monocapas independientes por condición. Las barras de error indican que no se detecta EL ND. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59894/59894fig03large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59894/59894fig04.jpg"> Figura 4: Inmunofluorescencia de la expresión de GP2 superficial en células M en monocapas derivadas de enteroides ileales humanos a lo largo del tiempo. Las monocapas derivadas de enteroides humanos tratadas y no tratadas por RANKL/TNF se fijaron en un 4% de PFA y se teñiron para inmunofluorescencia en varios días indicados después de la sembración. Las imágenes se analizaron utilizando el software ImageJ. DAPI - Azul; Glicoproteína 2 (GP2) - Rojo. (A-D) Las monocapas tratadas RANKL/TNF en varios días posteriores a la sembración. (E) Monocapa no tratada cosechada en el día 7 después de la sembrada. (F-G) Plano ortopédico XZ de monocapas en el día 7 post-sembrado superpuesto con sonda de faloide para F-actin. Faloidina - Cian. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59894/59894fig04large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59894/59894fig05.jpg"> Figura 5: IgA se une específicamente a la superficie apical de las células M. Las monocapas derivadas de enteroides ileales humanos tratadas con RANKL/TNF se cultivaron durante 7 días y luego (A) tratadas con 10 g de IgA sérica humana durante 1 h o (B) tratadas con PBS solamente (sin control de IgA). Después de 1 h, las monocapas se lavaron 2 veces en PBS, se fijaron en 4% PFA, permeabilizado con 0.1% TritonX-100, y teñido para inmunofluorescencia. Las imágenes se analizaron utilizando el software ImageJ y son representativas de 3 experimentos independientes. DAPI - Azul; Glicoproteína 2 (GP2) - Rojo; Anticuerpo según el suero humano IgA - Green; Faloidina - Cian. Las flechas negras denotan IgA unida a la superficie apical de la célula M. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59894/59894fig05large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/59894/59894fig06.jpg"> Figura 6: Las células M han reducido la intensidad de la actina en comparación con las células adyacentes no M. Las monocapas derivadas de enteroides ileales humanos tratadas con RANKL/TNF se cultivaron durante 7 días y luego se fijaron en un 4% de PFA y se teñiron para inmunofluorescencia. (A) Usando ImageJ, las células GP2+ M se delinearon usando la Herramienta selección a mano alzada y las mediciones de Área y Densidad Integrada se tomaron en el canal Phalloidin. El mismo análisis se completó entonces para cada celda adyacente no M que vecino de la celda M. La Densidad Integrada Raw se dividió por el área de cada celda individual para su normalización. La densidad/área integrada promedio se calculó para cada celda adyacente no M para cada celda M. Las imágenes fueron analizadas a partir de 3 experimentos independientes; cada punto es una célula M o un promedio de celdas vecinas. Las barras de error indican SD. Se determinó la significancia estadística en los valores transformados en registro mediante una prueba t emparejada. p - 0.0001 (B) Imagen representativa del plano XZ a partir de la gráfica en A. Las imágenes se analizaron utilizando el software ImageJ. DAPI - Azul; Glicoproteína 2 (GP2) - Rojo; Faloidina - Cian. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/59894/59894fig06large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>

Este protocolo describe cómo inducir la diferenciación de células M en monocapas ileales derivadas de células madre humanas y métodos para evaluar su desarrollo.

Diferenciación inducida de células similares a células M en monocapas de enteroide ileal derivadas de células madre humanas

M (microfold) cells of the intestine function to transport antigen from the apical lumen to the underlying Peyer&#8217;s patches and lamina propria where ...

