Name: Síntesis de hidrogeles de matriz extracelular de cartílago descelularizado (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-07-21T14:10:00.000+00:00
Duration: 8 min 34 s
Description: Aprende a sintetizar hidrogeles de matriz extracelular de cartílago descelularizado con baja inmunogenicidad y alta biocompatibilidad. Este método preserva la estructura del cartílago natural para aplicaciones en ingeniería de tejidos.

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Este trabajo fue patrocinado por el Plan de Medicina y Tecnología Sanitaria de la Provincia de Zhejiang (2019KY050), el Plan de Ciencia y Tecnología de Medicina Tradicional China de la Provincia de Zhejiang (2019ZA026), el Plan Clave de Investigación y Desarrollo en la Provincia de Zhejiang (Subvención No.2020C03043), el Plan de Ciencia y Tecnología de Medicina Tradicional China de la Provincia de Zhejiang (2021ZQ021) y la Fundación Provincial de Ciencias Naturales de Zhejiang de China (LQ22H060007).

Este estudio fue aprobado por el Comité de Ética del Hospital Tongde de la provincia de Zhejiang.
1. Preparación del hidrogel DC-ECM
NOTA: En este estudio, el cartílago se obtuvo de las articulaciones de la rodilla de cerdos miniatura Bama de 12 meses de edad, evitando la recolección de tejido óseo.
<ol><li>Tome el cartílago recolectado y bloquéelo y córtelo en1-2 mm 3 pedazos con un bisturí.</li>
	<li>Coloque 20 g del cartílago picado en un tubo de centrífuga de 50 ml y agregue 20 ml de tampón hipotónico Tris-HCl (10 mM de Tris-HCl, pH 8.0) para sumergir el tejido por completo. Coloque el tubo de centrífuga en un congelador a -80 °C durante 3 h y luego en un horno a 37 °C durante 3 h. Repita el paso de congelación y calentamiento seis veces. En este paso, el tampón hipotónico Tris-HCl no necesita ser reemplazado.</li>
	<li>Agite el tubo de centrífuga durante 30 s con un mezclador de vórtice a una velocidad de 1.000 rpm. Coloque un tamiz de acero inoxidable (tamaño de poro: ~250 μm) en un tubo de centrífuga nuevo de 50 ml.</li>
	<li>Decantar lentamente el cartílago descelularizado en el tamiz de acero inoxidable, lavar el tejido tres veces con PBS estéril y recoger el cartílago.</li>
	<li>Añadir 10 ml de solución de tripsina (tripsina al 0,25% en PBS) y colocar el tubo en un agitador a 37 °C durante 24 h. Durante este período, reemplace la tripsina cada 4 h. Filtre la suspensión con el tamiz de acero inoxidable y conserve el tejido. La tripsina se puede tratar durante la noche durante uno de los procesos de digestión, y esto no afectará la digestión final.</li>
	<li>Lavar el tejido tripsinizado con tampón hipertónico (1,5 M de NaCl, 50 mM de Tris-HCl, pH 7,6).</li>
	<li>Añadir 10 mL de solución de nucleasa (50 U/mL de desoxirribonucleasa y 1 U/mL de ribonucleasa en 10 mM de Tris-HCl, pH 7,5), y colocar el tubo en un agitador a 37 °C durante 4 h.</li>
	<li>Retire la solución de nucleasa, lave el cartílago tres veces con PBS estéril y agregue la solución hipotónica de Tris-HCl. Coloque el tubo de centrífuga en un agitador y enjuague durante 20 h a temperatura ambiente (RT).</li>
	<li>Retire la solución hipotónica de Tris-HCl, lave el cartílago tres veces con PBS estéril y agregue una solución de Triton X-100 al 1% para sumergir el tejido durante 24 h.</li>
	<li>Retire la solución de Triton X-100 y enjuague bien el cartílago descelularizado con agua destilada durante 3 días, cambiando el agua destilada cada 12 h.</li>
	<li>Remojar el cartílago en una solución de ácido peracético (PAA al 0,1% en etanol al 4%) durante 4 h. Retire la solución de ácido peracético y lave el cartílago tres veces con agua destilada estéril.</li>
