Name: Obtención de recuperación rápida pulmonar combinada con perfusión regional normatérmica abdominal en donación controlada después de la muerte circulatoria (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-08-15T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 54 s
Description: Aprende la técnica de recuperación pulmonar rápida con perfusión regional normotérmica abdominal para donación controlada tras muerte circulatoria. Este método seguro expande la disponibilidad de órganos y mejora los resultados del trasplante.

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Los autores reconocen a todos los miembros involucrados en el Programa de Trasplante Pulmonar del Hospital Universitario Marqués de Valdecilla.

Estas intervenciones se realizan junto a la cama en la unidad de cuidados intensivos (UCI). Este protocolo sigue las directrices del comité de ética del Hospital Universitario Marqués de Valdecilla y está de acuerdo con el marco legal español en materia de procedimientos de donación. Se obtuvo el consentimiento informado de los familiares para la grabación en video de los procedimientos de investigación. El DCD se considera en pacientes con daño cerebral catastrófico o un corazón terminal o una enfermedad neurodegenerativa para quienes se ha tomado la decisión de retirar la terapia de soporte vital (WSLT). Los criterios de exclusión y la evaluación pulmonar son los mismos que con los donantes de muerte encefálica (Tabla 1).
1. Intervenciones premortem en el donante
<ol><li>Heparinización: administrar por vía intravenosa un bolo de 300-500 UI/kg de heparina al donante.</li>
	<li>Canulación NOTA: La canulación es realizada por el cirujano cardiovascular y es un procedimiento estéril.<ol><li>Preparar una mesa de instrumentación estéril, con todo el equipo necesario (kit ECMO y herramientas quirúrgicas), así como el sistema de electrocauterio y aspiración.</li>
		<li>Prepare un campo quirúrgico en la ingle seleccionada con solución desinfectante y cortinas estériles.</li>
		<li>Realice una incisión longitudinal de 8-10 cm con una cuchilla nº 23, controlando el sangrado con electrocauterio y clips Liga. Separe los bordes de la herida con un retractor y proceda con la disección para exponer la arteria femoral y la vena. Abraza ambos vasos con bucles de vasos para controlar el sangrado.</li>
		<li>Seleccione los diámetros de cánula apropiados de acuerdo con los tamaños de los vasos y lo suficientemente grandes como para proporcionar un flujo suficiente para la perfusión de órganos y para evitar problemas de bajo flujo (generalmente 21 franceses).</li>
		<li>Canular la vena femoral, introduciendo primero un alambre metálico como guía, seguido de dilatadores progresivos para finalmente introducir la cánula. Si se observa sangrado, realice una pérula de cuerda de polipropileno 4-0 para el control.</li>
		<li>Proceder de la misma manera con la arteria femoral, utilizando en este caso una cánula de doble luz.</li>
		<li>Corte una pieza de 10 cm de la línea de entrada ECMO. Inserte un conector recto con un bloqueo Luer con una llave de paso de tres vías ensamblada en un extremo de la pieza y conecte el otro extremo de la pieza a la cánula arterial (Figura 1).</li>
		<li>Purgue las líneas ECMO. Emplee una pera de riego con solución salina para llenar las líneas mientras se conecta con cánulas. Conecte la línea ECMO de salida a la cánula venosa y la línea ECMO de entrada al conector recto con la llave de paso de tres vías previamente ensamblada a la cánula arterial. La llave de paso de tres vías se puede utilizar para purgar el sistema (Figura 2).</li>
		<li>Mantenga las líneas ECMO sujetadas. Fije ambas cánulas a la ingle con suturas de seda de tamaño 1 para evitar el desplazamiento durante la transferencia.</li>
		<li>Coloque una línea de presión monitoreada en la cánula de la arteria femoral y en la arteria radial izquierda del donante.</li>
	</ol></li>
	<li>Colocación de balón de oclusión aórtica<ol><li>Tomar, como referencia, la distancia entre el proceso xifoide del donante y el extremo distal de la cánula arterial y determinar la longitud del catéter a insertar para llegar a la aorta descendente torácica. Coloque una marca de referencia en el globo con una sutura de seda o un marcador.</li>
		<li>Introduzca una guía de alambre metálico a través de la luz libre de la cánula de la arteria femoral. Continuar con el catéter de la misma manera, guiado por el alambre metálico, e introducirlo hasta la marca referenciada.</li>
		<li>Confirme la posición correcta del balón de oclusión con una radiografía de tórax portátil o fluoroscopia (verifique las marcas radiopacas del catéter por encima del diafragma).</li>
		<li>Compruebe el correcto funcionamiento del balón de oclusión llenándolo con una jeringa de cono de 50 cc con solución salina solo durante 4-5 s, confirmando que la presión arterial de la cánula femoral desaparece mientras se mantiene la presión de la arteria radial izquierda (Figura 3).</li>
		<li>Cuando el pulso femoral desaparezca, registre el volumen de llenado como el volumen mínimo que se utilizará para bloquear la aorta torácica durante la ARNP. Si se detecta flujo en la cánula femoral, compruebe de nuevo el posicionamiento o llenado correcto.</li>
	</ol></li>
</ol>2. Retirada de la terapia de soporte vital (WLST) y declaración de muerte
<ol><li>Transfiera el donante conectado al sistema ECMO a la sala de operaciones. Prepare y cubra al donante de manera estéril.</li>
