Name: Un modelo de criolesiones para estudiar el infarto de miocardio en el ratón (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2019-09-19T14:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 29 s
Description: Aprende a crear un modelo de criolesión miocárdica en ratones para estudiar remodelación cardíaca y recuperación tras infarto. Este método genera tamaños de infarto uniformes y reproducibles para evaluar intervenciones terapéuticas.

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Agradecemos a Christiane Pahrmann por su asistencia técnica. D.W. fue apoyado por la Fundación Max Kade. T.D. recibió subvenciones de la Fundación Else Kr'ner (2012_EKES.04) y de la Deutsche Forschungsgemeinschaft (DE2133/2-1_. S. S. recibió becas de investigación de la Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG; SCHR992/3- 1, SCHR992/4-1).

Los animales recibieron atención humana de conformidad con la Guía para los Principios de los Animales de Laboratorio, preparada por el Instituto de Recursos Animales de Laboratorio, y publicada por los Institutos Nacionales de Salud. Todos los protocolos de animales fueron aprobados por la autoridad local responsable (el Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales de la Universidad de California en San Francisco (UCSF).
1. Cuidado de animales
<ol><li>Obtener ratones a la edad de 14 semanas con un peso aproximado de 27 g (por ejemplo, del Instituto de Animales de Laboratorio). NOTA: Los ratones BALB/c se utilizan para este artículo.</li>
	<li>Mantenga a los ratones en condiciones convencionales en armarios ventilados, alimentándolos con la comida estándar de ratones y agua autoclave ad libitum.</li>
</ol>2. Preparación del ratón
<ol><li>Utilice una cámara de inducción para anestesiar el ratón con isoflurano (3,5%).</li>
	<li>Retire el pelo sobre el pecho y el cuello usando una recortadora de pelo.</li>
	<li>Coloque el ratón en posición supina sobre una almohadilla calentada y mantenga la anestesia con una máscara facial que cubre la boca y la nariz del ratón.</li>
	<li>Compruebe la profundidad suficiente de la anestesia pellizcando los pies traseros y la cola para verificar la ausencia de reflejos.</li>
	<li>Inyectar buprenorfina subcutánea (0,03 mg/kg) para analgesia.</li>
	<li>Extienda las extremidades traseras y delanteras y fije su posición con cinta adhesiva.</li>
	<li>Con yodo de povidona, desinfecte la zona de afeitado, seguido de fregar con 80% de etanol. Repita este paso dos veces.</li>
	<li>Usa una tijera pequeña para hacer una incisión de la piel de la línea media desde el tercio inferior del esternón hasta la barbilla.</li>
	<li>Usa fórceps curvos y separa cuidadosamente los músculos alrededor del cuello para exponer la tráquea.</li>
	<li>Utilice una microtijera para realizar una traqueotomía entre el segundo y el tercer anillo de cartílago.</li>
	<li>Ajuste el ventilador a una frecuencia de ventilación de 110/min con un volumen de marea de 0,5 ml.</li>
	<li>Retire la mascarilla e inserte una cánula de plástico (20 G), conectada al respirador, en la tráquea. Ventilar al animal. NOTA: Asegúrese de que la cánula de ventilación no esté demasiado profunda confirmando la ventilación pulmonar bilateral.</li>
	<li>Usa cautery para separar el músculo pectoral derecho de su origen esternal entre la tercera y la séptima costilla.</li>
	<li>Utilice tijeras de resorte en ángulo lateral para cortar las costillas cuarta a sexta lo más cerca posible del esternón.</li>
	<li>Cauterizar la arteriamamaria, si el sangrado es visible.</li>
	<li>Disminuir el isoflurano al 2,5%.</li>
	<li>Diseccionar el tejido conectivo subyacente para obtener una visión clara de la cavidad torácica.</li>
	<li>Use fórceps contundentes para abrir el pericardio y exponer el corazón.</li>
	<li>Usa un mini retractor Goldstein para esparcir las costillas y mantener la cavidad torácica abierta.</li>
	<li>Levante el corazón de la cavidad torácica con una varilla contundente.</li>
	<li>Disminuir la tensión del retractor para reducir la abertura torácica y evitar que el corazón se caiga hacia atrás.</li>
	<li>Preenfriar la criosonda (3 mm de diámetro) durante 10 s.</li>
	<li>Aplique la criosonda en la pared anterior del ventrículo izquierdo y congele durante 10 s para generar un infarto de criolesión ventricular izquierda. NOTA: La criosonda se puede aplicar a diferentes paredes del corazón dependiendo de la pregunta científica y la necesidad.</li>
	<li>Irrigar la criosonda con salina a temperatura ambiente para separar la sonda de la pared ventricular izquierda.</li>
	<li>Utilice el retractor para agrandar la abertura torácica.</li>
	<li>Devuelva suavemente el corazón a la cavidad torácica con una varilla contundente.</li>
	<li>Retire el retractor y conecte la esternotomía con un solo nudo usando sutura 6-0.</li>
	<li>Cierre la cavidad torácica con sutura de carrera 6-0. Utilice una jeringa de 10 ml para evacuar el aire restante del pecho antes de atar el nudo.</li>
	<li>Adaptar la piel en el borde caudal y suturarla hasta el punto de la abertura traqueal con sutura de carrera (5-0).</li>
	<li>Establezca isoflurano en 1,5% y espere hasta que el animal gane respiración espontánea.</li>
	<li>Retire el catéter traqueal y vuelva a aplicar la mascarilla en la boca y la nariz del animal para mantener la anestesia.</li>
	<li>Cierre la incisión traqueal con un 8-0 Sutura.</li>
	<li>Vuelva a colocar los músculos ventrales del cuello a su posición para cubrir la tráquea.</li>
	<li>Completa la sutura de la piel.</li>
	<li>Añadir metamizol al agua potable (50 mg de metamizole por 100 ml) para la analgesia del dolor durante 3 días y controlar al animal diariamente. NOTA: El período de observación de este modelo es de 8 semanas. Asegúrese de seguir las pautas de su institución con respecto al régimen de analgesia.</li>
</ol>

