Name: El establecimiento de un modelo de ortodoncia maxilar murina (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-10-27T12:40:00.000+00:00
Duration: 4 min 11 s
Description: Aprende a establecer un modelo de ortodoncia maxilar murino con este protocolo estandarizado. Incluye demostraciones visuales detalladas para mejorar la reproducibilidad y facilitar comparaciones entre estudios experimentales.

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Este trabajo fue apoyado por la subvención de la Fundación Nacional de Ciencias Naturales de China 82100982 a F.L.

Los procedimientos con animales en este estudio fueron revisados y aprobados por el Comité de Ética de la Escuela de Estomatología de China Occidental de la Universidad de Sichuan (WCHSIRB-D-2017-041). En este estudio se utilizaron ratones adultos C57BL/6 (véase la Tabla de materiales). Este protocolo añade carga mecánica al primer molar maxilar derecho (M1) para el movimiento mesial, donde se induce un proceso de remodelación ósea altamente coordinado mediante el acoplamiento de la resorción ósea y la formación ósea (Figura 1).
1. Preparación preoperatoria
<ol><li>Artículos quirúrgicos<ol><li>Prepare los siguientes artículos quirúrgicos para la operación: plataforma quirúrgica (Figura 2A), sujetador (Figura 2B), instrumentos quirúrgicos (Figura 2C y Figura Suplementaria S1), suministros de ortodoncia (Figura 2C) y suministros de restauración dental (Figura 2D). NOTA: El resorte helicoidal personalizado está hecho a medida y proporciona una fuerza de 10cN cuando se estira a 10 mm.</li>
	</ol></li>
	<li>Esterilización<ol><li>Esterilizar los instrumentos quirúrgicos en autoclave y todos los artículos quirúrgicos con irradiación ultravioleta durante al menos 30 min.</li>
	</ol></li>
	<li>Anestesia<ol><li>Anestesiar al ratón mediante la administración de ketamina (100 mg/kg) y diazepam (5 mg/kg) mediante inyección intraperitoneal.</li>
		<li>Aplique ungüento veterinario en los ojos del murino con un bastoncillo de algodón para evitar la sequedad ocular.</li>
		<li>Proceda con la cirugía solo cuando el ratón no responda cuando se le pellizquen los dedos de los pies con fórceps.</li>
	</ol></li>
</ol>2. Proceso quirúrgico
<ol><li>Extienda y pegue con cinta adhesiva las extremidades del ratón anestesiado en posición supina a la plataforma quirúrgica con cinta adhesiva.</li>
	<li>Coloque una aguja de 27 G a cada lado por encima de la cabeza y otra aguja de 27 G a cada lado por debajo de la axila.</li>
	<li>Enrolle una banda elástica alrededor de las dos agujas anteriores y los incisivos superiores y otra alrededor de otras dos agujas y los incisivos inferiores. Cambie las posiciones de la aguja para controlar el grado de apertura y la orientación de la boca (Figura 3A). NOTA: Para la operación de movimiento dental de ortodoncia, mantenga la boca abierta al máximo antes de que el buccinador se apriete por completo. La lengua debe ser tirada hacia el lado no quirúrgico para exponer el campo quirúrgico y prevenir la isquemia.</li>
	<li>Doble el extremo de 1,5 mm de un alambre de acero inoxidable 304 de 3 cm y empuje el extremo doblado a través del espacio interproximal entre el M1 y el segundo molar maxilar (M2) desde el lado bucal con pinzas oftálmicas curvas (Figura 3B). Cuando el extremo palatino del alambre de la ligadura se vea desde el lado palatino, sáquelo hasta aproximadamente la mitad de su longitud y páselo a través de un extremo del resorte helicoidal personalizado.</li>
	<li>Haga un nudo cuadrado con los dos extremos del alambre de ligadura en la dirección mesial del maxilar M1 hasta que el resorte esté firmemente fijado al diente (Figura 3C). Resta el exceso de alambre.</li>
	<li>Del mismo modo, perfore un segundo alambre de acero inoxidable 304 de 3 cm a través del otro extremo del resorte helicoidal.</li>
	<li>Limpie y seque las superficies de los incisivos con bolas de algodón. Aplique adhesivos en todas esas superficies con barras de algodón y cúrelas con luz.</li>
	<li>Empuje el segundo alambre de acero inoxidable a través del espacio interproximal entre los incisivos maxilares y haga un nudo corredizo en la dirección labial (Figura 3D). Reste el exceso de alambre y haga que el resto del alambre quede cerca de la superficie del diente.</li>
	<li>Inyecte resina fotopolimerizable para cubrir el nudo y los incisivos; fotocure la resina (Figura 3E).</li>
</ol>3. Manejo postoperatorio
