Name: Fuente y ruta de contaminación por alcaloides pirrolizidina en muestras de té (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-09-28T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 4 s
Description: Aprende a detectar alcaloides pirrolizidina en muestras de té mediante extracción con ácido sulfúrico y limpieza con adsorbente. Este método eficiente permite identificar fuentes de contaminación en hojas frescas, secas y malezas.

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Este trabajo fue apoyado por la Fundación Nacional de Ciencias Científicas Naturales de China (32102244), el Proyecto Nacional de Calidad e Inocuidad y Evaluación de Riesgos de Productos Agrícolas (GJFP2021001), la Fundación Científica Natural de la Provincia de Anhui (19252002) y el USDA (HAW05020H).

Para el presente estudio, se recolectaron las siguientes especies de malezas: Ludwigia prostrata Roxb., Murdannia triquetra (Wall. ex C. B. Clarke) Bruckn., Ageratum conyzoides L., Chenopodium ambrosioides, Trachelospermum jasminoide (L.) Lem., Ageratum conyzoides L., Emilia sonchifolia (L.) DC, Ageratum conyzoides L. y Crassocephalum crepidioides (Benth.) S. Moore. Las hojas de té frescas se recogieron de la variedad de árboles de té Longjing 43 #, y las muestras de té seco estaban disponibles comercialmente para el té procesado de acuerdo con el proceso de fabricación del té verde (ver Tabla de materiales).
1. Recogida de muestras
<ol><li>Recoge 40 muestras reales.<ol><li>Recolecte 10 malezas, 10 suelos y 10 hojas de té frescas al azar de múltiples jardines de té. NOTA: Para el presente estudio, el suelo fue muestreado a una profundidad de 20 cm con una cantidad de muestra de 200 g.</li>
		<li>Recoja al azar 10 productos de té seco (250 g) de un supermercado.</li>
	</ol></li>
	<li>Recoja muestras de malezas, tierra y hojas de té frescas para estudiar la fuente de contaminación de los PA en el té.<ol><li>Establezca cinco puntos de muestreo en el mismo jardín de té, con tres réplicas en cada punto.</li>
		<li>Recoja muestras de malezas de Ageratum conyzoides L. con el mayor contenido de PA que se encuentra comúnmente en los jardines de té. NOTA: La cantidad muestral fue de 250 g para el presente estudio.</li>
		<li>Recoger las muestras de suelo. NOTA: Las muestras de suelo fueron suelo rizosférico de A. conyzoides a una profundidad de 20 cm con una cantidad muestral de 200 g.</li>
		<li>Recoja las hojas de té frescas de diferentes partes de las plantas de té, incluyendo un brote con dos hojas, un brote con tres hojas, un brote con cuatro hojas y hojas maduras. NOTA: La cantidad de muestra fue de 250 g.</li>
	</ol></li>
</ol>2. Tratamiento de la muestra
<ol><li>Pretrate las muestras siguiendo los pasos a continuación.<ol><li>Moler las muestras de té seco y tierra con un molinillo, pasar las muestras pulverizadas a través de un tamiz de malla 200 y almacenarlas a -20 ° C. NOTA: El té seco era un producto de té disponible comercialmente (ver Tabla de materiales), por lo que se trituraba y tamizaba directamente para su almacenamiento. Las muestras de suelo (200 g) se colocaron en un lugar ventilado en la oscuridad para secar al aire durante aproximadamente una semana.</li>
		<li>Homogeneice la hierba y las hojas de té frescas con un homogeneizador y guárdelas a -20 °C.</li>
	</ol></li>
	<li>Realice un tratamiento de muestra de los productos de té seco, hojas de té frescas y malezas.<ol><li>Pesar 1,00 g de cada muestra (productos de té secos, hojas de té frescas y malezas) y colóquela en tubos de centrífuga de 50 ml.</li>