Falta una comprensión completa del papel que juegan las células M en la homeostasis intestinal y la defensa inmune, debido a la rareza de las células M en el intestino. La diferenciación inducida de células M en cultivos derivados de células madre intestinales humanas permitirá el estudio del desarrollo y las funciones de las células M. Para recubrir las membranas Transwell, coloque el número deseado de Transwells en una placa de 24 pozos, creando un sistema de dos cámaras.Diluir la matriz extracelular, o ECM, 25 veces en solución salina tamponada de fosfato estéril frío. A continuación, agregue 100 microlitros de solución diluida en frío en cada cámara superior sobre la membrana. Cubra la placa de 24 pozos con una tapa y coloque la placa en una incubadora de cultivo de tejido a 37 grados Celsius durante dos horas para permitir la solidificación de ECM en la membrana.Después de dos horas, retire la placa de la incubadora y colóquela en una capucha de cultivo de tejido. Con pinzas estériles, invierta cada Transwell para eliminar suavemente la solución restante. Deje que las membranas se sequen al aire en la campana con la tapa abierta mientras se recogen las células.Retire la placa de enteroides ileales de la incubadora y retire suavemente los medios de cultivo de cada pozo por aspiración al vacío o con una pipeta. Para romper el ECM, agregue 500 microlitros de hielo frío 0,5 EDTA milimétrico a cada pozo que contenga enteroides ileales suspendidos en ECM. Pipetear hacia arriba y hacia abajo vigorosamente con una pipeta P1000 en 500 microlitros para romper ECM, liberando así enteroides ileales en la solución.Recoger la solución de cada pozo en tubos cónicos de 15 mililitros. Pele las células en una centrífuga a 140G y cuatro grados Celsius durante cinco minutos. El pellet debe ser visible, pero se puede desalojar fácilmente, así que retire lentamente el sobrenadante por aspiración al vacío o con una pipeta.Para digerir los enlaces de unión estrechos y dividir los enteroides ileales en células individuales, resuspender el pellet en 500 microlitros de tripina a temperatura ambiente por cada cinco pozos recogidos. Usando una pipeta P1000, pipetear hacia arriba y hacia abajo para desagregar los grumos. Incubar los tubos en un baño de agua celsius de 37 grados durante cinco minutos o menos.Añadir un mililitro de DMEM F-12 avanzado con 10%FPS por 500 microlitros de tripina para inactivar la tripina. Pipetear hacia arriba y hacia abajo con un conjunto P1000 en 500 microlitros al menos 50 veces contra el lado del tubo cónico para desagregar aún más los grumos restantes en células individuales. Coloque un colador celular de 40 micras sobre un tubo cónico de 50 mililitros y agregue un mililitro de DMEM F-12 avanzado con 10%FPS para mojar el colador celular.Pipetear la suspensión de una sola célula del cónico de 15 mililitros sobre el colador. Lave el colador con un mililitro de DMEM F-12 avanzado con 10%FPS. Transfiera las células que pasaron por el colador celular desde el tubo cónico de 50 mililitros a un nuevo tubo cónico de 15 mililitros.Cuente las células usando un hemocicómetro. Centrifugar las células en el nuevo tubo de 15 mililitros a 400G durante cinco minutos a temperatura ambiente. El pellet celular debe ser visible.Retire cuidadosamente el sobrenadante con una pipeta, de nuevo salvando el sobrenadante en caso de que el pellet se desalojar. Resuspender el pellet celular en MCMGF plus con 10 micromolares Y27632. Asegúrese de que las membranas codificadas ecM se hayan secado completamente según lo evaluado a simple vista.Lave la cámara superior con 200 microlitros de MCMGF plus. A continuación, agregue 200 microlitros de solución celular en cada cámara superior. Añadir 700 microlitros de MCMGF plus con 10 micromolares Y27632 a cada cámara inferior.Coloque la placa en una incubadora de cultivo de tejido de 37 grados Celsius con 5%CO2. Después de un día de crecimiento, retire el medio de la cámara superior y sustitúyalos con 200 microlitros de MCMGF fresco más para evitar el crecimiento de múltiples capas celulares. Una vez que los monocapas son aproximadamente 80%confluentes, generalmente entre los días uno a tres después de la siembra, reemplace los medios basilaterales con medios de diferenciación para pozos de control, o con medios celulares M para pozos de inducción de células M.Sustituya el soporte de la cámara superior por un medio de diferenciación para ambas condiciones. Para verificar la diferenciación de células M por QRTPCR, primero retire el medio de las cámaras superior e inferior. Lave suavemente la cámara superior dos veces con 300 