<ol><li>Writing Group. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heart+Disease+and+Stroke+Statistics-2016+Update%3A+A+Report+From+the+American+Heart+Association%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Heart Disease and Stroke Statistics-2016 Update: A Report From the American Heart Association.</a> Circulation. 133 (4), 38-360 (2016).</li>
<li>de Alencar Neto, J. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Morphine%2C+Oxygen%2C+Nitrates%2C+and+Mortality+Reducing+Pharmacological+Treatment+for+Acute+Coronary+Syndrome%3A+An+Evidence-based+Review%5BTitle%5D)+AND+%22Cureus%22%5BJournal%5D)">Morphine, Oxygen, Nitrates, and Mortality Reducing Pharmacological Treatment for Acute Coronary Syndrome: An Evidence-based Review.</a> Cureus. 10 (1), 2114(2018).</li>
<li>Detry, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+pathophysiology+of+myocardial+ischaemia%5BTitle%5D)+AND+%22European+Heart+Journal%22%5BJournal%5D)">The pathophysiology of myocardial ischaemia.</a> European Heart Journal. 17, Suppl G 48-52 (1996).</li>
<li>Ertl, G., Frantz, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Healing+after+myocardial+infarction%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiovascular+Research%22%5BJournal%5D)">Healing after myocardial infarction.</a> Cardiovascular Research. 66 (1), 22-32 (2005).</li>
<li>Jugdutt, B. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ventricular+remodeling+after+infarction+and+the+extracellular+collagen+matrix%3A+when+is+enough+enough%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Ventricular remodeling after infarction and the extracellular collagen matrix: when is enough enough.</a> Circulation. 108 (11), 1395-1403 (2003).</li>
<li>Velagaleti, R. S., Vasan, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heart+failure+in+the+twenty-first+century%3A+is+it+a+coronary+artery+disease+or+hypertension+problem%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiology+Clinics%22%5BJournal%5D)">Heart failure in the twenty-first century: is it a coronary artery disease or hypertension problem.</a> Cardiology Clinics. 25 (4), 487-495 (2007).</li>
<li>Benjamin, E. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Heart+Disease+and+Stroke+Statistics-2017+Update%3A+A+Report+From+the+American+Heart+Association%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Heart Disease and Stroke Statistics-2017 Update: A Report From the American Heart Association.</a> Circulation. 135 (10), 146-603 (2017).</li>
<li>Morrissey, P. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+method+of+standardized+myocardial+infarction+in+aged+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Physiology-Heart+and+Circulatory+Physiology%22%5BJournal%5D)">A novel method of standardized myocardial infarction in aged rabbits.</a> American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 312 (5), 959-967 (2017).</li>
<li>Degabriele, N. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Critical+appraisal+of+the+mouse+model+of+myocardial+infarction%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Physiology%22%5BJournal%5D)">Critical appraisal of the mouse model of myocardial infarction.</a> Experimental Physiology. 89 (4), 497-505 (2004).</li>
<li>Chen, J., Ceholski, D. K., Liang, L., Fish, K., Hajjar, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Variability+in+coronary+artery+anatomy+affects+consistency+of+cardiac+damage+after+myocardial+infarction+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Physiology-Heart+and+Circulatory+Physiology%22%5BJournal%5D)">Variability in coronary artery anatomy affects consistency of cardiac damage after myocardial infarction in mice.</a> American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 313 (2), 275-282 (2017).</li>
<li>Reichert, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Murine+Left+Anterior+Descending+%28LAD%29+Coronary+Artery+Ligation%3A+An+Improved+and+Simplified+Model+for+Myocardial+Infarction%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments+%3A+JoVE%22%5BJournal%5D)">Murine Left Anterior Descending (LAD) Coronary Artery Ligation: An Improved and Simplified Model for Myocardial Infarction.</a> Journal of Visualized Experiments : JoVE. (122), e55353(2017).</li>