	<li>Haga que las soluciones y líneas de preservación pulmonar y abdominal estén listas y listas. Mantenga al equipo quirúrgico fregado y estéril y listo en la sala de operaciones adyacente.</li>
	<li>Use un cronómetro para registrar los tiempos isquémicos cálidos. NOTA: El tiempo isquémico caliente funcional (FWIT), definido como el tiempo desde la presión arterial sistólica <60 mmHg hasta ANRP, se inicia para los injertos abdominales y la administración de solución de preservación pulmonar a través de la arteria pulmonar para los pulmones (se incluye el período sin contacto de 5 minutos). Se consideran límites superiores de 30 min para el hígado y el páncreas y 60 min para los riñones y los pulmones.</li>
	<li>Permita que los familiares estén con su ser querido durante WLST hasta la declaración de muerte.</li>
	<li>Inicie WLST. La extubación es opcional según los deseos del familiar. Después de la declaración de muerte, saque a los familiares del área quirúrgica.</li>
	<li>Después del período de 5 minutos sin contacto, llene el balón de oclusión aórtica con el volumen mínimo previamente determinado que asegura el bloqueo aórtico torácico descendente.</li>
	<li>Si la presión de la arteria radial izquierda desaparece, inicie ANRP. La presión de la cánula femoral se convertirá en un flujo continuo no pulsátil proporcionado por la ECMO.</li>
	<li>Si el flujo en la línea radial aumenta paralelamente a la presión femoral, detenga la ANRP y verifique la posición correcta y llene o sujete la aorta torácica después de otro período sin contacto de 5 minutos antes de restaurar la ANRP. La ANRP no se inicia hasta que la oclusión aórtica está completamente confirmada. NOTA: WLST se puede realizar en la sala de operaciones o en la UCI siguiendo la preferencia de familiares y seres queridos. Si se realiza en la UCI, después del período sin contacto de 5 minutos, se llena el balón y se verifica la función, se inicia la ARNP y el donante se transfiere a la sala de operaciones donde el equipo quirúrgico está listo para comenzar. Si se detecta un mal funcionamiento del balón de oclusión, se detiene el ARNP hasta que se sujeta la aorta torácica en la sala de operaciones.</li>
</ol>3. Técnica de recuperación y obtención pulmonar
NOTA: Las técnicas de recuperación y obtención pulmonar son realizadas por el cirujano torácico y el coordinador del trasplante (Figura 4).
<ol><li>Realice una esternotomía media: proceda con una incisión vertical mediana en la piel desde la muesca supraesternal hasta la punta del proceso xifoides. Extienda la incisión a la fascia pectoral y al periostio esternal mediante electrocauterio.</li>
	<li>Dividir el ligamento interclavicular y crear una disección plana por dedo detrás del esternón, tanto a nivel de la muesca supraesternal como de la apófisis xifoidea. Divida el esternón con una sierra eléctrica. Coloque un retractor esternal y ábralo con cuidado, liberando el pericardio de la superficie posterior del esternón. Controle cualquier punto de sangrado con electrocauterio.</li>
	<li>Al mismo tiempo, reintubar y ventilar al donante con oxígeno al 100% y una presión positiva al final de la espiración de 5 cmH2O.</li>
	<li>Si la broncoscopia no se realizó durante la estancia en la UCI del donante como una maniobra de manejo crítico del paciente, puede ser realizada en este punto por el segundo cirujano del equipo torácico. Para la broncoscopia, introduzca un broncoscopio flexible a través del tubo endotraqueal y evalúe la anatomía, la apariencia de la mucosa y las secreciones claras.</li>
	<li>Abrir ambas cavidades pleurales mediante incisiones longitudinales en la pleura mediastínica.</li>
	<li>Si hay dudas o problemas sobre un bloqueo adecuado de los vasos supraaórticos con el balón de oclusión, retraiga el pulmón izquierdo medialmente para exponer y sujetar la aorta torácica lo más bajo posible bajo visión directa.</li>
	<li>Examinar los pulmones realizando una evaluación visual y palpatoria. Inspeccione si hay ampollas, contusión, atelectasia, neumonía y tumores ocultos. Administrar 1 L de solución salina a 4 °C en ambas cavidades pleurales.</li>
	<li>Reduzca la fracción inspirada de oxígeno al 50%. Abra el pericardio con una incisión en T invertida. Retraer lateralmente los bordes del pericardio con suturas de seda 2-0 fijadas a la piel con pinzas de mosquito para exponer las estructuras del corazón.</li>
	<li>Coloque una sutura de cuerda de monedero de polipropileno 4-0 en la arteria pulmonar principal debajo de la bifurcación. Realizar una arteriotomía con una cuchilla nº 11 y dilatar con pinzas curvas para mosquitos.</li>
	<li>Canular la arteria pulmonar (PA) con una cánula recta en ángulo recto pinzada al final. Conecte la cánula de la arteria pulmonar a la línea del sistema de irrigación, ensamblando un conector recto con un bloqueo Luer y una llave de paso de tres vías. Conecte el sistema de irrigación a la solución de preservación pulmonar. Purga las líneas.</li>
	<li>Comience a enjuagar 50-60 ml / kg de solución de preservación en frío de manera anterógrada. Comience a enjuagar 500 μg de prostaglandina diluida en 100 ml de solución salina al mismo tiempo a través de la llave de paso de tres vías.</li>
	<li>Abra el apéndice auricular izquierdo o la aurícula izquierda directamente para permitir el drenaje libre. Si se encuentran áreas de atelectasia, reclutarlas con sujeciones inspiratorias cortas a una presión de 25-30 cmH2O.</li>
	<li>Una vez finalizada la conservación, retire la cánula de PA. Anunciar al resto del equipo la intención de pinzar la vena cava y comenzar la escisión cardíaca.</li>
