Name: Estimulación del estallido auricular transesofágico para la inducción de la fibrilación auricular en ratas (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-02-14T15:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 12 s
Description: Aprende a inducir fibrilación auricular en ratas mediante estimulación transesofágica. Este protocolo permite estudiar la patofisiología y evaluar nuevas estrategias terapéuticas en corazones sanos o remodelados.

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Este trabajo fue apoyado por una subvención del Ministerio de Educación e Investigación de Rumania, CNCS - UEFISCDI, número de proyecto PN-III-P1-1.1-TE-2019-0370, dentro de PNCDI III.

Los procedimientos que involucran sujetos animales fueron aprobados por el Comité de Ética de la Universidad de Medicina, Farmacia, Ciencia y Tecnología "George Emil Palade" de Târgu Mureș, por la Autoridad Nacional Veterinaria y de Seguridad Alimentaria Sanitaria de Rumania y cumplieron con las directrices del Consejo Internacional para la Ciencia de los Animales de Laboratorio (Directiva 2010/63 / UE).
1. Protocolo de estimulación de ráfaga auricular transesofágica
<ol><li>Aleatorice ratas Wistar macho adultas (200-400 g de peso corporal) en dos grupos: STIM y SHAM.</li>
	<li>Anestesiar a los animales.<ol>
<li>Para la inducción, use 2.5% de isoflurano, 4 L/min, 99.5% O2.</li>
		<li>Para el mantenimiento, use una mezcla de ketamina/medetomidina (75.0/0.5 mg/kg) administrada por vía intraperitoneal.</li>
		<li>Compruebe la profundidad de la anestesia probando el reflejo corneal (solución de glucosa al 5%) y el reflejo de abstinencia nociceptiva (pellizco del dedo del pie). Controle la frecuencia respiratoria (una caída del 50% es aceptable durante la anestesia; la frecuencia normal está entre 70-120 respiraciones / minuto) y la temperatura corporal utilizando un termómetro rectal (la temperatura normal está entre 96.5 - 99.5 ° F o 35.9 - 37.5 ° C). NOTA: Continúe el procedimiento solo después de que se confirme la efectividad de la anestesia. Monitoree la profundidad de la anestesia periódicamente durante todo el protocolo. Repita la inyección intraperitoneal de ketamina/medetomidina cuando sea necesario.</li>
		<li>Aplique un ungüento oftálmico en ambos ojos para prevenir el daño corneal.</li>
	</ol></li>
	<li>Coloque al animal en posición supina y colóquelo en una almohadilla térmica para mantener la temperatura corporal a ~ 37 ° C.</li>
	<li>Conecte los tres electrodos de ECG de superficie a las extremidades de la rata en una configuración de plomo II (Figura 1A).<ol>
<li>Coloque el electrodo negativo en la extremidad anterior derecha.</li>
		<li>Coloque el electrodo positivo en la extremidad posterior izquierda.</li>
		<li>Coloque el electrodo de conexión a tierra en la extremidad anterior izquierda.</li>
		<li>Asegure los electrodos en su posición usando delgados cordones de cuerda de pulsera elástica.</li>
	</ol></li>
	<li>Encienda el registro de ECG de superficie y realice un registro continuo de ECG durante todo el procedimiento (Figura 1B) utilizando un programa de adquisición comercial o desarrollado localmente10.</li>
	<li>Para la estimulación eléctrica, use un catéter cuadripolar de 5-6 F conectado a un marcapasos cardíaco basado en microcontrolador10.</li>
	<li>Una vez que el animal esté anestesiado, inserte el catéter a través de la cavidad oral, en el esófago. Mida la distancia entre los incisivos superiores y el corazón (evaluada por palpación) para aproximarse a la profundidad a la que se debe insertar el catéter en el esófago. PRECAUCIÓN: Tenga cuidado de no forzar el catéter, ya que existe el riesgo de perforación esofágica.</li>
	<li>Confirme la posición correcta del catéter de estimulación a nivel de las aurículas de la siguiente manera.<ol>
<li>Aplicar estimulación eléctrica a una frecuencia de 400 estímulos/minuto (duración del estímulo 6 ms).</li>
		<li>Compruebe si el trazado del ECG muestra una captura constante de las aurículas (es decir, cada estímulo eléctrico es seguido por un complejo QRS estrecho) (Figura 2).</li>