<li>Kim, S. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+murine+closed-chest+model+of+myocardial+ischemia+and+reperfusion%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments+%3A+JoVE%22%5BJournal%5D)">A murine closed-chest model of myocardial ischemia and reperfusion.</a> Journal of Visualized Experiments : JoVE. (65), e3896(2012).</li>
<li>Antonio, E. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Left+ventricle+radio-frequency+ablation+in+the+rat%3A+a+new+model+of+heart+failure+due+to+myocardial+infarction+homogeneous+in+size+and+low+in+mortality%5BTitle%5D)+AND+%22J+Card+Fail%22%5BJournal%5D)">Left ventricle radio-frequency ablation in the rat: a new model of heart failure due to myocardial infarction homogeneous in size and low in mortality.</a> J Card Fail. 15 (6), 540-548 (2009).</li>
<li>Ovsepyan, A. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modeling+myocardial+infarction+in+mice%3A+methodology%2C+monitoring%2C+pathomorphology%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Naturae%22%5BJournal%5D)">Modeling myocardial infarction in mice: methodology, monitoring, pathomorphology.</a> Acta Naturae. 3 (1), 107-115 (2011).</li>
<li>Ciulla, M. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Left+ventricular+remodeling+after+experimental+myocardial+cryoinjury+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Surgical+Research%22%5BJournal%5D)">Left ventricular remodeling after experimental myocardial cryoinjury in rats.</a> Journal of Surgical Research. 116 (1), 91-97 (2004).</li>
<li>Grisel, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+MRL+mouse+repairs+both+cryogenic+and+ischemic+myocardial+infarcts+with+scar%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiovascular+Pathology%22%5BJournal%5D)">The MRL mouse repairs both cryogenic and ischemic myocardial infarcts with scar.</a> Cardiovascular Pathology. 17 (1), 14-22 (2008).</li>
<li>Duerr, G. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+myocardial+remodeling+between+cryoinfarction+and+reperfused+infarction+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomedicine+and+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">Comparison of myocardial remodeling between cryoinfarction and reperfused infarction in mice.</a> Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2011, 961298(2011).</li>
<li>Ma, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intramyocardial+delivery+of+human+CD133%2B+cells+in+a+SCID+mouse+cryoinjury+model%3A+Bone+marrow+vs.+cord+blood-derived+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cardiovascular+Research%22%5BJournal%5D)">Intramyocardial delivery of human CD133+ cells in a SCID mouse cryoinjury model: Bone marrow vs. cord blood-derived cells.</a> Cardiovascular Research. 71 (1), 158-169 (2006).</li>
<li>Takagawa, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Myocardial+infarct+size+measurement+in+the+mouse+chronic+infarction+model%3A+comparison+of+area-+and+length-based+approaches%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Applied+Physiology+%281985%29%22%5BJournal%5D)">Myocardial infarct size measurement in the mouse chronic infarction model: comparison of area- and length-based approaches.</a> Journal of Applied Physiology (1985). 102 (6), 2104-2111 (2007).</li>
<li>van den Bos, E. J., Mees, B. M., de Waard, M. C., de Crom, R., Duncker, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+model+of+cryoinjury-induced+myocardial+infarction+in+the+mouse%3A+a+comparison+with+coronary+artery+ligation%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Physiology-Heart+and+Circulatory+Physiology%22%5BJournal%5D)">A novel model of cryoinjury-induced myocardial infarction in the mouse: a comparison with coronary artery ligation.</a> American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 289 (3), 1291-1300 (2005).</li>
</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