	<li>Administrar 1-1,2 L de solución salina al donante antes de pinzar las venas cavas para evitar una disminución en el flujo de la bomba debido a la pérdida del retorno venoso sanguíneo del tórax.</li>
	<li>Coloque una pinza cruzada en la vena cava inferior, asegurándose de que haya suficiente muñón para el hígado. Ligar y dividir la vena inferior de cava con hebra de seda nº 3.</li>
	<li>Ata y divide la vena superior de cava caudal a ácigota con hebra de seda nº 3. Asegure el muñón distal con una abrazadera.</li>
	<li>Deje las pinzas restantes en el campo quirúrgico, teniendo cuidado de no retirarlas por accidente, ya que de lo contrario ANRP se verá comprometido. Extirpe el resto del corazón de una manera estándar.</li>
	<li>Después de la escisión cardíaca, extirpe los pulmones siguiendo el mismo procedimiento que con los donantes de muerte cerebral, como se describe a continuación.<ol><li>Divida los ligamentos pulmonares inferiores, abra el pericardio posterior y exponga el esófago. Libere las inserciones mediastínicas posteriores del pulmón con disección roma, asegurando una hemostasia cautelosa.</li>
		<li>Diseccionar las arterias pulmonares lejos de la aorta. Aísle la tráquea por encima de la carina y pase una grapadora TA.</li>
		<li>Infle los pulmones al 50%-60% del volumen corriente antes de retirar el tubo endotraqueal y dividir la tráquea. Retire cualquier accesorio restante y extraiga el bloqueo pulmonar del donante.</li>
	</ol></li>
	<li>Revise cuidadosamente la cavidad torácica para detectar cualquier punto de sangrado, especialmente la ligadura de la vena ácigos y la cauterización de los vasos o capilares del mediastino posterior, las estructuras paratraqueales y los tejidos circundantes. La pérdida continua de sangre puede disminuir el flujo de la bomba.</li>
	<li>Lleve el bloqueo pulmonar a la mesa trasera y proceda con la cirugía de banco. Separe los pulmones izquierdo y derecho.</li>
	<li>Con un catéter de Foley con un bulbo inflado en la punta, realice secuencialmente, a través de cada vena pulmonar, un lavado retrógrado con 0.2-0.25 L de solución de preservación en frío.</li>
	<li>Envasar cada pulmón en una primera bolsa estéril que contenga únicamente solución de conservación en frío, rodeada de otras dos bolsas de plástico, y conservar en una nevera portátil que contenga solución salina helada a 4 °C.</li>
	<li>Cuando se indique un sistema de perfusión pulmonar ex vivo , siga los pasos a continuación para las conexiones del dispositivo a la arteria pulmonar y la tráquea durante la obtención pulmonar.<ol><li>Preservar el tronco principal de la arteria pulmonar y no sólo su bifurcación durante la adquisición.</li>
		<li>Si no es posible, tome una pieza de 3-4 cm de la aorta para suturarla posteriormente a la bifurcación de la arteria pulmonar para reemplazar el tronco de la arteria pulmonar.</li>
		<li>Divida la tráquea de cuatro a cinco anillos por encima de la carina para que tenga suficiente longitud para la intubación.</li>
		<li>Mantenga y almacene los pulmones en bloque.</li>
	</ol></li>
</ol>4. Perfusión regional normotérmica abdominal
<ol><li>Iniciar ANRP después de llenar el balón de oclusión aórtica y verificar el correcto funcionamiento.</li>
	<li>Establezca los siguientes puntos objetivo de monitoreo: flujo de la bomba = 2-2.5 L / min, presión continua de 60-65 mmHg en la cánula de la arteria femoral, temperatura = 37 ° C, pH = 7.35-7.45, hematocrito >25%.</li>
	<li>Obtener muestras de sangre de la cánula de la arteria femoral con una jeringa de 10 ml después de iniciar ANRP y cada 30 min para análisis bioquímicos hepáticos y renales, niveles séricos de lactato, gasometría arterial y valores de hematocrito. Mantenga el ARNP durante al menos 90-120 min.</li>
	<li>Deseche el hígado si los valores de alanina transaminasa (ALT) o aspartato transaminasa (AST) son más de cuatro veces el límite superior normal durante ANRP.</li>
</ol>5. Recuperación hepática y renal
NOTA: La recuperación hepática y renal son realizadas por el cirujano hepático y el cirujano renal, respectivamente.
<ol><li>Realizar laparotomía media: proceder con una incisión vertical mediana en la piel a lo largo de la línea alba, desde el proceso xifoideo (unir a la esternotomía anterior) hasta el pubis, curvando la incisión alrededor del ombligo. Use electrocauterio para diseccionar la grasa subcutánea y las capas fasciales superficiales hasta la vaina recto.</li>
	<li>Diseccionar a través de los componentes anterior y posterior de la vaina del recto y abrir el peritoneo para acceder a la cavidad peritoneal. Amplíe la incisión metiendo los dedos en el orificio creado, teniendo cuidado de no dañar las estructuras subyacentes. Coloque los retractores para tener una exposición adecuada del abdomen.</li>
	<li>Evaluar la calidad macroscópica de los órganos abdominales mediante la realización de evaluaciones visuales y palpatorias. Se puede tomar una biopsia hepática si se plantea alguna preocupación, como con los donantes de muerte cerebral.</li>
	<li>Si los valores químicos son correctos y el aspecto macroscópico es normal, valide los órganos.</li>
	<li>Detenga el dispositivo ECMO. Enjuague la solución de preservación para los órganos abdominales a través de la cánula arterial femoral y use la cánula venosa femoral para la exanguinación.</li>
	<li>Procurar órganos abdominales adecuados para trasplante de manera estándar como en DBD27,28.</li>
</ol>