	</ol></li>
	<li>Determinar el umbral diastólico, es decir, el voltaje más bajo requerido para obtener la captura auricular (generalmente, entre 10 V y 20 V). NOTA: Realice lo siguiente para los animales del grupo STIM.</li>
	<li>Una vez determinada la posición correcta del catéter, ajustar el estimulador a una frecuencia de 4.000 estímulos/minuto (duración del estímulo 6 ms), a una tensión 3 V por encima del umbral diastólico (Figura 3).</li>
	<li>Aplicar a cada animal 15 ciclos sucesivos de estimulación, 20 s cada uno, con un intervalo libre de 5 min entre ciclos11. Dependiendo de los objetivos del estudio, repita el protocolo para cada rata durante 10 días, a razón de 5 días / semana, a la misma hora en cada día.</li>
	<li>Compruebe la eficacia de la estimulación de la siguiente manera.<ol>
<li>Identifique el tiempo de recuperación del nódulo sinusal (SNRT), que aparece al final de la estimulación rápida como un intervalo de tiempo que es más largo que la duración del ciclo registrada durante el ritmo sinusal (Figura 4A) y representa el intervalo de tiempo requerido para la reanudación del ritmo sinusal después de que finaliza la supresión de sobremarcha. NOTA: La supresión de sobremarcha representa la inhibición de la actividad del nódulo sinusal mediante la estimulación eléctrica del corazón a una velocidad superior al ritmo intrínseco.</li>
		<li>Identificar la ocurrencia del episodio de FA, que se define aquí como la presencia de tres o más latidos supraventriculares irregulares consecutivos (es decir, respuesta ventricular irregular con complejos QRS estrechos), con ondas P ausentes o reemplazadas por ondas "f" pequeñas y distorsionadas (Figura 4B).</li>
	</ol></li>
	<li>Si el episodio de FA no termina espontáneamente en el momento en que se debe realizar el siguiente ciclo de estimulación (es decir, al final de los cinco minutos libres entre ciclos), no aplique la siguiente estimulación.<ol>
<li>Espere otros 5 minutos. Si el episodio de FA aún continúa después de esos 10 minutos, finalice el protocolo para ese día. NOTA: Si se desea evaluar la gravedad de la FA inducida eléctricamente, se puede realizar un monitoreo de ECG más largo.</li>
	</ol></li>
	<li>Si se produce bradicardia o asistolia grave al final de la estimulación (es decir, debido a la estimulación eléctrica del nervio vago), finalice el protocolo. Si la actividad eléctrica no vuelve a la normalidad rápidamente, realizar un masaje cardíaco externo y administrar sulfato de atropina (0,05 mg/kg) por vía intraperitoneal.</li>
	<li>Al final del procedimiento, invierta la anestesia con atipamezol (1 mg/kg) administrado por vía intraperitoneal. Alojar a las ratas individualmente en jaulas limpias con calor suplementario y observar periódicamente hasta que se recuperen por completo. No se requiere ningún otro cuidado específico de los animales al final del protocolo.</li>
	<li>Analice los trazados de ECG de superficie y determine lo siguiente.<ol>
<li>La inducibilidad de la FA que se expresa en porcentaje (es decir, [número de ciclos de estimulación seguidos de episodios de FA / número total de ciclos de estimulación aplicados] x 100).</li>
		<li>La duración de cada episodio de AF.</li>
		<li>La presencia de episodios de FA "persistentes" (es decir, >10 min). NOTA: Realice lo siguiente para los animales del grupo SHAM.</li>
	</ol></li>
	<li>Para las ratas en el grupo SHAM, siga los pasos 1.1 a 1.7 como se describió anteriormente, sin aplicar ninguna estimulación eléctrica.</li>
	<li>Mantenga el catéter en su posición durante 80 minutos (es decir, el tiempo necesario para completar el protocolo en ratas STIM) sin aplicar ninguna estimulación eléctrica, mientras registra continuamente el ECG de superficie.</li>
	<li>Al final del procedimiento, invierta la anestesia con atipamezol (1 mg/kg). No se requiere ningún otro cuidado específico de los animales al final del protocolo.</li>
	<li>Analice los trazados de ECG de superficie y determine los parámetros descritos en el paso 1.16.</li>
</ol>