	<li>Coloque el tamiz de acero inoxidable (tamaño de poro: ~250 μm) en un tubo de centrífuga de 50 ml. Decantar lentamente el cartílago descelularizado en el tamiz de acero inoxidable y recoger el cartílago. Probar el grado de descelularización y la retención de la matriz del cartílago estimando el contenido de ADN, colágeno y glicosaminoglicanos (GAG).</li>
	<li>Coloque el cartílago descelularizado en un recipiente para moler, agregue nitrógeno líquido y muela el cartílago descelularizado para formar un polvo. Tomar 2 g del cartílago descelularizado en polvo, añadir 80 mL de ácido acético 0,5 M y 20 mg de pepsina, y digerir durante 24 h. Centrifugar a 400 x g durante 10 min; deseche el sedimento y recoja la solución sobrenadante (solución DC-ECM).</li>
	<li>Decantar 1 ml de solución DC-ECM por pocillo en placas de 6 pocillos. Coloque las placas de 6 pocillos en un liofilizador. Congele la solución DC-ECM. Una vez que la temperatura en el liofilizador descienda a -40 °C, encienda la bomba de vacío y mantenga el grado de vacío a 10 Pa durante 22 h.</li>
	<li>Saque la solución de DC-ECM liofilizada, colóquela en tubos de centrífuga y guárdela a -20 °C. El período mínimo de almacenamiento de la solución DC-ECM liofilizada supera el medio año.</li>
	<li>Añadir 1 ml de agua destilada estéril para disolver 20 mg de solución de DC-ECM liofilizada en el tubo de centrífuga. Agitar durante 1 min con un mezclador de vórtice a una velocidad de 1.000 rpm a RT. Añadir 1 mg de vitamina B2 (0,1% p/v) a la solución DC-ECM, incubar a 37 °C durante 60 min e irradiar con luz UV (370 nm, 3,5 mW/cm2) durante 3 min para formar un hidrogel (hidrogel DC-ECM).</li>
</ol>2. Detección de cartílago descelularizado
<ol><li>Detección del contenido de ADN del cartílago descelularizado NOTA: Extraiga el ADN con el kit de sangre y tejido DNEasy.<ol><li>En primer lugar, tome 20 mg de cartílago DC-ECM en un tubo de centrífuga. Añadir 180 μL de tampón GTL y 20 μL de proteinasa K por oscilación de vórtice, e incubar el cartílago a 56 °C durante 4 h hasta que se disuelva por completo.</li>
		<li>Agite el tubo de centrífuga durante 15 s con un mezclador de vórtice a una velocidad de 1.000 rpm a RT. A continuación, agregue 200 μL de Buffer GL y etanol anhidro, y mezcle bien mediante vibración de vórtice. Centrifugar las muestras durante 1 min a una velocidad de 6.000 x g a 4 °C.</li>
		<li>Añadir 500 μL de tampón GW1 a la columna de adsorción y centrifugar las muestras durante 1 min a una velocidad de 12.000 x g a 4 °C. Añadir 500 μL de tampón GW2 a la columna de adsorción y centrifugar a 20.000 x g a 4 °C durante 1 min. Por último, añadir 50 μL de agua esterilizada a la columna de adsorción, y centrifugar durante 1 min a una velocidad de 6.000 x g a 4 °C para recoger la solución de ADN. Determinar el contenido de ADN utilizando un espectrofotómetro.</li>
	</ol></li>
	<li>Detección del contenido de colágeno en el cartílago descelularizado<ol><li>Para detectar el contenido de colágeno en el cartílago descelularizado, utilice hidroxiprolina como marcador de aminoácidos de colágeno. Acidificar 5 mg de cartílago descelularizado con 5 mL de ácido clorhídrico 6 M a 100 °C durante 20 min, y luego neutralizarlo con 5 mL de una solución de hidróxido de sodio 6 M.</li>
		<li>Calcule el contenido de hidroxiprolina midiendo la absorbancia de la muestra a 570 nm con un espectrofotómetro. Obtener una regresión lineal concentración-absorción utilizando la muestra estándar de hidroxiprolina.</li>
	</ol></li>