Los autores declaran que no hay conflictos de intereses.

Aunque el uso de perfusión simultánea de frío pulmonar con ARNP en DCD c) se publicó por primera vez en 2014, se han descrito muy pocas experiencias para este25,26,29. Además, la utilización de pulmones con DCDc, independientemente de la técnica utilizada, sigue siendo baja en la mayoría de los países.
Los pasos críticos dentro de este protocolo son el uso de intervenciones premortem; una metodología ...

La donación después de la muerte circulatoria (DCD) comenzó en España con donantes no controlados. En 1996, se publicó el primer documento de consenso nacional sobre DCD como guía para la práctica de la donación no controlada después de la muerte circulatoria1 (uDCD), estableciendo también una moratoria sobre la donación controlada después de la muerte circulatoria (cDCD). En 2012, surgió un nuevo consenso que establece la base y el marco legislativo para la práctica de uDCD y cDCD2. Actualmente, España es uno de los países más activos en DCD, alcanzando la tasa más alta de donantes después de la muerte circulatoria en el mundo3. Este tipo de donante representó casi el 35% del total de donantes en 2021 en el país, con una marcada disminución en uDCD y donantes siendo exclusivamente cDCD4.
La obtención de órganos en DCD se realiza comúnmente utilizando la técnica de recuperación súper rápida5. Después de la declaración de muerte y cuando ha transcurrido el período de no contacto, se realiza una esternotomía y laparotomía rápidas. La aorta abdominal y la arteria pulmonar se canulan y se enjuagan con soluciones de perfusión fría para preservar los órganos abdominales y torácicos, además de que el enfriamiento tópico se realiza antes de la recuperación6. En esta situación, el DCD se caracteriza por las consecuencias impredecibles de la isquemia caliente, después de la retirada de la terapia de soporte vital. El daño isquémico durante este período de hipotensión agónica e hipoxia progresiva, seguido por el período no táctil después del paro cardíaco, se ve agravado por el período posterior de isquemia fría7. Esta combinación de isquemia caliente y fría parece ser perjudicial, especialmente para los injertos abdominales 8,9,10, generando más reticencia entre los profesionales en el uso de estos órganos de donantes de DCDc.
Para minimizar estos riesgos, se ha desarrollado con creciente interés un modelo de preservación in situ , basado en experiencias previas de equipos españoles que trabajan en uCDC11. El uso de sistemas de oxigenación por membrana extracorpórea (OMEC) para restaurar el flujo sanguíneo después de la muerte y antes de la recuperación del injerto puede revertir las desviaciones metabólicas resultantes de la isquemia y restaurar la fisiología celular12. La perfusión regional normotérmica abdominal (ANRP) puede mejorar la calidad de los órganos con daño isquémico en el DCD13. La función del órgano se puede evaluar y mejorar, lo que permite una mejor selección de injertos abdominales para el trasplante.
Experiencias multicéntricas internacionales recientes proporcionan evidencia de que la ANRP versus la técnica de recuperación rápida (RR) ayuda a superar las limitaciones tradicionales en la DCCc, reduciendo las tasas de complicaciones biliares postrasplante, facilitando el trasplante exitoso de hígados más viejos y mejorando la supervivencia del injerto hepático14,15. En los riñones, parece mejorar los resultados a corto plazo con una menor función retardada del injerto y mayores tasas de supervivencia del injerto a 1 año16. Con esta evidencia, la ANRP en DCD ha ganado ventajas sobre la técnica de recuperación rápida para la obtención de injertos abdominales y ahora se aplica en varios países europeos y otras partes del mundo17,18.
El uso de pulmones de donantes de DCDc, sin embargo, se adoptó rápidamente en todo el mundo. Un tiempo isquémico cálido funcional pulmonar de hasta 60 min no parece afectar la supervivencia19. En la última década, varios centros y experiencias multiinstitucionales han reportado resultados después del trasplante de pulmón de DCD comparables a los de DBD20,21. La técnica RR es el método rutinario para la obtención pulmonar: los pulmones se enfrían tópicamente y se eliminan después de ser enjuagados con solución de preservación en frío22.
Las primeras experiencias combinando ANRP y RR de pulmones en DCDc fueron reportadas por dos grupos del Reino Unido23,24. Años más tarde, se publicó una variación de esta técnica añadiendo intervenciones premortem25. Los resultados presentan esta doble técnica de procuración como segura y eficaz tanto para injertos abdominales como torácicos26. Obviamente, el procedimiento de donación se vuelve más complejo. Requiere recursos tecnológicos y humanos, capacidades organizativas suficientes y tiene un costo económico más alto. Todo esto puede desalentar a los profesionales de comenzar un programa. El objetivo de este estudio es presentar un protocolo especialmente centrado en las intervenciones premortem, la canulación y la colocación de balones de oclusión aórtica, con consejos y trucos aprendidos de la experiencia, y comentar los diferentes detalles técnicos a considerar durante la recuperación pulmonar cuando se utiliza ARNP. En la actualidad, en el Centro, los donantes de DCD se han convertido en la principal fuente de injertos para trasplante torácico y abdominal.

