-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

ES

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

Spanish

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Neuroscience
Imágenes intravitales de la expresión de proteínas fluorescentes en ratones con una lesión cerebr...
Imágenes intravitales de la expresión de proteínas fluorescentes en ratones con una lesión cerebr...
JoVE Journal
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Neuroscience
Intravital Imaging of Fluorescent Protein Expression in Mice with a Closed-Skull Traumatic Brain Injury and Cranial Window Using a Two-Photon Microscope

Imágenes intravitales de la expresión de proteínas fluorescentes en ratones con una lesión cerebral traumática de cráneo cerrado y ventana craneal utilizando un microscopio de dos fotones

Full Text
1,381 Views
08:25 min
April 21, 2023

DOI: 10.3791/64701-v

Jianjun Zhong1,2, Georgia Gunner3, Nils Henninger1, Dorothy P. Schafer3, Daryl A. Bosco1

1Department of Neurology,University of Massachusetts Chan Medical School, 2Department of Neurosurgery,The First Affiliated Hospital of Chongqing Medical University, 3Department of Neurobiology,University of Massachusetts Chan Medical School

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Summary

Este estudio demuestra la administración de una lesión cerebral traumática repetitiva a ratones y la implantación simultánea de una ventana craneal para la posterior obtención de imágenes intravitales de un EGFP expresado por neuronas mediante microscopía de dos fotones.

Transcript

Nuestro protocolo proporciona una forma de visualizar la respuesta neuronal al estrés mecánico en un ratón vivo, lo que puede proporcionar evidencia directa de cómo la lesión cerebral traumática afecta al cerebro. Esta técnica puede monitorizar la proteína diana en la misma ubicación cerebral en el mismo animal tanto para la fase aguda como para la crónica después de una lesión cerebral traumática. El gen de interés y el promotor del virus se pueden cambiar en consecuencia para estudiar otras proteínas en los tipos específicos de células del cerebro.

Para comenzar, aplique ungüento oftálmico en los ojos del ratón anestesiado. Retira el cabello de la parte superior de la cabeza recortándolo con unas tijeras normales. Después de establecer una incisión de 12 a 15 milímetros de largo en la línea media, extirpe la piel sobre los hemisferios izquierdo y derecho del cráneo con unas tijeras de resorte de punta curva.

Una vez que el cráneo esté expuesto, retire el periostio frotándolo suavemente con el aplicador estéril con punta de algodón y enjuagándolo con solución salina estéril. Una vez que el área del cráneo esté seca, marque el sitio de impacto de la lesión cerebral traumática, o TBI, en las coordenadas 2.5 milímetros posteriores al bregma y dos milímetros laterales desde la sutura sagital hacia la derecha. Retire rápidamente el mouse del marco estereotáxico y coloque la cabeza en el cojín amortiguador debajo del dispositivo TBI.

Alinee la punta del impactador con el sitio de impacto marcado. Levante la columna de metal tirando de la cuerda de nailon atada 15 centímetros por encima de la cabeza del ratón y luego suéltela, permitiendo que el peso caiga libremente sobre la varilla del transductor, que está en contacto con la parte superior del cráneo en el sitio de la lesión cerebral traumática. Coloque la cabeza del ratón anestesiado en el marco estereotáxico que se mantiene bajo el microscopio quirúrgico.

Taladre suave y lentamente la superficie del cráneo con una broca de carburo FG4 a baja velocidad del rotor para eliminar el periostio restante y crear una superficie rugosa del cráneo de modo que el cemento dental se una de forma segura al cráneo. Use solución salina para enjuagar y eliminar el polvo óseo de la superficie del cráneo. Para separar los músculos laterales del cráneo, aproximadamente a cinco milímetros por detrás del ojo, donde se encuentra la sutura que conecta el cráneo parietal y temporal, inserte suavemente las puntas cerradas finas y mueva suavemente las puntas cerradas en dirección posterior hasta la sutura lambdoidea.

Separe los músculos laterales del lado donde se realizará la implantación de la ventana craneal. Lave los residuos del sitio quirúrgico con solución salina y seque el área con una gasa. Para implantar el poste de la cabeza, marque el punto central 2,5 milímetros posterior al bregma y a 1,5 milímetros de la sutura sagital en el hemisferio derecho con un rotulador y una pinza quirúrgica.