	<li>Detección del contenido de GAG en el cartílago descelularizado NOTA: El contenido de GAG en el cartílago DC-ECM se detectó utilizando un kit de detección cuantitativa colorimétrica GAG tisular. Todos los reactivos a continuación están disponibles en el kit.<ol><li>Tomar 200 mg de polvo de cartílago DC-ECM y añadir 500 μL de reactivo A por oscilación de vórtice. Incubar la muestra a 4 °C durante 16 h y, a continuación, centrifugar a 14.000 x g durante 10 min.</li>
		<li>Tome 50 ml de solución de muestra y agregue 50 μl de solución con alto contenido de sal (reactivo B) y 50 μl de solución ácida (reactivo C) por oscilación de vórtice. Incubar la muestra durante 10 min.</li>
		<li>Añadir 750 μL de solución de colorante (reactivo D) mediante oscilación de vórtice e incubar la muestra durante 30 min en condiciones de oscuridad. Centrifugar la muestra a 14.000 x g durante 10 minutos y luego desechar el sobrenadante.</li>
		<li>Agregue 1 μL de solución limpiadora (reactivo E) y mezcle bien. Centrifugar la muestra a 14.000 x g durante 10 min y desechar el sobrenadante.</li>
		<li>Agregue 1 μL de solución de disociación (reactivo F) a la muestra y mezcle bien. Incubar la muestra durante 30 minutos en condiciones de oscuridad. Por último, determine el contenido de GAG utilizando un espectrofotómetro a 600 nm.</li>
	</ol></li>
	<li>Análisis de microscopio electrónico de barrido (SEM) y microscopio electrónico de transmisión (TEM) del cartílago descelularizado<ol><li>Compare el cartílago descelularizado y el tejido cartilaginoso normal. Colocar la muestra en una solución de glutaraldehído al 2,5%, incubar a 4 °C durante la noche y luego lavar con PBS tres veces.</li>
		<li>Fijar la muestra en OsO4 al 1% durante 1 h y luego lavar tres veces con PBS.</li>
		<li>Deshidratar la muestra por inmersión secuencial en etanol al 50%, 70%, 90% y 100%, así como acetona al 100% durante 15 minutos cada una. Colocar la muestra en una solución mixta de hexametildisilazano y etanol (1:1) durante 15 min, seguida de inmersión en hexametildisilazano puro durante 15 min.</li>
		<li>Coloque la muestra en un secador HCP-2 y luego séquela con nitrógeno líquido. A continuación, cubra el espécimen completamente seco con una fina capa de oro-paladio mediante un recubrimiento de pulverización catódica y obtenga una imagen con SEM. El recubrimiento por pulverización catódica se realizó a una potencia de 120 W durante 5 min. El experimento se llevó a cabo bajo las siguientes condiciones: una tensión de trabajo de 15 kV y un grado de vacío inferior a 5 x 10−5 Pa.</li>
		<li>Para el análisis TEM, colocar la muestra en una mezcla de acetona anhidra y resina (1:1) durante 1 h, seguida de una mezcla de acetona anhidra y resina (1:3) durante 3 h. A continuación, coloca la muestra en resina durante la noche.<ol><li>Colocar la muestra en cápsulas de relleno medio y calentar a 70 °C durante 9 h.</li>
			<li>Después de la incrustación, corte la muestra en rodajas finas de 70 nm con un micrótomo ultrafino y colóquela en una malla de cobre.</li>
			<li>Pipetear 20 μL de solución de tinción de acetato de uranilo sobre la malla de cobre y teñir durante 15 min a RT. Retire la solución de tinción lavando suavemente la malla dos veces con agua destilada.</li>
			<li>A continuación, pipetear 20 μL de solución de tinción de citrato de plomo sobre la malla de cobre y teñir durante 15 min a RT. Lavar la malla tres veces con agua destilada.</li>
			<li>Coloque la malla de cobre en una placa de Petri limpia forrada con papel de filtro. Después del secado al aire, fotografíe las secciones con TEM. La sonda se aplicó con una fuerza descendente de 500 nN, se barrió a una velocidad de 1 Hz y tuvo una constante elástica (valor k) de 40 Nm-1. Se midió que el radio de la punta de la sonda era de 8 nm.</li>
		</ol></li>
	</ol></li>
</ol>