<ol><li>Kornej, J., Börschel, C. S., Benjamin, E. J., Schnabel, R. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epidemiology+of+atrial+fibrillation+in+the+21st+century%3A+Novel+methods+and+new+insights%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation+Research%22%5BJournal%5D)">Epidemiology of atrial fibrillation in the 21st century: Novel methods and new insights.</a> Circulation Research. 127 (1), 4-20 (2020).</li>
<li>Hindricks, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((2020+ESC+Guidelines+for+the+diagnosis+and+management+of+atrial+fibrillation+developed+in+collaboration+with+the+European+Association+for+Cardio-Thoracic+Surgery+%28EACTS%29%3A+The+Task+Force+for+the+diagnosis+and+management+of+atrial+fibrillation+of+the+European+Society+of+Cardiology+%28ESC%29%5BTitle%5D)+AND+%22European+Heart+Journal%22%5BJournal%5D)">2020 ESC Guidelines for the diagnosis and management of atrial fibrillation developed in collaboration with the European Association for Cardio-Thoracic Surgery (EACTS): The Task Force for the diagnosis and management of atrial fibrillation of the European Society of Cardiology (ESC).</a> European Heart Journal. 42 (5), 373(2021).</li>
<li>Veenhuyzen, G. D., Simpson, C. S., Abdollah, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Atrial+fibrillation%5BTitle%5D)+AND+%22Canadian+Medical+Association+Journal%22%5BJournal%5D)">Atrial fibrillation.</a> Canadian Medical Association Journal. 171 (7), 755-760 (2004).</li>
<li>Lau, D. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Atrial+arrhythmia+in+ageing+spontaneously+hypertensive+rats%3A+unraveling+the+substrate+in+hypertension+and+ageing%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+One%22%5BJournal%5D)">Atrial arrhythmia in ageing spontaneously hypertensive rats: unraveling the substrate in hypertension and ageing.</a> PloS One. 8 (8), 72416(2013).</li>
<li>Scridon, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Unprovoked+atrial+tachyarrhythmias+in+aging+spontaneously+hypertensive+rats%3A+The+role+of+the+autonomic+nervous+system%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Physiology-Heart+and+Circulatory+Physiology%22%5BJournal%5D)">Unprovoked atrial tachyarrhythmias in aging spontaneously hypertensive rats: The role of the autonomic nervous system.</a> American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 303 (3), 386-392 (2012).</li>
<li>Haugan, K., Lam, H. R., Knudsen, C. B., Petersen, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Atrial+fibrillation+in+rats+induced+by+rapid+transesophageal+atrial+pacing+during+brief+episodes+of+asphyxia%3A+a+new+in+vivo+model%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Cardiovascular+Pharmacology%22%5BJournal%5D)">Atrial fibrillation in rats induced by rapid transesophageal atrial pacing during brief episodes of asphyxia: a new in vivo model.</a> Journal of Cardiovascular Pharmacology. 44 (1), 125-135 (2004).</li>
<li>Sugiyama, A., Takahara, A., Honsho, S., Nakamura, Y., Hashimoto, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+in+vivo+atrial+fibrillation+model+of+rat+induced+by+transesophageal+atrial+burst+pacing%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Pharmacological+Sciences%22%5BJournal%5D)">A simple in vivo atrial fibrillation model of rat induced by transesophageal atrial burst pacing.</a> Journal of Pharmacological Sciences. 98 (3), 315-318 (2005).</li>
<li>Scridon, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dissociation+between+animal+and+clinical+studies.+where+do+we+go+wrong%5BTitle%5D)+AND+%22Romanian+Journal+of+Cardiology%22%5BJournal%5D)">Dissociation between animal and clinical studies. where do we go wrong.</a> Romanian Journal of Cardiology. 31 (3), 497-500 (2021).</li>