		<li>Agregue 10 ml de solución de ácido sulfúrico 0.1 mol / L y vórtice durante 2 minutos para la extracción en fase sólida (usando cartucho SPE, consulte la Tabla de materiales) y 1 min para la purificación del adsorbente. Realice la extracción ultrasónica23 durante 15 min, y luego centrifugar durante 10 min a una velocidad de 9,390 x g a temperatura ambiente. NOTA: La potencia del oscilador ultrasónico fue de 290 W, la frecuencia de oscilación fue de 35 kHz y la temperatura se estableció en 30 ° C.</li>
		<li>Transfiera el sobrenadante a un tubo de centrífuga de 50 ml con un gotero de punta de plástico.</li>
		<li>Siga los pasos anteriores para repetir la extracción una vez. Combine los dos sobrenadantes.<ol><li>Active los cartuchos SPE con 5 mL de metanol y 5 mL de agua desionizada. Agregue 10 ml de sobrenadante al cartucho preactivado y realice la limpieza de la muestra.</li>
			<li>Después de que el nivel de la solución de muestra haya alcanzado la capa superior de los cartuchos, eluya los analitos con 5 ml de solución de ácido fórmico al 1% y luego 5 ml de metanol. Deseche el eluido.</li>
			<li>Eluya con 5 ml de metanol (que contiene 0,5% de agua de amoníaco), filtre el eluido a través de un filtro de membrana de 0,22 μm y analice mediante UPLC-MS/MS (consulte la Tabla de materiales).</li>
		</ol></li>
		<li>Realice la limpieza de muestras utilizando adsorbentes.<ol><li>Tomar 2 ml del sobrenadante (paso 2.2.4) en un tubo de centrífuga de 10 ml lleno con los adsorbentes de GCB:PSA:C18 (10 mg:20 mg:15 mg, ver Tabla de materiales), vórtice durante 1 min y centrifugar a 9,390 x g durante 8 min a temperatura ambiente.</li>
			<li>Pasar 1 ml del sobrenadante a través de un filtro de membrana de 0,22 μm antes del análisis por UPLC-MS/MS.</li>
		</ol></li>
	</ol></li>
	<li>Realizar el tratamiento de las muestras de suelo.<ol><li>Pesar una muestra de suelo de 1,00 g. Colóquelo en un tubo de centrífuga de 50 ml y agregue 0.1 ml de solución de citrato trisódico de 0.1 mol / L (consulte la Tabla de materiales) para ajustar el valor del pH del suelo a 6.0.</li>
		<li>Deje reposar durante 2 minutos y luego agregue 10 ml de solución de metanol de ácido sulfúrico 0.1 mol / L, vórtice durante 2 minutos y agite durante 30 minutos, y luego realice la extracción ultrasónica durante 30 minutos.</li>
		<li>Centrifugar a 9.390 x g durante 10 min, y transferir el sobrenadante a un tubo de centrífuga de 50 ml con un gotero de punta de plástico.</li>
		<li>Siga los pasos anteriores para repetir la extracción y combine el sobrenadante dos veces. NOTA: El método de purificación fue el mismo que en los pasos 2.2.5.1 y 2.2.5.2.</li>
	</ol></li>
</ol>3. Análisis instrumental
<ol><li>Detecte los 15 PA en muestras de té seco, hojas de té frescas, malezas y tierra (muestras del paso 2) utilizando un sistema UPLC-MS/MS disponible comercialmente (2.1 mm x 100 mm, 1.8 μm) (ver Tabla de materiales).</li>
	<li>Ajuste la temperatura de la columna a 40 °C, el caudal a 0,250 ml/min y el volumen de inyección a 3 μL.</li>
	<li>Establezca la fase móvil A: metanol (que contiene 0,1% de ácido fórmico + 1 mmol / L de formiato de amonio) y la fase móvil B: agua (que contiene 0,1% de ácido fórmico + 1 mmol / L de formiato de amonio).</li>
	<li>Establezca un procedimiento de elución de gradiente: 10% A de 0.0 min a 0.25 min, 10% -30% A de 0.25 min a 6.0 min, 30%-40% A de 6.0 min a 9.0 min, 40%-98% A de 9.0 min a 9.01 min que se mantuvo durante 1.9 min, y 98%-100% A de 11.0 min a 11.1 min que se mantuvo durante 2.9 min.</li>
	<li>Ajuste los parámetros del espectrómetro de masas: modo de ionización, fuente de iones positivos por electrospray (ESI+); presión del atomizador, 7,0 bar; tensión capilar, 4,0 kV; flujo de soplado hacia atrás del orificio cónico, 150 L/h; caudal de gas disolvente, 800 L/h; temperatura del disolvente, 400 °C; caudal de gas de impacto, 0,25 mL/min.</li>
</ol>