Este artículo describe un modelo de criolesión de ratón para investigar ACS y opciones farmacológicas y terapéuticas relacionadas.
El paso más crucial es la aplicación de la criosonda en el tejido cardíaco. La duración del contacto debe estar estrechamente controlada para obtener el tamaño óptimo del infarto y garantizar resultados reproducibles. El enfriamiento prolongado del miocardio conducirá a infartos de gran tamaño o perforación ventricular. Por el contrario, el tiempo de enfriamiento a...

El síndrome coronario agudo (SCA) es la principal causa de muerte en el mundo occidental1,2. La oclusión aguda de las arterias coronarias conduce a la activación de la cascada isquémica y la necrosis del tejido cardíaco afectado3. El miocardio dañado se sustituye gradualmente por tejido cicatricial no contrácteo, que se manifiesta clínicamente como una insuficiencia cardíaca4,5. A pesar de los recientes avances en el tratamiento de la SCA, la prevalencia de la insuficiencia cardíaca relacionada con la SCA y la SCA está aumentando, y las opciones terapéuticas son limitadas6,7. Por lo tanto, el desarrollo de modelos animales para estudiar ACS y sus complicaciones son de inmenso interés.
Hasta la fecha, el modelo animal más utilizado para estudiar la remodelación miocárdica inducida por ACS y ACS es la ligadura de la arteria coronaria descendente izquierda (LAD). La ligadura del LAD conduce a la isquemia aguda del miocardio, similar al tejido miocárdico humano durante el SCA.  Sin embargo, los tamaños infartos inconsistentes siguen siendo el talón de Aquiles de la ligadura LAD. La variación quirúrgica y la variabilidad anatómica del LAD conducen a tamaños infartos inconsistentes y dificultan la reproducibilidad y replicabilidad de este procedimiento8,9,10. Además, la ligadura laD tiene una alta mortalidad intra y postquirúrgica. A pesar de los esfuerzos recientes para mejorar la reproducibilidad y reducir la mortalidad11,12, todavía se necesitan un gran número de animales para evaluar adecuadamente las terapias anti-remodelación.
En los últimos años se han propuesto y estudiado modelos alternativos de ACS, incluyendo radiofrecuencia13,14 térmicas o lesiones criogénicas15,16,17,18. Los métodos actuales de criolesiones aplican una varilla metálica preenfriada en nitrógeno líquido para dañar el tejido cardíaco del sujeto15,16. Sin embargo, este procedimiento debe repetirse varias veces para generar un tamaño de infarto suficiente. Debido a la alta conductividad y baja capacidad de calor de la varilla en comparación con el tejido, la sonda se calienta rápidamente, y el tejido se enfría (y por lo tanto infarta) heterogéneamente. Para superar estas limitaciones, aquí describimos un modelo de crioinfarción utilizando un sistema de entrega de nitrógeno líquido de mano. Este modelo es reproducible, fácil de realizar y se puede establecer de forma rápida y fiable. Se genera una lesión infarto transmural reproducible independiente de la anatomía coronaria, que eventualmente conduce a una insuficiencia cardíaca. Este método es especialmente adecuado para estudiar el proceso de remodelación para la evaluación de nuevas estrategias terapéuticas farmacológicas y basadas en la ingeniería de tejidos.