<ol><li>Vega, S. L., Kwon, M. Y., Burdick, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recent+advances+in+hydrogels+for+cartilage+tissue+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22European+Cells+%26+Materials%22%5BJournal%5D)">Recent advances in hydrogels for cartilage tissue engineering.</a> European Cells & Materials. 33, 59-75 (2017).</li>
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<li>Chen, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Desktop-stereolithography+3D+printing+of+a+radially+oriented+extracellular+matrix%2Fmesenchymal+stem+cell+exosome+bioink+for+osteochondral+defect+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Theranostics%22%5BJournal%5D)">Desktop-stereolithography 3D printing of a radially oriented extracellular matrix/mesenchymal stem cell exosome bioink for osteochondral defect regeneration.</a> Theranostics. 9 (9), 2439-2459 (2019).</li>
<li>Saldin, L. T., Cramer, M. C., Velankar, S. S., White, L. J., Badylak, S. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extracellular+matrix+hydrogels+from+decellularized+tissues%3A+Structure+and+function%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Biomaterialia%22%5BJournal%5D)">Extracellular matrix hydrogels from decellularized tissues: Structure and function.</a> Acta Biomaterialia. 49, 1-15 (2017).</li>
<li>Yuan, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stem+cell+delivery+in+tissue-specific+hydrogel+enabled+meniscal+repair+in+an+orthotopic+rat+model%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Stem cell delivery in tissue-specific hydrogel enabled meniscal repair in an orthotopic rat model.</a> Biomaterials. 132, 59-71 (2017).</li>
<li>Zheng, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intensified+stiffness+and+photodynamic+provocation+in+a+collagen-based+composite+hydrogel+drive+chondrogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Advanced+Science%22%5BJournal%5D)">Intensified stiffness and photodynamic provocation in a collagen-based composite hydrogel drive chondrogenesis.</a> Advanced Science. 6 (16), 1900099(2019).</li>
<li>Young, J. L., Holle, A. W., Spatz, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((P.Nanoscale+and+mechanical+properties+of+the+physiological+cell-ECM+microenvironment%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+Cell+Research%22%5BJournal%5D)">P.Nanoscale and mechanical properties of the physiological cell-ECM microenvironment.</a> Experimental Cell Research. 343 (1), 3-6 (2016).</li>
<li>Abdolghafoorian, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+heart+valve+decellularization+on+xenograft+rejection%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+and+Clinical+Transplantation%22%5BJournal%5D)">Effect of heart valve decellularization on xenograft rejection.</a> Experimental and Clinical Transplantation. 15 (3), 329-336 (2017).</li>
</ol>

