13 de mayo de 2020
Descrito es el método de cultivo celular y exposición de un modelo bronquial in vitro para la exposición realista y repetida a partículas para pruebas de toxicidad.
Este protocolo describe cómo cultivar y exponer células epiteliales bronquiales humanas a través del aire. Este es un modelo más realista para estudiar la exposición del pulmón a las partículas inhaladas. Las células pulmonares se preparan con estos métodos, para parecerse al entorno real en el pulmón. Las células producirán moco, formarán una barrera hermética y permanecerán viables durante varias semanas. Este método se puede utilizar para estudiar los efectos tóxicos de las partículas en el aire. También se puede utilizar para estudiar enfermedades infecciosas de las vías respiratorias y fármacos tomados por inhalación. Cuando intente este protocolo por primera vez, tenga en cuenta que generar un ágil requiere el conocimiento de un especialista. También requiere un equipo dedicado a la medición. Comience diluyendo las células en un medio de cultivo celular precalentado o CCM, hasta una concentración de 500.000 células por mililitro para insertos de 6 pocillos. Y 250.000 células por mililitro para insertos de 12 pocillos. Coloque una placa de cultivo celular con insertos en condiciones asépticas y llene el lado lateral basal con CCM precalentado. Después de mezclar la suspensión celular, pipetee la parte superior de la membrana en el inserto de cultivo celular. Cubra la placa e incube a 37 grados centígrados y 5% de dióxido de carbono. Cultivar las células en condiciones sumergidas durante siete días, para permitir que alcancen la confluencia, cambiando el MCP cada dos o tres días. Para medir la resistencia eléctrica transepitelial, utilice un voltohmímetro epitelial cargado, complementado con un juego de electrodos de palillo. Limpie los electrodos con etanol al 70%. Coloque el electrodo más largo en el medio de cultivo externo, hasta que toque el fondo de la placa. Y el electrodo más corto en el medio, sin tocar la membrana. Comience a recopilar mediciones en el inserto vacío sin celdas. Espere hasta que la medición se estabilice y anote la resistencia en ohmios. Esta medida es la resistencia de la membrana del inserto sin ninguna celda o resistencia en blanco. Repita la medición para cada plaquita y reste la resistencia de la pieza en bruto para obtener la resistencia real, y multiplíquela por el área de superficie de la plaquita. Retire el medio del lado apical de los insertos y agregue CCM precalentado al lado basolateral del pocillo. El medio debe tocar la membrana desde la parte inferior, pero no debe filtrarse a la parte superior del inserto. Cultive las células en la interfaz aire-líquido de la incubadora, a 37 grados centígrados y 5% de dióxido de carbono durante siete días. Cambiar el medio basolateral cada dos o tres días. Poco antes de la exposición a las partículas, prepare una suspensión de nanopartículas al 1%. Humedecer previamente los NP con etanol al 96%. Añada agua pura hasta una concentración final del 1% de NPs. Coloque el vial en un vaso de precipitados sobre hielo. Sonicar la suspensión durante 16 minutos, agregar un revuelto a la botella con la dispersión, luego conectar la botella a una bomba peristáltica a través de un pequeño tubo y ajustar el flujo a 25 mililitros por hora. Un día antes de la exposición, encienda la estación de exposición automática o AES y deje que el gabinete alcance una temperatura de 37
Este estudio se centra en el desarrollo de un modelo bronquial in vitro para simular la exposición repetida por inhalación a partículas en suspensión en el aire, con fines de pruebas de toxicidad. Las células epiteliales bronquiales humanas cultivadas muestran una viabilidad prolongada y una producción realista de moco, lo que hace que el modelo sea adecuado para estudios toxicológicos e investigaciones sobre enfermedades infecciosas.
Los modelos realistas in vitro del epitelio bronquial son fundamentales para las pruebas predictivas de toxicidad por inhalación y la investigación sobre la administración de fármacos por vía respiratoria. El sistema de interfase aire-líquido (ALI) con células Calu-3 permite estudios de exposición repetida y de baja dosis que imitan estrechamente las condiciones de las vías respiratorias humanas, lo que favorece una mayor confianza en la traslación clínica durante la evaluación temprana de compuestos. Este enfoque responde a la necesidad de modelos fisiológicamente relevantes y reproducibles en las etapas de desarrollo biofarmacéutico respiratorio.
Este modelo bronquial ALI se integra en la continuación descubrimiento-a-préclínico para terapéuticas respiratorias y toxicología de inhalación.