<li>Mulla, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+atrial+pacing+promotes+atrial+fibrillation+substrate+in+unanesthetized+instrumented+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Physiology%22%5BJournal%5D)">Rapid atrial pacing promotes atrial fibrillation substrate in unanesthetized instrumented rats.</a> Frontiers in Physiology. 10, 1218(2019).</li>
<li>Scridon, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spontaneous+atrial+fibrillation+after+long-term+transesophageal+atrial+burst+pacing+in+rats.+Technical+and+procedural+approach+to+a+new+in+vivo+atrial+fibrillation+model%5BTitle%5D)+AND+%22Romanian+Journal+of+Laboratory+Medicine%22%5BJournal%5D)">Spontaneous atrial fibrillation after long-term transesophageal atrial burst pacing in rats. Technical and procedural approach to a new in vivo atrial fibrillation model.</a> Romanian Journal of Laboratory Medicine. 26 (1), 105-112 (2018).</li>
<li>Halatiu, V. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chronic+exposure+to+high+doses+of+bisphenol+A+exhibits+significant+atrial+proarrhythmic+effects+in+healthy+adult+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Romanian+Journal+of+Cardiology%22%5BJournal%5D)">Chronic exposure to high doses of bisphenol A exhibits significant atrial proarrhythmic effects in healthy adult rats.</a> Romanian Journal of Cardiology. 31 (3), 587-595 (2021).</li>
<li>Zaciragić, A., Nakas-ićindić, E., Hadzović, A., Avdagić, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Average+values+of+electrocardiograph+parameters+in+healthy%2C+adult+Wistar+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Medical+Archives%22%5BJournal%5D)">Average values of electrocardiograph parameters in healthy, adult Wistar rats.</a> Medical Archives. 58 (5), 268-270 (2004).</li>
<li>Cheshire, W. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Thermoregulatory+disorders+and+illness+related+to+heat+and+cold+stress%5BTitle%5D)+AND+%22Autonomic+Neuroscience%3A+Basic+and+Clinical%22%5BJournal%5D)">Thermoregulatory disorders and illness related to heat and cold stress.</a> Autonomic Neuroscience: Basic and Clinical. 196, 91-104 (2016).</li>
<li>Șerban, R. C., Scridon, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Data+linking+diabetes+mellitus+and+atrial+fibrillation-how+strong+is+the+evidence%3F+From+epidemiology+and+pathophysiology+to+therapeutic+implications%5BTitle%5D)+AND+%22Canadian+Journal+of+Cardiology%22%5BJournal%5D)">Data linking diabetes mellitus and atrial fibrillation-how strong is the evidence? From epidemiology and pathophysiology to therapeutic implications.</a> Canadian Journal of Cardiology. 34 (11), 1492-1502 (2018).</li>
<li>Nishida, K., Michael, G., Dobrev, D., Nattel, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+models+for+atrial+fibrillation%3A+clinical+insights+and+scientific+opportunities%5BTitle%5D)+AND+%22Europace%22%5BJournal%5D)">Animal models for atrial fibrillation: clinical insights and scientific opportunities.</a> Europace. 12 (2), 160-172 (2010).</li>
<li>Qiu, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DL-3-n-Butylphthalide+reduces+atrial+fibrillation+susceptibility+by+inhibiting+atrial+structural+remodeling+in+rats+with+heart+failure%5BTitle%5D)+AND+%22Naunyn-Schmiedeberg%27s+Archives+of+Pharmacology%22%5BJournal%5D)">DL-3-n-Butylphthalide reduces atrial fibrillation susceptibility by inhibiting atrial structural remodeling in rats with heart failure.</a> Naunyn-Schmiedeberg's Archives of Pharmacology. 391 (3), 323-334 (2018).</li>
</ol>