A continuación, trace la circunferencia de la craneotomía sobre el cráneo limpio y seco. Afloje la barra de la oreja y gire la cabeza, de modo que el plano de la craneotomía quede perfectamente horizontal, y luego vuelva a apretar la barra de la oreja. Use la barra de madera de un aplicador con punta de algodón para agregar dos pequeñas gotas de superpegamento en el borde delantero y trasero del poste de la cabeza.

Coloque el poste de titanio sobre el centro de la craneotomía y ajústelo rápidamente para que descanse dentro del mismo plano donde se implantará la ventana craneal. Aplica una ligera presión hasta que el superpegamento se seque, lo que suele tardar aproximadamente 30 segundos. Prepare el cemento dental en una placa de cerámica preenfriada mezclando bien 300 miligramos de cemento en polvo, seis gotas de líquido QuickBase y una gota de catalizador.

Aplique rápidamente una cantidad generosa de mezcla de cemento dental en el perímetro exterior de la circunferencia trazada y cubra cualquier superficie ósea expuesta. Sin embargo, no cubra el sitio de la craneotomía. Suelte la barra de la oreja y asegure el poste de la cabeza al marco de metal para asegurarse de que la cabeza esté estable para una perforación precisa a lo largo de la circunferencia de craneotomía marcada.

Para realizar la craneotomía, use un calibrador quirúrgico para verificar el diámetro del círculo marcado como se demostró anteriormente, y ajústelo según sea necesario, de modo que la ventana craneal encaje perfectamente dentro de la craneotomía. Con un taladro dental eléctrico, grabe y adelgace el cráneo a lo largo de la parte exterior del círculo marcado con una broca de carburo FG4 primero, lo que crea una pista dentro de la cual adelgazar el cráneo. Riegue el área con solución salina para eliminar el polvo de los huesos.

Continúe adelgazando el cráneo con una broca de carburo FG 1/4 hasta que el cráneo sea delgado como el papel y transparente. Periódicamente, deje de perforar y vuelva a irrigar toda el área con solución salina estéril para reducir el calentamiento del taladro y eliminar el polvo óseo. Complete el adelgazamiento del cráneo con una broca de carburo EF4 y continúe adelgazando y perforando el resto del cráneo a lo largo de la pista.

Inserte una pinza de punta fina de 0,5 milímetros a través del lugar agrietado y levante el colgajo óseo suavemente hacia arriba sin hacer mella en el cerebro subyacente. Después de retirar el colgajo óseo, irrigar el área de la craneotomía con solución salina. Con las pinzas quirúrgicas de punta curva, retire suavemente la materia aracnoidea visible.

Use las pinzas quirúrgicas de punta recta para levantar la ventana de vidrio estéril con el deslizamiento de la cubierta de vidrio de tres milímetros hacia abajo. Coloque y ajuste la ventana de vidrio sobre el sitio de la craneotomía para asegurarse de que la ventana pueda ajustarse perfectamente al borde de la craneotomía. El cubreobjetos de cristal de cinco milímetros está en la parte superior.

Prepare el cemento dental como se demostró anteriormente y espere aproximadamente seis minutos hasta que el cemento se vuelva pastoso y espeso. Mientras espera que el cemento se vuelva pastoso y espeso, aplique una cantidad adecuada de presión a la ventana a través de un manipulador estereotáxico para verificar que el cráneo pueda entrar en contacto de manera segura y hermética con la ventana de vidrio. Use un cepillo aplicador de precisión ajustable para agregar una pequeña cantidad de cemento a lo largo del borde de la ventana para sellar la ventana de vidrio con la calavera.

Espere aproximadamente 10 minutos para que el cemento se seque por completo, luego suéltelo suavemente y retire el manipulador sobre la ventana. Termine recortando el cemento dental con el taladro dental con una broca de carburo FG4 si el exceso de cemento cubre la ventana. Aproximadamente cuatro horas después de la cirugía, se realizaron imágenes de dos fotones, donde a nivel superficial la vasculatura apareció negra, y a nivel profundo de aproximadamente 400 micrómetros, la expresión de la proteína EGFP se distribuyó difusamente por todo el cuerpo celular.

Una semana y cuatro meses después del TCE, se utilizó como referencia el patrón de vasculatura observado en el punto de tiempo del día cero para localizar la misma región de imagen. El patrón de vasculatura es similar al del día cero. Del mismo modo, se detectó la expresión de EGFP en todo el cuerpo celular.