Los autores no tienen nada que revelar.

Este protocolo proporciona un enfoque sistemático para la preparación de hidrogeles de matriz extracelular de cartílago descelularizado que imitan de cerca la MEC nativa del tejido cartilaginoso. El protocolo implica una combinación de disrupción física, química y enzimática para eliminar el material celular mientras se preserva la estructura y composición de la MEC. Los pasos críticos del protocolo incluyen ajustar el tiempo y los métodos de descelularización y garantizar una descelularización completa.
<p class="jo...

La ingeniería de tejidos cartilaginosos es un campo en rápido desarrollo que busca regenerar el tejido cartilaginoso dañado o enfermo1. Un desafío clave en este campo es el desarrollo de andamios biomiméticos que puedan apoyar el crecimiento y la diferenciación de los condrocitos, las células responsables de la producción de cartílago2. La MEC del tejido cartilaginoso desempeña un papel fundamental en la regulación del comportamiento de los condrocitos. DC-ECM es un andamio eficaz para aplicaciones de ingeniería de tejidos3.
Se han desarrollado varias técnicas para producir DC-ECM a partir de tejido cartilaginoso, incluidos métodos químicos, enzimáticos y físicos. Sin embargo, estos métodos a menudo resultan en la generación de hidrogeles ECM que no son lo suficientemente biomiméticos, lo que limita su potencial para su uso en aplicaciones de ingeniería de tejidos 4,5. Por lo tanto, existe la necesidad de un método más eficaz para producir hidrogeles DC-ECM.
El desarrollo de esta técnica es importante porque puede avanzar en el campo de la ingeniería de tejidos al proporcionar un nuevo enfoque para crear andamios biomiméticos que puedan apoyar la regeneración y reparación de tejidos. Además, esta técnica podría adaptarse fácilmente para producir hidrogeles de MEC a partir de otros tejidos, ampliando así sus posibles aplicaciones.
En la bibliografía más amplia, ha habido un creciente interés en el uso de DC-ECM como andamio para aplicaciones de ingeniería de tejidos6. Numerosos estudios han demostrado la eficacia de los hidrogeles DC-ECM para promover el crecimiento celular y la diferenciación en diversos tejidos, incluido el cartílago 7,8. Por lo tanto, el desarrollo de un protocolo para producir hidrogeles DC-ECM que imitan de cerca la ECM natural del tejido cartilaginoso es una contribución significativa al campo.
El protocolo presentado en este artículo aborda esta necesidad al proporcionar un método novedoso para producir hidrogeles DC-ECM que imitan de cerca la ECM natural del tejido cartilaginoso. El protocolo consiste en descelularizar el tejido cartilaginoso, aislar la MEC resultante y crear un hidrogel mediante la reticulación de la MEC con un polímero biocompatible. El hidrogel resultante ha mostrado resultados prometedores en el apoyo al crecimiento y la diferenciación de los condrocitos.

<table><tbody><tr><td>1 M Tris-HCl, pH7.6</td><td>Beyotime</td><td>ST776-100 mL</td><td></td></tr><tr><td>1 M Tris-HCl, pH8.0</td><td>Beyotime</td><td>ST780-500 mL-80</td><td></td></tr> <tr><td>&deg; C Congelador</td><td>Eppendorf</td><td>F440340034</td><td></td></tr><tr><td>Desoxirribonucleasa</td><td>Aladdin</td><td>D128600-80KU</td><td></td></tr><tr><td>DNEasy Blood & Kit de pañuelos</td><td>Qiagen</td><td>No. 69506</td><td></td></tr><tr><td>GAG kit de detección cuantitativa colorimétrica Shanghai</td><td>Haling</td><td>HL19236.2</td><td></td></tr><tr><td>HCP-2 secador&nbsp;</td><td>Hitachi</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Nanodrop8000</td><td>Thermo Fisher</td><td>N/A</td><td>Espectrofotómetro</td></tr><tr><td>PBS (10x)</td><td>Gibco</td><td>70011044</td><td></td></tr><tr><td>Ribonucleasa</td><td>Aladdin</td><td>R341325-100 mg</td><td></td></tr><tr><td>Sigma500</td><td>ZIESS</td><td>N/A</td><td>Microscopio electrónico de barrido</td></tr><tr><td>Spectra S</td><td>Thermo Fisher</td><td>N/A</td><td>Microscopio electrónico de transmisión</td></tr><tr><td>Tamiz de acero inoxidable</td><td>SHXB-Z-1</td><td>Shanghai Xinbu</td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Beyotime</td><td>P0096-500 mL</td><td></td></tr><tr><td>Trypsin&nbsp;</td><td>Gibco</td><td>15050065</td><td></td></tr><tr><td>Lámpara ultravioleta</td><td>Omnicure 2000</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Vitamina B2</td><td>Gibco</td><td>R4500-5G</td><td></td></tr><tr><td>Mezclador de vórtice</td><td>Shanghai Qiasen</td><td>78HW-1&nbsp;</td><td></td></tr></tbody></table>