<table><tbody><tr><td>Jeringa de 10 ml</td><td>Thermo Scientific</td><td>03-377-23</td><td></td></tr><tr><td>Sutura de prolene 5-0</td><td>Ethicon</td><td>EH7229H</td><td></td></tr><tr><td>6-0 Sutura de prolene</td><td>Ethicon</td><td>8706H</td><td></td></tr><tr><td>8-0 Sutura de etilona</td><td>Ethicon</td><td>2808G</td><td></td></tr><tr><td>Lanzas de absorción Herramientas de</td><td>ciencia fina</td><td>18105-01</td><td></td></tr><tr><td>BALB/c</td><td>El laboratorio Jackson</td><td>Número de inventario 000651</td><td></td></tr><tr><td>Bepanthen ungüento para ojos y nariz</td><td>Bayer</td><td>1578675</td><td>ungüento para los ojos</td></tr><tr><td>Betadine Solución</td><td>Betadine Purdue Pharma</td><td>NDC:67618-152</td><td></td></tr><tr><td>Pinzas romas</td><td>Herramientas de ciencia fina</td><td>18025-10</td><td></td></tr><tr><td>Buprenex</td><td>Reckitt Benckiser</td><td>Códigos NDC:&nbsp; 12496-0757-1, 12496-0757-5</td><td>Buprenorfina</td></tr><tr><td>Cryoprobe 3mm</td><td>Brymill Cryogenic Systems</td><td>Cry-AC-3 B-800</td><td></td></tr><tr><td>Ethanol 70%</td><td>Th. Geyer</td><td>2270</td><td></td></tr><tr><td>Pinzas curvadas</td><td>S & T</td><td>00284</td><td></td></tr><tr><td>Pinzas finas</td><td>Fine Science Tools</td><td>11251-20</td><td></td></tr><tr><td>Pinzas estándar</td><td>Fine Science Tools</td><td>11023-10</td><td></td></tr><tr><td>Sonda de anatomía macroscópica</td><td>Fine Science Tools</td><td>10088-15</td><td></td></tr><tr><td>Cortapelos</td><td>WAHL</td><td>8786-451A ARCO SE</td><td></td></tr><tr><td>Kit de cauterización</td> para alta temperatura <td>Bovie</td><td>18010-00</td><td></td></tr><tr><td>ISOFLURANO</td><td>Henry Schein Salud Animal</td><td>029405</td><td></td></tr><tr><td>Catéter IV 20G</td><td>B. Braun</td><td>603028</td><td></td></tr><tr><td>Mini-Goldstein Retractor</td><td>Fine Science Tools</td><td>17002-02</td><td></td></tr><tr><td>NaCl 0.9%</td><td>B.Braun</td><td>PZN 06063042&nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; &nbsp; Arte. Nr.: 3570160</td><td>solución salina</td></tr><tr><td>Portaagujas</td><td>Fine Science Tools</td><td>12075-14</td><td></td></tr><tr><td>Portaagujas, curvo</td><td>Aparato Harvard</td><td>72-0146</td><td></td></tr><tr><td>Novaminsulfon</td><td>Ratiopharm</td><td>PZN 03530402</td><td>Metamizole</td></tr><tr><td>Tablero de operaciones&nbsp;</td><td>Braintree Scientific</td><td>39OP</td><td></td></tr><tr><td>Reemplazable Punta Fina Tijeras</td><td>Bovie</td><td>H101</td><td></td></tr><tr><td>Tijeras</td><td>Fine Science Tools</td><td>14028-10</td><td></td></tr><tr><td>Ventilador para Animales Pequeños</td><td>Kent Scientific</td><td>RV-01</td><td></td></tr><tr><td>Tijeras de resorte - Angled to side</td><td>Fine Science Tools</td><td>15006-09</td><td></td></tr><tr><td>Microscopio quirúrgico</td><td>Leica&nbsp;</td><td>M651</td><td></td></tr><tr><td>Transpore Cinta Quirúrgica 3M</td><td></td><td>1527-1</td><td></td></tr><tr><td>Vannas Tijeras de Resorte Herramientas de</td><td>Ciencia Fina</td><td>15400-12</td><td></td></tr><tr><td>Vaporizador&nbsp;</td><td>Kent</td><td>Scientific VetFlo-1205S</td><td></td></tr></tbody></table>