La intensidad de fluorescencia en el día cero y a los cuatro meses fue similar tanto a nivel superficial como a nivel más profundo. Sin embargo, la intensidad de fluorescencia a la semana fue menor que la del día cero y a los cuatro meses, posiblemente debido a la represión traslacional reportada para otros modelos de TCE. Es crucial tener sumo cuidado al operar el paso de craneotomía para evitar dañar el tejido cerebral.

No introduzca la punta del taladro en el cerebro. Con esta técnica, los investigadores pueden visualizar diferentes proteínas de interés en la misma célula longitudinalmente a través de diferentes fases posteriores a un traumatismo craneoencefálico, proporcionando información sobre la localización, expresión y solubilidad de esa proteína en el cerebro de los mamíferos después de un traumatismo.

Explore More Videos

Imágenes Intravitales Expresión de Proteínas Fluorescentes Ratones Traumatismo Craneoencefálico de Cráneo Cerrado Ventana Craneal Microscopio de dos fotones Proteína de Interés Estímulos Exógenos Inyección Intracraneal Virus Adenoasociado (AAV) Proteína Verde Fluorescente Mejorada (EGFP) Promotor Neuronal Específico Dispositivo de Caída de Peso Poste de Cabeza Metálico Ventana Craneal de Vidrio Expresión y Localización Celular Visualización Longitudinal

Related Videos

Entrega de una lesión cerebral traumática al cerebro de un ratón

02:14

Entrega de una lesión cerebral traumática al cerebro de un ratón

Related Videos

413 Views

Microscopía de dos fotones para la obtención de imágenes in vivo de la microvasculatura cerebral de ratón

02:58

Microscopía de dos fotones para la obtención de imágenes in vivo de la microvasculatura cerebral de ratón

Related Videos

396 Views

Imágenes in vivo del transporte de líquido cefalorraquídeo en un cerebro de ratón mediante macroscopía de fluorescencia

02:41

Imágenes in vivo del transporte de líquido cefalorraquídeo en un cerebro de ratón mediante macroscopía de fluorescencia

Related Videos

325 Views

In vivo de dos fotones de imágenes de dependientes Experience-Los cambios moleculares en las neuronas corticales

10:07

In vivo de dos fotones de imágenes de dependientes Experience-Los cambios moleculares en las neuronas corticales

Related Videos

22K Views

El mantenimiento de un modelo de ratón ortotópico Glioblastoma Restricciones cerebral parenquimatosa físicas y Conveniente para intravital microscopía de dos fotones

09:52

El mantenimiento de un modelo de ratón ortotópico Glioblastoma Restricciones cerebral parenquimatosa físicas y Conveniente para intravital microscopía de dos fotones

Related Videos

20.1K Views

De dos fotones In vivo Imágenes de las espinas dendríticas en la corteza del ratón Usando un Diluido-cráneo Preparación

09:53

De dos fotones In vivo Imágenes de las espinas dendríticas en la corteza del ratón Usando un Diluido-cráneo Preparación

Related Videos

18.3K Views

Trauma cerebral aguda en ratones seguido de Longitudinal dos fotones de imágenes

11:14

Trauma cerebral aguda en ratones seguido de Longitudinal dos fotones de imágenes

Related Videos

12.6K Views

Imaging intravital de axonales Interacciones con macrófagos y microglia en un ratón Dorsal Crush Columna Lesión

08:43

Imaging intravital de axonales Interacciones con macrófagos y microglia en un ratón Dorsal Crush Columna Lesión

Related Videos

11.6K Views

Simultánea de dos fotones En Vivo Imágenes de entradas sinápticas y Objetivos postsinápticos en la corteza del ratón retroesplenial

16:45

Simultánea de dos fotones En Vivo Imágenes de entradas sinápticas y Objetivos postsinápticos en la corteza del ratón retroesplenial

Related Videos

11.7K Views

En Vivo Imaging of Cerebrospinal Fluid Transport through the Intact Mouse Skull using Fluorescence Macroscopy

06:22

En Vivo Imaging of Cerebrospinal Fluid Transport through the Intact Mouse Skull using Fluorescence Macroscopy

Related Videos

14.2K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code