<table><tbody><tr><td>Vial 5 mL de heparina 1000 UI/mL</td><td>ROVI</td><td></td><td>Para heparinización de donantes</td></tr><tr><td><fuerte>KIT DE ECMO (MATERIALES PARA LA CANULACIÓN)</fuerte></td>Líneas presión arterial BEXEN MEDICAL 137.15 Línea de <td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td>presión arterial por arteria radial y cánula femoral</td></tr><tr><td>Tijeras de vendaje</td><td>SURGIMEDIC</td><td>BC-881R</td><td>Cizalla para cortar líneas</td></tr> <tr><td>de ECMOCánula venosa Bio-medicus 7,0 mm (21 Fr) x 69,9 cm (27,5 pulgadas)</td><td>MEDTRONIC</td><td>96670-121</td><td>Cánula venosa</td></tr><tr><td>Solución de clorhexidina 2%</td><td></td><td></td><td>Solución desinfectante</td></tr><tr><td>Dispositivo ECMO Maquet Rotaflow</td><td>Maquet, Rasttat, Alemania</td><td></td><td>Sistema ECMO</td></tr><tr><td>Mango de electrocauterización</td><td>DEXTRO</td><td>SW12200</td><td></td></tr><tr><td>EndoReturn Arterial Kit 21-23F</td><td>Edwards Lifesciences</td><td>ER21B, ER23B</td><td>Cánula arterial con doble luz para conexión ECMO y para introducir balón de oclusión aórtica</td></tr><tr><td>Ethicon LigaClip med/short 20 titanio medio</td><td>ETHICON</td><td>MCS30</td><td>Ligaclips para el control de hemorragias durante la disección inguinal</td></tr><tr><td>Ethicon LigaClip med/short 20 titanio pequeño</td><td>ETHICON</td><td>MCS20</td><td>Ligaclips para el control de hemorragias durante la disección</td></tr> <tr><td>inguinalKit de inserción Bio-medicus 180cm</td><td>MEDTRONIC</td><td>96551</td><td>Kit de inserción para cánulas de ECMO, con catéter, guía de alambre metálico y dilatadores</td></tr><tr><td>Pera de irrigación</td><td>MEDLINE</td><td>DYNDE 20125</td><td>Pera para rellenar con solución salina y purgar las líneas de ECMO en el lugar de conexión con las cánulas</td></tr><tr><td>Jeringa de cono Luer 50cc</td><td>CARDIONATUR</td><td>60ML</td><td>Jeringa rellena de solución salina para rellenar balón</td></tr> <tr><td>de oclusiónMersilk n.º 1, LR-60 CONV , 75 cm</td><td>ETHICON</td><td>W562H</td><td>Sutura curva de seda para la fijación de cánulas</td></tr><tr><td>ECMO Prolene 4/0</td><td>ETHICON</td><td>W8355</td><td>sutura de polipropileno para sarta de fruncido en vasos femorales o sutura vascular</td></tr><tr><td>Prolene 5/0 , 60 cm</td><td>ETHICON</td><td>8325</td><td>sutura de polipropileno para sutura vascular</td></tr><tr><td>Prolene 5/0, 90 cm</td><td>ETHICON</td><td>8720</td><td>sutura de polipropileno para sutura vascular</td></tr><tr><td>Catéter de balón de injerto de stent Reliant&nbsp; 12F</td><td>Medtronic, Irlanda</td><td>AB46</td><td>Balón de oclusión aórtica introducido a través de la arteria femoral. Se utiliza como endoabrazadera</td></tr><tr><td>Hoja de bisturí n.º 11</td><td>INTRAVEN</td><td>150011</td><td></td></tr><tr><td>Hoja de Scapel n.º 23</td><td>INTRAVEN</td><td>150023</td><td></td></tr><tr><td>Tubo de silicona</td><td>IBERHOSPITEX</td><td>0027224-P</td><td>Tubo de silicona para conectar el sistema de succión Seda</td></tr><tr><td>trenzada Sofsilk n.º 1 hebras</td><td>COVIDIEN</td><td>L-12</td><td>Hilo de seda para ligadura o control de hemorragias</td></tr><tr><td>Seda trenzada sofsilk n.º 3 hebras</td><td>COVIDIEN</td><td>L-115</td><td>Cadena de seda para ligadura o control de hemorragias</td></tr><tr><td>conector recto 3/8"x3/8" con bloqueo Luer</td><td>ANDOCOR</td><td>04CS0022</td><td>Pieza para conectar la cánula arterial con la línea ECMO y la llave de paso de tres vías para la línea de presión y la toma de muestras de sangre</td></tr><tr><td>Pack de almohadillas quirúrgicas</td><td>TEXPOL</td><td>146500</td><td></td></tr><tr><td>Grapadora quirúrgica</td><td>COVIDIEN</td><td>8886803712</td><td>Grapadora para cerrar herida quirúrgica</td></tr><tr><td>Llave de paso de tres vías</td><td>BD CONNECTA</td><td>394501</td><td>Llave de paso de tres vías para conectar la cánula farterial con la línea de presión</td></tr><tr><td>Asa de vaso grande</td><td>MEDLINE</td><td>VLMAXR</td><td>Asa vascular para abrazar la arteria y la vena femoral para el control de la hemorragia.</td></tr><tr><td>MEDLINE</td><td></td><td>VLMINR</td><td>Asa vascular que abraza la arteria y la vena femoral para el control de la hemorragia.</td></tr><tr><td>Terminal de succión Yankauer 50 V</td><td>DEXTROMEDICA</td><td></td><td>349701 Terminal de succión para la succión durante la disección quirúrgica</td></tr><tr><td>HERRAMIENTAS QUIRÚRGICAS PARA LA ANULACIÓN</td>Adson retractor 20 <td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>cm y 33 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pinza</td><td></td><td></td><td></td>aórtica</tr><tr><td>Tijeras Boyd 18 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pinza de disección sin mordazas 21 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Retractor Farabeuf tijeras Mayo pequeñas</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>rectas 14 cm y 16 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tijeras Metzembaum 18 cm, 20 cm y 23 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pinzas antimosquitos rectas y curvas</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Portaagujas 18 cm y 23 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pinzas de disección Russ 15 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mango de bisturí n.º 23 y n.