Los autores no tienen conflictos de intereses.

El presente artículo describe un protocolo experimental de estimulación de estallido auricular transesofágico a largo plazo para la inducción rápida y eficiente de la FA en ratas, adecuado para estudios de FA aguda y a largo plazo. El protocolo de estimulación de 10 días descrito en este documento se ha utilizado con éxito para desarrollar un "modelo de FA espontánea secundaria" (es decir, un modelo en el que, después de un período de inducción de FA por estimulación eléctrica, af se desarrolla espontáneamente)<sup class...

La fibrilación auricular (FA) es la arritmia cardíaca sostenida más frecuente encontrada en la práctica clínica y su incidencia y prevalencia continúan aumentando dramáticamente en todo el mundo1. Esta arritmia afecta hasta al 4% de la población mundial según estudios recientes2. Sin embargo, dado que la FA paroxística puede ser asintomática y, por lo tanto, puede escapar a la detección, es probable que la verdadera prevalencia de fa sea mucho mayor que la presentada en la literatura.
La fisiopatología de la FA ha sido intensamente estudiada. Sin embargo, los mecanismos subyacentes de esta arritmia compleja permanecen incompletamente dilucidados y esto se refleja en las limitadas opciones terapéuticas, con una eficacia cuestionable. Los estudios en animales han aportado información importante a nuestra comprensión con respecto a la fisiopatología de la FA y el manejo terapéutico. La reentrada, uno de los principales mecanismos implicados en la patogénesis de la FA3, requiere una cierta masa de tejido miocárdico para que se produzca. Por lo tanto, los animales grandes generalmente han sido preferidos en los estudios de FA, mientras que, debido al pequeño tamaño de sus aurículas, los roedores se han considerado durante mucho tiempo "resistentes" a la FA. Sin embargo, el uso de animales grandes se ve obstaculizado principalmente por dificultades de manejo. Mientras tanto, aunque se ha demostrado que la FA espontánea ocurre en ratas4, se requiere un seguimiento a largo plazo (hasta 50 semanas) para que la arritmia ocurra en esos modelos5. También se han desarrollado modelos que aseguran la rápida aparición de FA en roedores pequeños. La mayoría de las veces, esos modelos utilizan estimulación eléctrica aguda, a menudo en presencia de otras afecciones favorables, como la estimulación parasimpática concomitante o la asfixia, para inducir artificialmente la FA 6,7. Aunque eficientes, estos modelos no permiten la evaluación de características críticas relacionadas con la FA, como la remodelación eléctrica progresiva, estructural, autónoma o molecular de las aurículas, ni los efectos de los fármacos antiarrítmicos convencionales o no convencionales sobre el sustrato auricular o sobre el riesgo de proarritmia ventricular 8,9.
El presente trabajo describe un protocolo experimental de estimulación de estallido auricular transesofágico a largo plazo para la inducción rápida y eficiente de la FA en ratas. El protocolo es adecuado tanto para estudios agudos como a largo plazo y puede usarse con éxito en ratas con corazones sanos o remodelados, en presencia de una amplia variedad de factores de riesgo, lo que permite el estudio de la fisiopatología de la FA, la identificación de nuevas dianas terapéuticas y la evaluación de nuevas estrategias profilácticas y / o terapéuticas.

<table><tbody><tr><td>Antisedán (Clorhidrato de Atipamezol) 5 mg / mL, solución inyectable</td><td>Orion Corporation</td><td>06043/4004</td><td>para ratas uso 1 mg / kg</td></tr><tr><td>Dormitor (clorhidrato de medetomidina) 1 mg / mL, solución inyectable</td><td>Orion Corporation</td><td>06043/4003</td><td>para ratas uso 0,5 mg / kg</td></tr><tr><td>E-Z Anestesia Sistema Único Animal</td><td>E-Z Systems Inc</td><td>EZ-SA800</td><td>Permite la manipulación de un animal a la vez</td></tr><tr><td>Isoflurano 99,9%, 100 mL</td><td>Rompharm Company</td><td>N01AB06</td><td></td></tr><tr><td>Ketamina 10%, 25 mL</td><td></td><td></td><td>para uso en ratas 75 mg / kg</td></tr><tr><td>Marcapasos cardíaco basado en microcontrolador para animales</td><td></td><td></td> pequeños <td>Desarrollado en nuestro laboratorio (Ver Referencia número 10 en el manuscrito)</td></tr><tr><td>Sistema de registro</td><td></td><td></td> de ECG de superficie <td>Desarrollado en nuestro laboratorio (Ver Referencia número 10 en el manuscrito)</td></tr></tbody></table>

estimulación del estallido auricular transesofágico para la inducción de la fibrilación auricular en ratas