<ol><li>Schramm, S., Kohler, N., Rozhon, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pyrrolizidine+alkaloids%3A+Biosynthesis%2C+biological+activities+and+occurrence+in+crop+plants%5BTitle%5D)+AND+%22Molecules%22%5BJournal%5D)">Pyrrolizidine alkaloids: Biosynthesis, biological activities and occurrence in crop plants.</a> Molecules. 24 (3), 498(2019).</li>
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<li>Izcara, S., Casado, N., Morante-Zarcero, S., Sierra, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+miniaturized+QuEChERS+method+combined+with+ultrahigh+liquid+chromatography+coupled+to+tandem+mass+spectrometry+for+the+analysis+of+pyrrolizidine+alkaloids+in+oregano+samples%5BTitle%5D)+AND+%22Foods%22%5BJournal%5D)">A miniaturized QuEChERS method combined with ultrahigh liquid chromatography coupled to tandem mass spectrometry for the analysis of pyrrolizidine alkaloids in oregano samples.</a> Foods. 9 (9), 1319(2020).</li>
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<li>Johnson, A. E., Molyneux, R. J., Merrill, G. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chemistry+of+toxic+range+plants.+Variation+in+pyrrolizidine+alkaloid+content+of+Senecio%2C+Amsinckia%2C+and+Crotalaria+species%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Agricultural+and+Food+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Chemistry of toxic range plants. Variation in pyrrolizidine alkaloid content of Senecio, Amsinckia, and Crotalaria species.</a> Journal of Agricultural and Food Chemistry. 33 (1), 50-55 (1985).</li>
<li>Vrieling, K., de Vos, H., van Wijk, C. A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+analysis+of+the+concentrations+of+pyrrolizidine+alkaloids+in+Senecio+jacobaea%5BTitle%5D)+AND+%22Phytochemistry%22%5BJournal%5D)">Genetic analysis of the concentrations of pyrrolizidine alkaloids in Senecio jacobaea.</a> Phytochemistry. 32 (5), 1141-1144 (1993).</li>
<li>Han, H. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development%2C+optimization%2C+validation+and+application+of+ultra+high+performance+liquid+chromatography+tandem+mass+spectrometry+for+the+analysis+of+pyrrolizidine+alkaloids+and+pyrrolizidine+alkaloid+N-oxides+in+teas+and+weeds%5BTitle%5D)+AND+%22Food+control%22%5BJournal%5D)">Development, optimization, validation and application of ultra high performance liquid chromatography tandem mass spectrometry for the analysis of pyrrolizidine alkaloids and pyrrolizidine alkaloid N-oxides in teas and weeds.</a> Food control. 132, 108518(2022).</li>
<li>Bodi, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Determination+of+pyrrolizidine+alkaloids+in+tea%2C+herbal+drugs+and+honey%5BTitle%5D)+AND+%22Food+Additives+%26+Contaminants%3A+Part+A%22%5BJournal%5D)">Determination of pyrrolizidine alkaloids in tea, herbal drugs and honey.</a> Food Additives & Contaminants: Part A. 31 (11), 1886-1895 (2014).</li>
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</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

El presente trabajo fue diseñado para desarrollar un método eficaz y sensible para explorar las rutas de contaminación y las fuentes de AP en muestras de té, así como la distribución de AP en diferentes partes de las plantas de té. Sin embargo, en este estudio, sólo 15 PA fueron separados con éxito en la columna cromatográfica, que es un número muy pequeño en comparación con el gran número de alcaloides en las especies de plantas 3,4. Esto no solo estaba relacion...