microlitros de PPS a temperatura ambiente.Añadir 300 microlitros de TRIzol a cada cámara superior, e incubar a temperatura ambiente durante cinco minutos. Mientras tanto, etiqueta los tubos de micro centrífuga para cada pozo, y añade 700 microlitros de TRIzol a cada tubo. Recoger el homogeneizar celular pipeteando suavemente hacia arriba y hacia abajo tres veces con un P1000, y transferir el contenido a los tubos de micro centrífuga correspondientes.Vórtice durante cinco segundos para mezclar. Mantenga las muestras a temperatura ambiente durante tres minutos adicionales y, a continuación, continúe con los protocolos QRTPCR estándar, o almacene muestras a 80 grados centígrados negativos. Para verificar la diferenciación de células M por inmunofluorescencia, primero, retire el medio de la cámara superior.Lavar suavemente dos veces con 300 microlitros de temperatura ambiente PBS. Añadir 100 microlitros de temperatura ambiente 4%PFA en PBS a la cámara superior. Cubra la placa con papel de aluminio y deje reposar durante 25 minutos a temperatura ambiente.Después de retirar el PFA, lave la cámara superior tres veces con 300 microlitros de temperatura ambiente PBS. Incubar las monocapas con 100 microlitros de 5%BSA disueltos en PBS durante 30 minutos en la oscuridad a temperatura ambiente para bloquear las monocapas antes de retirar la solución. Preparar la solución de anticuerpos primarios GP2 en un uno por ciento de BSA en PBS a una dilución de uno a 100, y añadir 100 microlitros por pozo.Manchar durante una hora a temperatura ambiente en la oscuridad, antes de retirar la solución. Lave la cámara superior tres veces con 300 microlitros de temperatura ambiente PBS. Preparar una solución de tinción secundaria de cabra con etiqueta fluorescente anti-ratón IgG faloideína y DAPI, y añadir 100 microlitros por pozo.Mancha durante 30 minutos a temperatura ambiente en la oscuridad. Lave los pozos tres veces con 300 microlitros de PBS. A continuación, coloque una gota de cinco microlitros de solución de montaje en un portaobjetos de vidrio.Retire el pozo de la placa de 24 pozos e invierta. Durante la extracción de la membrana del Transwell, la membrana debe permanecer completamente plana. Los golpes en la membrana evitan un sello firme en el portaobjetos de vidrio, y pueden afectar en gran medida la calidad de la imagen.Para asegurar el éxito, corte cuidadosamente la membrana del pozo usando un bisturí afilado. Coloque la membrana con las células mirando hacia arriba sobre la gota de la solución de montaje en el portaobjetos de vidrio. Agregue 10 microlitros de solución de montaje en la parte superior y central de la membrana, y coloque un resbalón de cubierta en la parte superior para sellar la membrana entre el portaobjetos de vidrio y el deslizamiento de la cubierta.Seque los portaobjetos a temperatura ambiente en la oscuridad durante 24 horas. Las células M son detectadas por expresión superficial de GP2 por inmunofluorescentes. Típicamente, en una monocapa confluente, una a cinco células M se observan en un campo de microscopio dado en aumento de 40X por días seis a ocho post siembra en muestras tratadas con RANKL y TNF alfa.No se ve ninguna expresión GP2 en las muestras no tratadas. La vista ortogonal del plano XZ superpuesta con una sonda de faloide muestra las estructuras de actina que rodean cada celda, y la expresión GP2 en la superficie apical de las células M. Este modelo recapitula la baja frecuencia de las células M que se encuentran en el intestino humano.Para determinar si las células M desarrolladas en este modelo son capaces de unirse a IgA, la presencia de IgA en las células M se visualiza utilizando un anticuerpo secundario conjugado con flúor que reconoce la cadena pesada de IgA sérica humana. Las células M tratadas con IgA durante una hora tienen IgA unida a la superficie apical, mientras que las células M en pozos de control que solo fueron tratadas con el anticuerpo secundario a IgA, no tienen señal detectable. Además, IgA se une específicamente a la superficie apical de las células M, y no se encuentra unido a ninguna célula que carezca de mancha superficial GP2.Además, las células M tienen característicamente más corta actina densa en su superficie apical. Cambiar a rankL TNF alfa suplementado medios de diferenciación cuando las monocapas son alrededor 80%confluente, es clave para lograr una buena diferenciación de células M. Esta técnica permitirá a los investigadores explorar cuestiones relacionadas con el desarrollo de células M, así como interacciones de patógenos del huésped y estudios de transporte de fármacos que involucran células M.