º 21,&nbsp; 21 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Disector quirúrgico 23 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td><fuerte>MATERIALES PARA LA OBTENCIÓN DE PULMÓN</fuerte></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>10 cc</td><td>jeringa BD DISCARDIT</td><td>309110</td><td></td></tr><tr><td>Alprostadil 500 mcgs solución inyectable</td><td>PFIZER</td><td></td><td>Prostaglandina inyectada con solución de preservación pulmonar</td></tr><tr><td>Cartucho GIA desechable Steril 6/Ca</td><td>MEDTRONIC</td><td>1141634</td><td></td></tr><tr><td>Grapadora GIA desechable 60/3.8 3/Ca</td> Grapadora de <td>2802122</td><td>MEDTRONIC</td><td>para la división de tráquea y bronquiales</td></tr><tr><td>Catéter Foley 18 Ch</td><td>Folysil Folysil, Coloplast</td><td>AA6118</td><td>catéter urinario empleado en venas pulmonares canuladas para perfusión</td></tr> <tr><td>retrógradaSolución de preservación pulmonar Perfadex 1000 mL</td><td>Medisan, Uppsala, Suecia</td><td>19811 ( caja de 10 unidades)</td><td>Solución de preservación pulmonar</td></tr><tr><td>Mersilk no 1, LR-60 CONV , 75 cm</td><td>ETHICON</td><td>W562H</td><td>Sutura curva de seda para suturas de pericardio</td></tr><tr><td>Cánula venosa pediátrica</td><td>SORIN GROUP</td><td>V132-12</td><td>Cánula utilizada para la canulación de la arteria pulmonar</td></tr><tr><td>Prolene 4/0</td><td>ETHICON</td><td>W8355</td><td>sutura de polipropileno para cordón de bolso en la arteria pulmonar</td></tr><tr><td>Hoja de bisturí n.º 11</td><td>INTRAVEN</td><td>150011</td><td></td></tr><tr><td>Seda trenzada de seda n.º 1 hebras</td><td>COVIDIEN</td><td>L-12</td><td>Tira de seda para fijar la cánula arterial con el torniquete Seda</td></tr><tr><td>trenzada de seda n.º 3 hebras</td><td>COVIDIEN</td><td>L-115</td><td>Tira de seda para ligadura de vasos</td></tr><tr><td>Bolsas</td><td></td><td></td> estériles <td>Para guardar y almacenar pulmones.</td></tr><tr><td>Conector de tensión 1,4"/1,4" con bloqueo luer</td><td>ANDOCOR</td><td>04CS0032</td><td>Pieza para conectar la cánula arterial de la arteria pulmonar con la línea de conservación y la llave de paso de tres vías para prostaglandina</td></tr><tr><td>Llave de paso de tres vías</td><td>BD CONNECTA</td><td>394501</td><td>Llave de paso de tres vías para conectar la cánula arterial con la línea de presión</td></tr><tr><td>Uromatic set para irrigación de doble derivación</td><td>MEDISAVE</td><td>TRC4007N</td><td>Sistema de irrigación para solución de preservación pulmonar</td></tr><tr><td>Uromatic set para irrigación de una derivación</td><td>MEDISAVE</td><td>TRC4002</td><td>Sistema de irrigación para la preservación</td></tr> <tr><td>pulmonar solución<fuerte>HERRAMIENTAS QUIRÚRGICAS PARA LA OBTENCIÓN DE PULMÓN</fuerte></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>pinza</td><td></td><td></td><td></td>cruzada aórtica</tr><tr><td>Sierra quirúrgica</td><td></td><td></td><td></td>a pilas</tr><tr><td>Cooley vascular </td><td></td><td></td><td></td>pinza</tr><tr><td>Pinza de disección 18 cm y 27,9 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Retractor</td><td></td><td></td><td></td>esternal Finochietto</tr><tr><td>Tijeras Metzembaum 20 cm y 23 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pinzas antimosquitos curvadas 12,5 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pinzas vasculares</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td><fuerte>HERRAMIENTAS QUIRÚRGICAS PARA ÓRGANO ABDOMINAL ADQUISICIÓN</fuerte></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Retractores articulados Adson Pinzas</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Allis 16 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pinzas</td><td></td><td></td><td></td>cruzadas aórticas</tr><tr><td>Tijeras Boyd 17 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Portagujas</td><td></td><td></td><td></td>Castroviejo</tr><tr><td>Pinzas vasculares</td><td></td><td></td><td></td> Cooley</tr><tr><td>Pinzas Crile curvadas 18 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Retractor Davis 24,5 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pinzas de disección DeBakey 19,7 cm y 24,1 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pinzas vasculares DeBakey Pinzas</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>de disección de 18 cm y 27,9 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pinzas Duval 23 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Retractores Farabeuf</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Bandejas de riñón de 300 cc y 500 cc</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pinzas Kocher rectas de 18 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Retractores Langenbeck de 21 cm y 23 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tijeras de mayo rectas y curvas , 17 cm</td><td></td><td></td><td></td>Pinzas</tr><tr><td>antimosquitos rectas y curvas, 12,5 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Portaagujas de 15 cm, 18 cm, 23 cm y 23 cm.</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pinzas de guisante 16 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tijeras Potts 19 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pinzas Rochester curvadas 24 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pinzas Rochester rectas 24 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pinzas de disección Russ 15 cm y 20 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mangos de</td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>bisturíRetractor Senn-mueller 16 cm</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