Como metabolitos secundarios, los alcaloides de pirrolizidina (AP) protegen a las plantas contra herbívoros, insectos y patógenos 1,2. Hasta ahora, se han encontrado más de 660 PA y óxidos de PA (PANO) con diferentes estructuras en más de 6.000 especies de plantas en todo el mundo 3,4. Las plantas productoras de PA se encuentran principalmente en las familias Asteraceae, Boraginaceae, Fabaceae y Apocynaceae 5,6. Los PA se oxidan fácilmente a alcaloides deshidropirrolizidina inestables, que tienen una fuerte electrofilicidad y pueden atacar nucleófilos como el ADN y las proteínas, lo que resulta en necrosis de células hepáticas, oclusiones venosas, cirrosis, ascitis y otros síntomas 7,8. El principal órgano diana de la toxicidad por PA es el hígado. Los AP también pueden causar toxicidad pulmonar, renal y de otros órganos, así como toxicidad mutagénica, carcinogénica y para el desarrollo 9,10.
En muchos países se han notificado casos de intoxicación humana y animal por la ingestión de hierbas, suplementos o tés tradicionales que contienen AP o la contaminación indirecta de alimentos como la leche, la miel o la carne (tóxicos por la ingestión de pastos que contienen AP)11,12,13. Los resultados de la Autoridad Europea de Seguridad Alimentaria (EFSA) indican que sustancias como el té (a base de hierbas) son una fuente importante de exposición humana a las AP/PANO14. Las muestras de té no producen AP, mientras que las plantas productoras de PA se encuentran comúnmente en jardines de té (por ejemplo, Emilia sonchifolia, Senecio angulatus, y Ageratum conyzoides)15. Anteriormente se sospechaba que el té podría estar contaminado con PA de sus plantas productoras durante la recolección y el procesamiento. Sin embargo, también se detectaron AP en algunas hojas de té recogidas a mano (es decir, sin plantas productoras de AP), lo que sugiere que debe haber otras rutas o fuentes de contaminación16. Se realizó un experimento de cocultivo de artemisa (Senecio jacobaea) con melisa (Melissa officinalis), menta (Mentha piperita), perejil (Petroselinum crispum), manzanilla (Matricaria recutita) y capuchina (Tropaeolum majus), y los resultados mostraron que se detectaron APs en todas estas plantas17. Se ha verificado que las AP son efectivamente transferidas e intercambiadas entre plantas vivas a través del suelo18,19. Van Wyk et al.20 encontraron que el té rooibos (Aspalathus linearis) estaba severamente contaminado en sitios ricos en malezas y contenía AP del mismo tipo y proporción. Sin embargo, no se detectaron AP en el té rooibos en sitios libres de malezas.
En la actualidad, la cromatografía líquida de ultra alta resolución espectrometría de masas en tándem (UPLC-MS/MS) con alta selectividad y sensibilidad ha sido ampliamente utilizada en el análisis cualitativo y cuantitativo de APs en productos agrícolas y alimentarios21,22. El método de tratamiento de la muestra generalmente consiste en la extracción en fase sólida (SPE) o en la limpieza QuEChERS (Quick Easy Cheap Effective Rugged Safe) de extractos de matrices alimentarias complejas, que pueden obtener la mayor sensibilidad posible12,19. Sin embargo, todavía faltan métodos analíticos robustos que permitan la detección y cuantificación de AP en matrices complejas como tierra, malezas y hojas de té frescas.
Este estudio analizó 15 PA en muestras de té seco, hojas de té frescas, malezas y muestras de suelo rizosférico de malezas con UPLC-MS / MS combinado con un método de purificación adsorbente. Además, se recolectaron 15 muestras de suelo rizosférico de malezas y malezas emparejadas y 60 muestras de hojas de té frescas de cinco sitios de muestreo en el jardín de té Jinzhai en la provincia de Anhui, China, y se analizaron para detectar 15 AP. Estos resultados pueden proporcionar un método de encuesta y cierta información sobre la fuente y la ruta de las AP (contaminación) en las muestras de té para garantizar la calidad y seguridad del té.