síntesis de hidrogeles de matriz extracelular de cartílago descelularizado

Synthesis of Decellularized Cartilage Extracellular Matrix Hydrogels

Los hidrogeles de matriz extracelular de cartílago descelularizado (DC-ECM) son biomateriales prometedores para la ingeniería de tejidos y la medicina regenerativa debido a su biocompatibilidad y capacidad para imitar las propiedades naturales de los tejidos. Este protocolo tiene como objetivo producir hidrogeles DC-ECM que imiten de cerca la ECM nativa del tejido cartilaginoso. El protocolo implica una combinación de disrupción física y química y digestión enzimática para eliminar el material celular mientras se preserva la estructura y composición de la MEC. El DC-ECM se reticula utilizando un agente químico para formar un hidrogel estable y biológicamente activo. El hidrogel DC-ECM tiene una excelente actividad biológica, estructura espacial y función de inducción biológica, así como baja inmunogenicidad. Estas características son beneficiosas para promover la adhesión, proliferación, diferenciación y migración celular y para crear un microambiente superior para el crecimiento celular. Este protocolo proporciona un recurso valioso para investigadores y clínicos en el campo de la ingeniería de tejidos. Los hidrogeles biomiméticos pueden mejorar potencialmente el desarrollo de estrategias efectivas de ingeniería de tejidos para la reparación y regeneración del cartílago.

Para preparar un mejor hidrogel cartilaginoso DC-ECM, estudiamos y revisamos la literatura previa y comparamos los diversos protocolos de descelularización en términos de relación de descelularización, inmunogenicidad y funcionalidad mecánica9.
Sobre esta base, preparamos el hidrogel de cartílago DC-ECM y exploramos el efecto de una biotinta de exosoma de matriz extractiva/células madre mesenquimales orientada radialmente en el tratamiento de defectos osteocondrales. Lo...

En este trabajo se presenta un nuevo método para la síntesis de hidrogeles de matriz extracelular de cartílago descelularizado (DC-ECM). Los hidrogeles DC-ECM tienen una excelente biocompatibilidad y proporcionan un microambiente superior para el crecimiento celular. Por lo tanto, pueden ser andamios celulares ideales y sistemas de administración biológica.

Síntesis de hidrogeles de matriz extracelular de cartílago descelularizado

Decellularized cartilage extracellular matrix (DC-ECM) hydrogels are promising biomaterials for tissue engineering and regenerative medicine due to their ...