un modelo de criolesiones para estudiar el infarto de miocardio en el ratón

A Cryoinjury Model to Study Myocardial Infarction in the Mouse

El uso de modelos animales es esencial para desarrollar nuevas estrategias terapéuticas para el síndrome coronario agudo y sus complicaciones. En este artículo, demostramos un modelo de infarto de criolesión murinos que genera tamaños de infarto precisos con alta reproducibilidad y replicabilidad. En resumen, después de la intubación y la esternotomía del animal, el corazón se levanta del tórax. La sonda de un sistema de administración de nitrógeno líquido portátil se aplica sobre la pared miocárdica para inducir la criolesión. La función ventricular deteriorada y la conducción eléctrica se pueden controlar con ecocardiografía o mapeo óptico. La remodelación miocárdica transmural de la zona infartada se caracteriza por la deposición de colágeno y la pérdida de cardiomiocitos. En comparación con otros modelos (por ejemplo, LAD-ligation), este modelo utiliza un sistema de entrega de nitrógeno líquido portátil para generar tamaños de infarto más uniformes.

El modelo infarto de criolesiones es adecuado para estudiar ACS y sus complicaciones. En este modelo se ven bajas tasas de mortalidad y una recuperación postquirúrgica eficiente. El daño miocárdico inducido por criolesiones reduce la función cardíaca, el desacoplamiento eléctrico y la remodelación transmural.
La ecocardiografía se puede utilizar para controlar la función cardíaca no invasivamente in vivo. En los corazones criolesionados, la ecocardiografía demuestra una reducción significativa...

Este artículo demuestra un modelo para estudiar la remodelación cardíaca después de la criolesión miocárdica en ratones.

Un modelo de criolesiones para estudiar el infarto de miocardio en el ratón

The use of animal models is essential for developing new therapeutic strategies for acute coronary syndrome and its complications. In this article, we ...

Este método es fiable para estudiar la generación de infarto de miocardio y una excelente plataforma para investigar la recuperación cardíaca después, por ejemplo, del trasplante de células madre. La principal ventaja de este procedimiento es que se puede utilizar para generar tamaños de infarto uniformes de una manera rápida, fácil y reproducible. En este modelo se pueden probar nuevas intervenciones experimentales, como las estrategias farmacológicas o las estrategias basadas en la ingeniería tisular.Y probar con éxito que las opciones se pueden confirmar aún más en modelos de animales grandes. Después de confirmar una falta de respuesta al reflejo del dolor en un ratón anestesiado de 27 gramos y 14 semanas de edad, utilice una recortadora de pelo para eliminar el pelaje del pecho y el cuello del animal y coloque el ratón en una posición supina sobre una almohadilla calentada. Tape las extremidades posteriores y las extremidades delanteras en una posición de águila extendida y utilice povidona-yodo secuencial y 80%exfoliantes de etanol para desinfectar la piel expuesta.Haga una incisión de la piel de la línea media desde el tercio inferior del esternón hasta la barbilla, y use fó

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Research

Investigación

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Medicine

Medicina

Este video muestra cómo utilizar un modelo rápido y fiable para estudiar los procesos patobiológicas y fisiopatológicos de la isquemia miocárdica.