Transesophageal Atrial Burst Pacing for Atrial Fibrillation Induction in Rats

Los estudios en animales han aportado información importante a nuestra comprensión con respecto a la fisiopatología de la fibrilación auricular (FA) y el manejo terapéutico. La reentrada, uno de los principales mecanismos implicados en la patogénesis de la FA, requiere una cierta masa de tejido miocárdico para que se produzca. Debido al pequeño tamaño de las aurículas, los roedores han sido considerados durante mucho tiempo "resistentes" a la FA. Aunque se ha demostrado que la FA espontánea ocurre en ratas, se requiere un seguimiento a largo plazo (hasta 50 semanas) para que la arritmia ocurra en esos modelos. El presente trabajo describe un protocolo experimental de estimulación de ráfaga auricular transesofágica para la inducción rápida y eficiente de fa en ratas. El protocolo se puede utilizar con éxito en ratas con corazones sanos o remodelados, en presencia de una amplia variedad de factores de riesgo, lo que permite el estudio de la fisiopatología de la FA, la identificación de nuevas dianas terapéuticas y la evaluación de nuevas estrategias profilácticas y / o terapéuticas.

En un estudio de prueba de concepto, 22 ratas Wistar macho adultas (200-400 g) fueron asignadas al azar en dos grupos: STIM (n = 15) y SHAM (n = 7). Todos los animales fueron alojados individualmente en jaulas de policarbonato, en una habitación climatizada (21-22 °C), teniendo libre acceso a agua y alimentos secos durante todo el estudio. El protocolo de estimulación transesofágica descrito anteriormente se aplicó a todos los animales durante 10 días, 5 días a la semana. Todos los animales se sometieron al mismo protoco...

El presente trabajo describe un protocolo experimental de estimulación de estallido auricular transesofágico para la inducción eficiente de la fibrilación auricular (FA) en ratas. El protocolo se puede utilizar en ratas con corazones sanos o remodelados, lo que permite el estudio de la fisiopatología de la FA, la identificación de nuevas dianas terapéuticas y la evaluación de nuevas estrategias terapéuticas.

Estimulación del estallido auricular transesofágico para la inducción de la fibrilación auricular en ratas

Animal studies have brought important insights into our understanding regarding atrial fibrillation (AF) pathophysiology and therapeutic management. ...

El presente protocolo se puede utilizar con éxito en ratas con corazones sanos o remodelados en presencia de una amplia variedad de factores de riesgo para estudios de seguimiento agudos o a largo plazo. Este protocolo permite estudiar la fibrilación auricular en diferentes condiciones fisiopatológicas para evaluar nuevas estrategias profilácticas y terapéuticas. Después de anestesiar a una rata wistar adulta, coloque a la rata en posición supina sobre una almohadilla térmica para mantener su temperatura corporal a 37 grados centígrados.Luego, conecte tres electrodos de ECG de superficie a las extremidades de la rata en una configuración de plomo II colocando el electrodo negativo en la extremidad anterior derecha, el electrodo positivo en la extremidad posterior izquierda y el electrodo de conexión a tierra en la extremidad anterior izquierda. Asegure los electrodos en su posición utilizando acordes de cuerda de pulsera elástica delgada. A continuación, encienda el registro de ECG de superficie y realice un registro continuo de ECG durante todo el procedimiento utilizando un programa de adquisición comercial o desarrollado localmente.Para la estimulación eléctrica, use un catéter

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Estimulación eléctrica programada ofrece la posibilidad de determinar las propiedades de conducción del corazón, y la posibilidad de inducir arritmias cardíacas y terminar utilizando varios protocolos de estimulación. El uso de un catéter intravenoso, grabaciones electrograma intracardíaco se puede obtener en ratones después de programar protocolos de estimulación eléctrica para identificar los sustratos arritmogénicos.

La estimulación eléctrica programada en ratones

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Prueba de la eficacia de los agentes farmacológicos en un modelo de entrega de destino pericárdico en la producción porcina

El establecimiento de un modelo de crónica insuficiencia cardíaca asincrónica (HF) por la estimulación rápida combinada con la ablación de rama de paquete izquierdo se presenta. Seguimiento integral de tiempo velocidad aórtica e imágenes de marcas en dos dimensiones aplican para validar este modelo estable de HF con asincronía ventricular izquierda y los beneficios de la terapia de resincronización cardiaca.

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Este protocolo describe la evaluación electrofisiológica de atria murino utilizando un sistema de mapeo óptico con una alta resolución espacial y temporal, incluyendo grabaciones duales de la tensión de la membrana y Ca2 + transitoria bajo programado estimulación a través de un catéter electrodo especializados.

Evaluación electrofisiológica de Atria murino con mapeo óptico alta resolución

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