<ol><li>Después de la cirugía, inyectar a los ratones 0,05 mg/kg de buprenorfina por vía intraperitoneal para la analgesia postoperatoria.</li>
	<li>Coloque el ratón anestesiado sobre una manta eléctrica termostática a 37 °C. Cuando el murino recupere la conciencia con la deambulación, devuélvalo a una jaula de alojamiento separada.</li>
	<li>Debido al funcionamiento limitado de los incisivos después de la cirugía, reemplace el forraje duro regular con solo una dieta blanda.</li>
	<li>Revise los aparatos de ortodoncia todos los días. Si se observa alguna condición durante la inspección que afecte la conducción de la fuerza de ortodoncia, como la deformación del resorte, el aflojamiento del resorte y la caída del dispositivo, el ratón debe excluirse del experimento.</li>
	<li>Con el fin de mantener la comparabilidad de los experimentos, evalúe el peso de los ratones diariamente después de la cirugía. Cualquier ratón que muestre una pérdida de peso superior al 30% de su peso preoperatorio debe ser excluido del experimento.</li>
</ol>

Una guía del modelo de ortodoncia maxilar murino para el análisis de remodelación ósea

<ol><li>Kenkre, J. S., Bassett, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+bone+remodeling+cycle%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+Clinical+Biochemistry%22%5BJournal%5D)">The bone remodeling cycle.</a> Annals of Clinical Biochemistry. 55 (3), 308-327 (2018).</li>
<li>Feng, X., McDonald, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Disorders+of+bone+remodeling%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Pathology%22%5BJournal%5D)">Disorders of bone remodeling.</a> Annual Review of Pathology. 6 (1), 121-145 (2011).</li>
<li>Alliston, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biological+regulation+of+bone+quality%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Osteoporosis+Reports%22%5BJournal%5D)">Biological regulation of bone quality.</a> Current Osteoporosis Reports. 12 (3), 366-375 (2014).</li>
<li>Duncan, R. L., Turner, C. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanotransduction+and+the+functional+response+of+bone+to+mechanical+strain%5BTitle%5D)+AND+%22Calcified+Tissue+International%22%5BJournal%5D)">Mechanotransduction and the functional response of bone to mechanical strain.</a> Calcified Tissue International. 57 (5), 344-358 (1995).</li>
<li>García-Aznar, J. M., Nasello, G., Hervas-Raluy, S., Pérez, M. Á, Gómez-Benito, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multiscale+modeling+of+bone+tissue+mechanobiology%5BTitle%5D)+AND+%22Bone%22%5BJournal%5D)">Multiscale modeling of bone tissue mechanobiology.</a> Bone. 151 (10), 1-12 (2021).</li>
<li>Rolvien, T., Amling, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Disuse+osteoporosis%3A+clinical+and+mechanistic+insights%5BTitle%5D)+AND+%22Calcified+Tissue+International%22%5BJournal%5D)">Disuse osteoporosis: clinical and mechanistic insights.</a> Calcified Tissue International. 110 (5), 592-604 (2022).</li>
<li>Vico, L., Hargens, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Skeletal+changes+during+and+after+spaceflight%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Rheumatology%22%5BJournal%5D)">Skeletal changes during and after spaceflight.</a> Nature Reviews Rheumatology. 14 (4), 229-245 (2018).</li>
<li>Iwaniec, U. T., Turner, R. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Influence+of+body+weight+on+bone+mass%2C+architecture+and+turnover%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Endocrinology%22%5BJournal%5D)">Influence of body weight on bone mass, architecture and turnover.</a> Journal of Endocrinology. 230 (3), R115-R130 (2016).</li>
<li>Governale, L. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Craniosynostosis%5BTitle%5D)+AND+%22Pediatric+Neurology%22%5BJournal%5D)">Craniosynostosis.</a> Pediatric Neurology. 53 (5), 394-401 (2015).</li>
<li>Sahoo, N. K., Issar, Y., Thakral, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mandibular+Distraction+osteogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Craniofacial+Surgery%22%5BJournal%5D)">Mandibular Distraction osteogenesis.</a> Journal of Craniofacial Surgery. 30 (8), e743-e746 (2019).</li>
<li>Roberts-Harry, D., Sandy, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Orthodontics.+Part+1%3A+Who+needs+orthodontics%5BTitle%5D)+AND+%22British+Dental+Journal%22%5BJournal%5D)">Orthodontics. Part 1: Who needs orthodontics.</a> British Dental Journal. 195 (8), 433-437 (2003).</li>