<table><tbody><tr><td>Acetonitrilo (99.9%)</td><td>Tedia Company,Inc.</td><td>21115197</td><td>CAS No:75-05-8</td></tr><tr><td>Amoníaco (25%-28%)</td><td>Wuxi Zhanwang Chemical Reagent Co., Ltd.</td><td>181210</td><td>Nº CAS:1336-21-6</td></tr><tr><td>Formiato de amonio (97,0%)</td><td>Anpel Laboratory Technoiogies (Shanghái)</td><td>G0860050</td><td>Nº CAS:540-69-2</td></tr><tr><td>Carbono-GCB</td><td>CNW</td><td>B7760030</td><td>120-400 Malla, 10 g. por caja&nbsp;</td></tr><tr><td>Centrífuga Z 36 HK</td><td>HERMLE</td><td>Z36HK</td><td>30000&nbsp; rpm (min:10 rpm), Dimensiones (W x H x D):&nbsp; 71,5 cm&tiempos; 42 cm y tiempos; 51 cm</td></tr><tr><td>Producto de té disponible comercialmente</td><td>Lvming, Qingshan, Luyuchun, Changling, Huixing, Wuyunjian, Heshengchun</td><td>té a granel</td><td>Té verde</td></tr><tr><td>Europine N-oxid (EuNO) (98.0%)</td><td>BioCrick</td><td>323256</td><td>CAS No:65582-53-8</td></tr><tr><td>Europine (Eu) (98.0%)</td><td>BioCrick</td><td>98222</td><td>CAS No:570-19-4</td></tr><tr><td>Formiato (98.0%)</td><td>Aladdin</td><td>E2022005</td><td>CAS No:64-18-6</td></tr><tr><td>HC-C18</td><td>CNW</td><td>D2110060</td><td>40-63 &mu; m,100g.por caja</td></tr><tr><td>Heliotrino (He) (98.0%)</td><td>BioCrick</td><td>906426</td><td>CAS No:303-33-3</td></tr><tr><td>Heliotrino-N-óxido (HeNO) (98.0%)</td><td>BioCrick</td><td>22581</td><td>CAS No:6209-65-0</td></tr><tr><td>Centrífuga de alta velocidad TG16-WS</td><td>cence</td><td>203158000</td><td>Max:16000 r/min, 330 &times; 390 &times; 300 mm (L &times; W & veces; H), Capacidad: 6 y veces; 50 mL</td></tr><tr><td>HSS T3 columna</td><td>Waters</td><td>186004976</td><td>ACQUITY UPLC HSS T3 (2.1 &times; 100 mm 1.8 &mu; m)</td></tr><tr><td>Intermedine (Im) (98.0%)</td><td>BioCrick</td><td>114843</td><td>Nº CAS:10285-06-0</td></tr><tr><td>N-óxido intermedio (ImNO) (98.0%)</td><td>BioCrick</td><td>340066</td><td>Nº CAS:95462-14-9</td></tr><tr><td>Jacobine (Jb) (98.0%)</td><td>BioCrick</td><td>132282048</td><td>Nº CAS:6870-67-3</td></tr><tr><td>Jacobine-N-óxido (JbNO) (98.0%)</td><td>ChemFaces</td><td>CFN00461</td><td>Nº CAS:38710-25-7</td></tr><tr><td>Alcohol metílico (99.9%)</td><td>Compañía Tedia, Inc.</td><td>21115100</td><td>CAS No:67-56-1</td></tr><tr><td>PSA</td><td>Agela</td><td>P19-00833</td><td>40-60 &mu; m, 60 y Aring; 100g.por caja</td></tr><tr><td>Retrorsina (Re) (98.0%)</td><td>BioCrick</td><td>5281743</td><td>Nº CAS:480-54-6</td></tr><tr><td>Retrorsina-N-óxido (ReNO) (98.0%)</td><td>BioCrick</td><td>5281734</td><td>Nº CAS:15503-86-3</td></tr><tr><td>Senecionina (Sc) (98.0%)</td><td>BioCrick</td><td>5280906</td><td>Nº CAS:130-01-8</td></tr><tr><td>Senecionina-N-óxido (ScNO) (98.0%)</td><td>BioCrick</td><td>5380876</td><td>Nº CAS:13268-67-2</td></tr><tr><td>Senecifilina N-óxido (SpNO) (98.0%)</td><td>BioCrick</td><td>6442619</td><td>CAS No:38710-26-8</td></tr><tr><td>Senecifilina (Sp) (98.0%)</td><td>BioCrick</td><td>5281750</td><td>CAS No:480-81-9</td></tr><tr><td>Senkirkine (Sk) (98.0%)</td><td>BioCrick</td><td>5281752</td><td>CAS No:2318-18-5</td></tr><tr><td>SPE PCX</td><td>Agilent Technologies</td><td>12108206</td><td>Modo mixto catiónico, 6 mL</td></tr><tr><td>Ácido sulfúrico (97%)</td><td>Wuxi Zhanwang Chemical Reagent Co., Ltd. </td><td>1003019</td><td>CAS No:7664-93-9</td></tr><tr><td>Citrato trisódico</td><td>Sinpharm Chemical Reagent Co., Ltd.</td><td>20121009</td><td>CAS No:6132-04-3</td></tr><tr><td>Limpiador ultrasónico</td><td>Supmile</td><td>KQ-600B Tamaño de</td><td>la ranura interna: 500 y veces; 300 y veces; 150 mm; Capacidad: 22.5 L</td></tr><tr><td>UPLC-xevoTQMS</td><td>Waters</td><td>ZPLYY-003</td><td>Analizador de masas de varilla triple de cuatro etapas, Waters Alliance 2695/Waters ACQUITY UPLC Sistema de fase líquida</td></tr><tr><td>Oscilador de termostato de baño de agua</td><td>Instrumento Guoyu</td><td>SHY-2AHS</td><td>Tiempos de oscilación: &nbsp; 60-300 veces/min, Rango de temperatura constante: temperatura ambiente a 100 &ng; C</td></tr></tbody></table>