LAD-Ligadura: un modelo murino de infarto de miocardio

Numerosas manipulaciones genéticas y / o inyecciones intramiocárdica de genes, proteínas, células, y / o los biomateriales se superponen a la dimensión del tiempo en los estudios de agudos de isquemia / reperfusión y la remodelación crónica en ratones. Este video ilustra los procedimientos de microcirugía de la isquemia / reperfusión, la ligadura permanente de la arteria coronaria, y los estudios de inyección intramiocárdica.

Ligadura de las arterias coronarias y la inyección intramiocárdica en un modelo murino de infarto

El trauma quirúrgico induce una respuesta inflamatoria. Las citocinas y los ligandos endógenos se sabe que modulan el tamaño del infarto de miocardio después de la isquemia y la reperfusión. Se presenta una versión modificada de tórax cerrado, el modelo murino de isquemia y reperfusión con pesas colgantes para minimizar los efectos de la toracotomía.

Un murino tórax cerrado modelo de isquemia y reperfusión miocárdica

Se introduce un método quirúrgico para inducir experimental de isquemia / reperfusión (I / R) lesión para simular el infarto de miocardio (MI) en modelos de ratón que permite una mayor claridad en el posicionamiento de la ligadura en la arteria descendente anterior izquierda (LAD) para aumentar la reproducibilidad de experimentos en ratones MI.

Un modelo murino de isquemia-reperfusión miocárdica lesión a través de la ligadura de la arteria descendente anterior

Este protocolo describe un modelo altamente reproducible de regeneración cardíaca por inducción quirúrgica de infarto de miocardio en el ventrículo izquierdo de ratones postnatales día 1. El método consiste en la inducción de anestesia hipotérmica y la ligadura de la arteria coronaria descendente anterior izquierda.

El infarto de miocardio en ratones recién nacidos, un modelo de regeneración cardiaca

Durante la cirugía de isquemia/reperfusión miocárdica murina, la colocación correcta de la ligadura oclusiva suele confirmarse mediante la observación visible de la palidez miocárdica. En este trabajo, se demuestra un método de confirmación electrocardiográfica de la isquemia y la reperfusión, para complementar la palidez miocárdica observada, en ratones machos C57Bl/6.

La confirmación de la isquemia miocárdica y reperfusión en ratones utilizando electrocardiografía de superficie del cojín

Aquí se describe un procedimiento quirúrgico que muestra cómo lograr la ligadura permanente de la arteria coronaria descendente izquierda-anterior en ratones. Este modelo es de gran relevancia para investigar la fisiopatología del infarto de miocardio y los procesos biológicos concomitantes.

Modelo de infarto de miocardio murino usando ligadura permanente de la arteria coronaria descendente anterior izquierda

Bajo la anestesia adecuada, el corazón del ratón se exteriorizó a través del espacio intercostal, y el infarto de miocardio se indujo con éxito mediante la ligadura de la arteria descendente anterior (DA) izquierda utilizando materiales fácilmente disponibles en la mayoría de los laboratorios.

Un método simple modificado para la inducción de infarto de miocardio en ratones

En este trabajo describimos un método sencillo y reproducible que puede inducir infarto de miocardio o lesión por isquemia-reperfusión miocárdica en ratones mediante ligadura de precisión de la arteria coronaria descendente anterior izquierda mediante micromanipulación.

Inducción de infarto de miocardio y lesión por isquemia-reperfusión miocárdica en ratones

Aquí se presenta un procedimiento quirúrgico para la ligadura permanente de la arteria coronaria izquierda en ratones. Este modelo se puede utilizar para investigar la fisiopatología y la respuesta inflamatoria asociada después del infarto de miocardio.

Ligadura de la arteria coronaria izquierda: un modelo murino quirúrgico de infarto de miocardio

Aprende a crear un modelo de criolesión miocárdica en ratones para estudiar remodelación cardíaca y recuperación tras infarto. Este método genera tamaños de infarto uniformes y reproducibles para evaluar intervenciones terapéuticas.

Un modelo de criolesiones para estudiar el infarto de miocardio en el ratón

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