induced-differentiation-m-cell-like-cells-human-stem-cell-derived

Research

Investigación

JoVE Journal

Immunology and Infection

Inmunología e Infección

Describimos un método para establecer enteroides humanos a partir de criptas del intestino delgado y colonoides a partir de criptas de colon recogidas tanto de tejido quirúrgico como de biopsias. En este artículo metodológico, presentamos las modalidades de cultivo que son esenciales para el crecimiento y mantenimiento exitoso de enteroides y colonoides humanos.

Establecimiento de Human epitelial Enteroids y Colonoids de Whole Tejidos y Biopsia

Aquí, presentamos un protocolo cultura humana enteroide o monocapas de colonoid que tienen la función de la barrera intacta para estudiar las interacciones epiteliales microbiota de host a nivel celular y bioquímico.

Monocapas de Colonoid humano para estudiar las interacciones entre patógenos, comensales y epitelio Intestinal Host

Este protocolo permite la diferenciación de células pluripotentes humanas en organoides intestinales. El protocolo imita el desarrollo humano normal mediante la diferenciación de células en una población de endodermo definitivo, endodermo del intestino posterior y luego epitelio intestinal. Esto hace que el protocolo sea adecuado para estudiar tanto el desarrollo intestinal como las aplicaciones de modelización de enfermedades.

Generación de organoides intestinales derivados de hiPSC para aplicaciones de modelización del desarrollo y de enfermedades

Aquí, describimos la preparación de monocapas epiteliales intestinales derivadas de organoides humanos para estudiar la función de barrera intestinal, la permeabilidad y el transporte. Como los organoides representan la respuesta original del tejido epitelial a los estímulos externos, estos modelos combinan las ventajas de la capacidad de expansión de las líneas celulares y la relevancia y complejidad del tejido primario.

Monocapa epitelial derivada de organoides: un modelo in vitro clínicamente relevante para la función de barrera intestinal

En este protocolo, describimos cómo generar monocapas epiteliales primarias murine de los dos puntos directamente de criptas intestinales. Proporcionamos enfoques experimentales para generar monocapas confluentes en filtros permeables, monocapas confluentes para la cicatrización de heridas de arañazos y estudios bioquímicos, y monocapas dispersas y confluentes para análisis de inmunofluorescencia.

Generación De Monocapas Epiteliales Murinas Primarias De Colon De Criptas Intestinales

Aquí, se describen métodos detallados para generar, mantener y caracterizar organoides de intestino delgado y colon derivados de células madre pluripotentes humanas. Estos métodos están diseñados para mejorar la reproducibilidad, ampliar la escalabilidad y disminuir el tiempo de trabajo necesario para el recubrimiento y el paso de organoides.

Generación, mantenimiento y caracterización de organoides intestinales y colónicos derivados de células madre pluripotentes humanas

Este protocolo ofrece instrucciones detalladas para establecer organoides murinos del intestino delgado, aislar las células linfoides innatas tipo 1 de la lámina propia del intestino delgado murino y establecer cocultivos tridimensionales (3D) entre ambos tipos de células para estudiar las interacciones bidireccionales entre las células epiteliales intestinales y las células linfoides innatas tipo 1.

Cocultivo de organoides epiteliales del intestino delgado murino con células linfoides innatas

Describimos un protocolo que detalla el aislamiento de criptas colónicas murinas para el desarrollo de colonoides tridimensionales. Los colonoides establecidos se pueden diferenciar terminalmente para reflejar la composición celular del epitelio del huésped antes de recibir un desafío inflamatorio o ser dirigidos a establecer una monocapa epitelial.

Estudio de los efectos epiteliales de la inflamación intestinal in vitro en colonoides murinos establecidos

Los enteroides están emergiendo como un modelo novedoso para estudiar la fisiología y la fisiopatología de los tejidos, el desarrollo de fármacos y la medicina regenerativa. Aquí, describimos un sistema de cultivo derivado de enteroides 2D de células primarias bovinas que permite el cocultivo con tipos de células de tejido relevantes. Este modelo ofrece una ventaja traslacional para el modelado de la investigación gastrointestinal.

Generación de un sistema de cultivo monocapa bidimensional derivado de enteroide primario bovino para aplicaciones en investigación biomédica traslacional

Este estudio describe un protocolo para generar monocapas 2D de organoides porcinos derivados del intestino delgado y grueso. El crecimiento de estas monocapas se caracteriza por el aumento de los valores de TEER, lo que indica una sólida integridad epitelial. Además, estas monocapas exhiben respuestas secretoras fisiológicas en experimentos en cámara de Ussing después de la aplicación de forskolina.

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Aprende a diferenciar células M en monocapas ileales derivadas de células madre humanas mediante inducción con RANKL y TNF alfa. Este protocolo permite estudiar el desarrollo y función de células M en la inmunidad intestinal.

Diferenciación inducida de células similares a células M en monocapas de enteroide ileal derivadas de células madre humanas

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