fuente y ruta de contaminación por alcaloides pirrolizidina en muestras de té

Source and Route of Pyrrolizidine Alkaloid Contamination in Tea Samples

Los alcaloides tóxicos de pirrolizidina (PA) se encuentran en muestras de té, que representan una amenaza para la salud humana. Sin embargo, la fuente y la ruta de contaminación por PA en muestras de té no están claras. En este trabajo, se desarrolló un método adsorbente combinado con UPLC-MS / MS para determinar 15 PA en la maleza Ageratum conyzoides L., suelo rizosférico de A. conyzoides , hojas de té frescas y muestras de té secas. Las recuperaciones promedio oscilaron entre 78% y 111%, con desviaciones estándar relativas de 0.33% -14.8%. Quince pares de muestras de suelo rizosférico de A. conyzoides y A. conyzoides y 60 muestras de hojas de té frescas se recolectaron del jardín de té Jinzhai en la provincia de Anhui, China, y se analizaron para las 15 AP . No se detectaron los 15 PA en hojas de té frescas, excepto el N-óxido intermedio (ImNO) y la senecionina (Sn). El contenido de ImNO (34,7 μg/kg) fue mayor que el de Sn (9,69 μg/kg). Además, tanto ImNO como Sn se concentraron en las hojas jóvenes de la planta del té, mientras que su contenido fue menor en las hojas viejas. Los resultados indicaron que los PA en el té se transfirieron a través del camino de las malezas productoras de PA-suelo-hojas de té frescas en los jardines de té.

Se estableció el método optimizado de purificación y análisis de adsorbentes de 15 PA en muestras de té seco, hojas de té frescas, malezas y suelo y se comparó con el método de purificación comúnmente utilizado utilizando el cartucho SPE. Los resultados mostraron que las recuperaciones de los 15 PA en muestras de té seco, malezas y hojas de té frescas utilizando el cartucho SPE fueron del 72% -120%, mientras que el uso de la purificación adsorbente fue del 78% -98% (Figura 1). Las recuperaci...

El presente protocolo describe la contaminación de los alcaloides de pirrolizidina (PA) en muestras de té de malezas productoras de PA en jardines de té.

Fuente y ruta de contaminación por alcaloides pirrolizidina en muestras de té

Toxic pyrrolizidine alkaloids (PAs) are found in tea samples, which pose a threat to human health. However, the source and route of PA contamination in ...