Nuestro protocolo es importante, ya que permite la creación de enfermedades en hidrogeles que se asemejan mucho a la naturaleza del tejido cartilaginoso. La principal ventaja de esta técnica es la capacidad de producir enfermedad en hidrogeles con evidente actividad biológica en estructura espacial, baja inmunogenicidad y función biológica industrial. Para empezar, corta el cartílago recogido con un bisturí en trozos de uno a dos milímetros cúbicos.En un tubo de centrífuga de 50 milímetros, sumerja 20 gramos del cartílago picado en 20 mililitros de tampón hipotónico de triclorhidrato. Coloque el tubo a 80 grados centígrados durante tres horas y luego en el horno a 37 grados centígrados durante tres horas. Agite el tubo de la centrífuga durante 30 segundos a 1000 RPM.A continuación, filtre el cartílago descelularizado con un tamiz de plástico colocado en un tubo de centrífuga de 50 mililitros. Lave el cartílago tres veces con PBS estéril antes de recogerlo. Añadir 10 mililitros de solución de tripsina al cartílago recogido e incubarlo en un agitador a 37 grados centígrados durante 24 horas, sustituyendo la tripsina cada cuatro horas.Después de filtrar la suspensión, lavar el cartílago tripsinizado con tampón hipertónico. Una vez conservado el cartílago, añadir 10 mililitros de solución de nucleasa y colocarlo en una coctelera a 37 grados centígrados durante cuatro horas. Después de lavar con PBS estéril, agregue una solución hipertónica de clorhidrato de Tris al cartílago y colóquela en el agitador como se demuestra.Una vez lavado con PBS estéril, sumerja el tejido en una solución de Triton X-100 al 1% durante 24 horas. Después de retirar el Triton X-100, enjuague el cartílago descelularizado con agua destilada durante tres días, cambiando el agua cada 12 horas. Después de tres días, agregue la solución de ácido peracético al cartílago y déjelo en remojo durante cuatro horas.Una vez lavado con PBS, recoger el cartílago utilizando un colador de plástico como se ha demostrado anteriormente. Con nitrógeno líquido, prepare el cartílago descelularizado en polvo. Agregue 80 mililitros de ácido acético 0.5 molar y 20 miligramos de pepsina a dos gramos de cartílago en polvo, y digiera la mezcla durante 24 horas a 37 grados centígrados.Después de la digestión, centrifugue la suspensión a 400 G durante 10 minutos y recoja el sobrenadante, que ahora se llama solución DC-ECM Para almacenar la solución DC-ECM, agregue un mililitro de la solución a cada pocillo de una placa de seis pocillos y colóquela en un liofilizador. Una vez que la solución esté liofilizada, transfiérala a un tubo de centrífuga. Para formar un hidrogel, disuelva 20 miligramos de solución DC-ECM liofilizada en un mililitro de agua destilada estéril.Una vez en vórtice, agregue un miligramo de vitamina B2 a la solución DC-ECM. Después de la incubación, irradiarlo con luz ultravioleta durante tres minutos. Agregue tampón GTL y proteinasa K a 20 miligramos de polvo de cartílago DC-ECM y mezcle bien usando oscilación de vórtice.Para la disolución completa del cartílago, incubar la mezcla a 56 grados centígrados durante cuatro horas. Una vez en vórtice, agregue 200 microlitros de tampón GTL seguido de etanol anhidro. Después del vórtice, centrifugar la muestra a 6000 G durante un minuto a cuatro grados centígrados.A continuación, recoja y cuantifique el ADN como se describe en el manuscrito. Para analizar el colágeno, acidifique cinco miligramos de polvo DC-ECM en ácido clorhídrico a 100 grados centígrados durante 20 minutos. Luego neutralícelo con cinco mililitros de solución de hidróxido de sodio de seis molares.Calcule el contenido de hidroxiprolina de la muestra neutralizada utilizando la absorbancia a 570 nanómetros en comparación con el estándar de hidroxiprolina. Agregue 500 microlitros de reactivo A a 200 miligramos de polvo DC-ECM después de mezclar. Incubar la muestra a cuatro grados centígrados durante 16 horas.Una vez centrifugada, recoja 50 microlitros de solución de muestra y agregue 50 microlitros de reactivo B, seguido del reactivo C. Después de incubar la muestra durante 10 minutos, agregue 750 microlitros de reactivo D e incube durante 30 minutos en la oscuridad. Después de la centrifugación, agregue un microlitro del reactivo E al gránulo y mezcle bien antes de centrifugar. A continuación, disocie la muestra antes de la medición del contenido de GAG.En el cartílago DC-ECM preparado, el contenido de ADN se eliminó significativamente. Sin embargo, el contenido de colágeno y GAG se mantuvo en comparación con el cartílago nativo. El análisis SEM y TEM demostró la ultraestructura del DC-ECM preparado.El hidrogel preparado en el tubo invertido no fluyó hacia el fondo, lo que demuestra la gelificación. Además, en comparación con la solución DC-ECM sola, la adición de vitamina B2 redujo el tiempo de gelificación debido a la reticulación inducida durante la formación del hidrogel DC-ECM. La viscosidad del hidrogel DC-ECM fue mayor que la viscosidad de la solución y el aumento de las velocidades de cizallamiento disminuyó la viscosidad de la solución.Además, el alto módulo de almacenamiento de la solución DC-ECM y el hidrogel indicaba que ambos tenían propiedades de gel en lugar de líquidas. El análisis SEM demostró que el tamaño de los poros de la solución DC-ECM disminuyó significativamente en la forma de hidrogel después de la reticulación y la liofilización. El protocolo implica una combinación de disrupción física y química y digestión enzimática para eliminar el material celular mientras se preserva la estructura y la conversación de la MEC.

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Research

Investigación

JoVE Journal

Bioengineering

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