obtención de recuperación rápida pulmonar combinada con perfusión regional normatérmica abdominal en donación controlada después de la muerte circulatoria

Lung Rapid Recovery Procurement Combined with Abdominal Normothermic Regional Perfusion in Controlled Donation after Circulatory Death

La donación controlada después de la muerte circulatoria (DCDC) ha contribuido a aumentar el número de donantes en todo el mundo. Las experiencias publicadas en los últimos años confirman que los resultados después del trasplante de pulmón de DCD c) son similares a los de los donantes con muerte cerebral; sin embargo, la utilización de pulmones de donantes de asistolia sigue siendo baja. Varias razones pueden estar involucradas: diferentes marcos legales entre países y centros con diferentes intervenciones premortem, atención inadecuada del donante de pulmón antes de la adquisición, o incluso mala experiencia con los procedimientos y protocolos de DCDC.
Inicialmente, la técnica de recuperación rápida se empleaba comúnmente para la obtención de órganos torácicos y abdominales en DCDc, pero, en la última década, la perfusión regional normotérmica abdominal (ANRP) con dispositivos de oxigenación por membrana extracorpórea se ha convertido en un método útil para restaurar el flujo sanguíneo a los órganos abdominales, permitiendo su mejora de la calidad y su evaluación funcional antes del trasplante. Esto hace que el procedimiento de donación sea más complejo y genera dudas sobre la lesión de los injertos debido a la doble temperatura.
El objetivo de este artículo es describir un protocolo basado en una experiencia de un solo centro con donantes de Maastricht III que combina enfriamiento pulmonar de recuperación rápida en el tórax y perfusión regional normotérmica abdominal. Se explican consejos y trucos centrados en las intervenciones premortem y las técnicas de procedimiento de obtención pulmonar. Esto puede ayudar a minimizar la renuencia entre los profesionales a utilizar esta técnica combinada y alentar a otros centros donantes a utilizarla, a pesar de la mayor complejidad del procedimiento.

Se realizó un análisis descriptivo de 30 trasplantes pulmonares realizados en el Hospital Universitario Marqués de Valdecilla con pulmones obtenidos de donantes de DCD cDCD en los últimos 2 años, 2020 y 2021. Aquí se presentan las características demográficas de donantes y receptores, los datos técnicos, los resultados postoperatorios y los resultados a corto plazo. Estos resultados se presentan como números absolutos y porcentajes para variables categóricas y como medidas de tendencia central y dispersión para variables...

El protocolo combina una técnica de recuperación rápida de enfriamiento pulmonar con perfusión regional normotérmica abdominal para la obtención de injertos abdominales en donantes de asistolia controlados, que es un método seguro y útil para ampliar el grupo de donantes.

Obtención de recuperación rápida pulmonar combinada con perfusión regional normatérmica abdominal en donación controlada después de la muerte circulatoria

Controlled donation after circulatory death (cDCD) has contributed to increasing donor numbers all over the world. Experiences published in the last years ...