El desarrollo de un método de detección de 15 alcaloides de pirrolizidina en malezas, suelo, hojas de té frescas y muestras de té seco puede proporcionar apoyo técnico para explorar la fuente de contaminación por alcaloides de pirrolizidina en el té. En comparación con la extracción en fase sólida, el método adsorbente para la muestra de suelo puede ahorrar tiempo, reducir el costo y mejores recuperaciones para el análisis de alcaloides de pirrolizidina. Para comenzar la extracción en los productos de té seco precalentados, hojas de té frescas o malezas, pese un gramo de una muestra en un tubo de centrífuga de 50 mililitros y agregue 10 mililitros de 0.1 moles por litro de solución de ácido sulfúrico en el tubo.A continuación, realice un vórtice de la muestra durante dos minutos si se va a analizar mediante extracción en fase sólida, mientras que durante un minuto si la misma se va a analizar mediante limpieza de adsorbentes. Luego someta la muestra a la extracción ultrasónica durante 15 minutos, seguida de centrifugación a 9, 390 G durante 10 minutos a temperatura ambiente. Luego, con un gotero con punta de plástico, transfiera la solución sobrenadante a un tubo de centrífuga de 50 mililitros.Después de realizar la extracción dos veces, combine los sobrenadantes en el tubo. Para comenzar la extracción en el suelo preparado, pese un gramo de una muestra en un tubo de centrífuga de 50 mililitros. Agregue 0.1 mililitros de 0.1 moles por litro de solución de citrato trisódico para ajustar el pH del suelo a 6.0 y deje reposar la muestra durante dos minutos.Luego agregue 10 mililitros de 0.1 moles por litro de solución de metanol de ácido sulfúrico en el tubo, y vortex la muestra durante dos minutos, seguido de agitar durante 30 minutos. A continuación, realice la extracción ultrasónica durante 30 minutos como se demostró anteriormente. Luego centrifugar la muestra a 9, 390 G durante 10 minutos.Y usando un gotero con punta de plástico, transfiera el sobrenadante a un tubo de centrífuga de 50 mililitros. Después de realizar la extracción dos veces, combine los sobrenadantes. Active el cartucho de extracción en fase sólida o SPE con cinco mililitros de metanol seguidos de cinco mililitros de agua desionizada.Después de la activación, agregue 10 mililitros del sobrenadante de la extracción de la muestra al cartucho preactivado. Después de que el nivel de la solución de muestra alcance la capa superior de cartuchos, eluya la matriz de muestra con cinco mililitros de solución de ácido fórmico al 1%, seguido de cinco mililitros de metanol, y deseche los eluyentes. A continuación, eluya los analitos con cinco mililitros de metanol que contiene 0,5% de agua de amoníaco.Filtrar el eluyente a través de un filtro de membrana de 0,22 micras para analizar por UPLC-MS/MS. Para realizar la limpieza de la muestra con adsorbente, prepare un tubo de centrífuga de 10 mililitros con el adsorbente comprometiendo GCB, PSA y C18 en una proporción de 10 a 20 a 15 miligramos. Luego agregue dos mililitros del sobrenadante obtenido después del tratamiento de la muestra.A continuación, vortex la muestra y la mezcla adsorbente durante un minuto y centrifugar a 9, 390 G durante ocho minutos a temperatura ambiente. Filtrar un mililitro del sobrenadante resultante a través de un filtro de membrana de 0,22 micras en un vial de muestra antes de analizarlo por UPLC-MS/MS. En el estudio, se obtuvo un mayor porcentaje de recuperación de 15 alcaloides de pirrolizidina de hojas de té frescas, muestras de té seco y malezas utilizando la técnica de purificación adsorbente en comparación con el método de cartucho SPE.Las recuperaciones de los alcaloides en el suelo mediante purificación adsorbente fueron del 79 al 111% En las hojas de té frescas recogidas en los cinco sitios de muestreo, se detectó un mayor contenido de N-óxido intermedino que de senecionina. No se detectó senecionina en hojas maduras de los sitios de muestreo uno y dos. Entre los 11 alcaloides de pirrolizidina, solo se detectó N-óxido intermedino en el suelo, mientras que la senecionina y el N-óxido intermedino se detectaron en diferentes partes de las plantas de té.Además, se encontró que el contenido del N-óxido Intermedine en un brote con dos hojas era el más alto. Al intentar esto primero, lo más importante es agregar 0.1 mililitros de 0.1 moles por litro de solución de citrato trisódico para ajustar el pH del suelo a 6.0. Este método se puede aplicar al análisis de alcaloides en otras plantas comestibles, y también proporciona una técnica natural para explorar la fuente de alcaloides en ellos.

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Fuente y ruta de contaminación por alcaloides pirrolizidina en muestras de té

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