La recuperación multiorgánica para la donación controlada después de donantes de muerte cardíaca es un desafío. Este método aumenta la complejidad de todo el procedimiento, pero ofrece mejores resultados para los destinatarios. Este método minimiza el daño isquémico producido por hipotensión y paro cardíaco tras la retirada de la terapia de soporte vital en donantes.Para comenzar, administre por vía intravenosa un bolo de heparina al donante. Luego prepare una mesa de instrumentación estéril con todo el equipo necesario, la electrocauterización y el sistema de succión. Prepare un campo quirúrgico en la ingle seleccionada con solución desinfectante y cortinas estériles.Haga una incisión longitudinal de ocho a 10 centímetros con una cuchilla número 23 y controle el sangrado con electrocauterio y Ligaclips. Separe los bordes de la herida con un retractor y proceda con la disección para exponer la arteria y la vena femoral. Abraza los vasos femorales con una hebra de seda para controlar el sangrado.Seleccione los diámetros de cánula apropiados de acuerdo con los tamaños de recipiente como se describe en el texto manuscrito. Canular la vena femoral, introduciendo primero un alambre metá

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Medicine

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Injertos marginales, tales como hígados grasos, los injertos procedentes de donantes de edad avanzada, o hígados recuperados después de la muerte cardíaca (DCD) toleran el almacenamiento estático convencional, fría solamente mal. Hemos desarrollado un novedoso modelo de subnormothermic vivo de perfusión ex hígado para su conservación, evaluación y reparación de los injertos hepáticos marginales antes del trasplante.

Técnica de Subnormothermic<em&gt; Ex Vivo</em&gt; Perfusión hepática para el Almacenamiento, Evaluación y Reparación de marginales injertos hepáticos

Se describe un método ex vivo de la máquina de perfusión de injertos de hígado humano a temperatura subnormothermic (21 ° C).

Funcional hígado humano Conservación y Recuperación de Medios de Subnormothermic máquina de perfusión

Este protocolo muestra un enfoque simple y flexible para la evaluación de nuevos agentes acondicionadores o estrategias para aumentar la viabilidad de la donación cardíaca después de la muerte circulatoria.

Modelo preclínico de donación cardíaca después de la muerte circulatoria

El protocolo describe un modelo de donación de animales grandes (porcinos) después de la muerte circulatoria, seguido de perfusión regional normotérmica toracoabdominal que simula de cerca el escenario clínico en el trasplante cardíaco y tiene el potencial de facilitar estudios y estrategias terapéuticas.

Modelo animal grande de donación después de la muerte circulatoria y perfusión regional norterámica para la evaluación cardíaca

En este protocolo, se describe un modelo de trasplante hepático ortotópico porcino después del almacenamiento estático en frío de órganos de donantes durante 20 h sin el uso de un bypass venovenoso durante el injerto. El enfoque utiliza una técnica quirúrgica simplificada con minimización de la fase anhepática y un sofisticado manejo del volumen y vasopresores.

Trasplante de hígado porcino sin bypass venovenoso como modelo de donante de criterios extendidos

En este trabajo se presenta un protocolo de evaluación de un corazón implantado heterotópicamente tras la preservación ex situ normotérmica en el modelo de rata.

Modelo de rata de trasplante cardíaco heterotópico con perfusión ex-situ normotémica

Este protocolo describe la metodología para establecer un modelo porcino que utiliza perfusión mecánica (MP) a temperatura variable controlada para la preservación del hígado del donante, seguido de un trasplante hepático ortotópico (OLTx). Su objetivo es promover la tasa de éxito de OLTx utilizando la donación de hígado después de la muerte circulatoria (DCD) de un donante y establecer un modelo estable.

Preservación del hígado de donación porcina después de la muerte circulatoria (DCD) por perfusión y trasplante hepático ortotópico

El objetivo es desarrollar un nuevo modelo de perfusión pulmonar ex vivo (EVLP) en ratas que pueda mantener una función pulmonar constante durante 4 h durante todo el EVLP y proporcionar a la industria detalles de implementación que ofrecerán un método robusto para aplicar EVLP a modelos de roedores.

Establecimiento de un nuevo sistema de perfusión pulmonar ex vivo para pulmones de rata después de la muerte circulatoria

El protocolo describe un modelo porcino de alta fidelidad de trasplante cardíaco después de la donación después de la muerte circulatoria utilizando la perfusión ex vivo del aloinjerto.

Un modelo porcino de alta fidelidad de trasplante ortotópico de corazón después de la donación después de la muerte circulatoria

Este protocolo presenta un modelo de perfusión pulmonar ex-vivo en ratas que incorpora una exposición transitoria a un estrés térmico calibrado, promoviendo mecanismos protectores endógenos para el reacondicionamiento terapéutico de injertos pulmonares dañados. El enfoque es escalable y reproducible y apoya el desarrollo de terapias no farmacológicas para mejorar el éxito del trasplante de pulmón.

Preacondicionamiento térmico durante la perfusión pulmonar ex vivo para la rehabilitación de injertos pulmonares dañados antes del trasplante

Aprende la técnica de recuperación pulmonar rápida con perfusión regional normotérmica abdominal para donación controlada tras muerte circulatoria. Este método seguro expande la disponibilidad de órganos y mejora los resultados del trasplante.

Obtención de recuperación rápida pulmonar combinada con perfusión regional normatérmica abdominal en donación controlada después de la muerte circulatoria (Video) | JoVE Journal

Obtención de recuperación rápida pulmonar combinada con perfusión regional normatérmica abdominal en donación controlada después de la muerte circulatoria

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