<li>Li, Y., Jacox, L. A., Little, S. H., Ko, C. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Orthodontic+tooth+movement%3A+The+biology+and+clinical+implications%5BTitle%5D)+AND+%22Kaohsiung+Journal+of+Medical+Sciences%22%5BJournal%5D)">Orthodontic tooth movement: The biology and clinical implications.</a> Kaohsiung Journal of Medical Sciences. 34 (4), 207-214 (2018).</li>
<li>Will, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Orthodontic+tooth+movement%3A+a+historic+prospective%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+of+Oral+Biology%22%5BJournal%5D)">Orthodontic tooth movement: a historic prospective.</a> Frontiers of Oral Biology. 18, 46-55 (2016).</li>
<li>Xu, H., Lee, A., Sun, L., Naveh, G. R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((3D+Imaging+of+PDL+collagen+fibers+during+orthodontic+tooth+movement+in+mandibular+murine+model%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">3D Imaging of PDL collagen fibers during orthodontic tooth movement in mandibular murine model.</a> Journal of Visualized Experiments. (170), e62149(2021).</li>
<li>Taddei, S. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Experimental+model+of+tooth+movement+in+mice%3A+a+standardized+protocol+for+studying+bone+remodeling+under+compression+and+tensile+strains%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biomechanics%22%5BJournal%5D)">Experimental model of tooth movement in mice: a standardized protocol for studying bone remodeling under compression and tensile strains.</a> Journal of Biomechanics. 45 (16), 2729-2735 (2012).</li>
<li>Deguchi, T., Takeshita, N., Balam, T. A., Fujiyoshi, Y., Takano-Yamamoto, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Galanin-immunoreactive+nerve+fibers+in+the+periodontal+ligament+during+experimental+tooth+movement%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Dental+Research%22%5BJournal%5D)">Galanin-immunoreactive nerve fibers in the periodontal ligament during experimental tooth movement.</a> Journal of Dental Research. 82 (9), 677-681 (2003).</li>
<li>Gudhimella, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+rodent+model+using+skeletal+anchorage+and+low+forces+for+orthodontic+tooth+movement%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Orthodontics+and+Dentofacial+Orthopedics%22%5BJournal%5D)">A rodent model using skeletal anchorage and low forces for orthodontic tooth movement.</a> American Journal of Orthodontics and Dentofacial Orthopedics. 155 (2), 254-263 (2019).</li>
<li>Lira Dos Santos, E. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Orthodontic+tooth+movement+alters+cementocyte+ultrastructure+and+cellular+cementum+proteome+signature%5BTitle%5D)+AND+%22Bone%22%5BJournal%5D)">Orthodontic tooth movement alters cementocyte ultrastructure and cellular cementum proteome signature.</a> Bone. 153 (12), 116-139 (2021).</li>
<li>Danz, J. C., Bibby, B. M., Katsaros, C., Stavropoulos, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+facial+tooth+movement+on+the+periodontium+in+rats%3A+a+comparison+between+conventional+and+low+force%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Clinical+Periodontology%22%5BJournal%5D)">Effects of facial tooth movement on the periodontium in rats: a comparison between conventional and low force.</a> Journal of Clinical Periodontology. 43 (3), 229-237 (2016).</li>
<li>Kohno, T., Matsumoto, Y., Kanno, Z., Warita, H., Soma, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Experimental+tooth+movement+under+light+orthodontic+forces%3A+rates+of+tooth+movement+and+changes+of+the+periodontium%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Orthodontics%22%5BJournal%5D)">Experimental tooth movement under light orthodontic forces: rates of tooth movement and changes of the periodontium.</a> Journal of Orthodontics. 29 (2), 129-135 (2002).</li>
<li>Gad, A. M., Soliman, S. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+systemic+Omega-3+PUFAs+effect+on+orthodontic+tooth+movement+in+a+rabbit+model%3A+RCT%5BTitle%5D)+AND+%22Angle+Orthodontist%22%5BJournal%5D)">Evaluation of systemic Omega-3 PUFAs effect on orthodontic tooth movement in a rabbit model: RCT.</a> Angle Orthodontist. 93 (4), 476-481 (2023).</li>
<li>Huang, C. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+tooth+movement+and+biological+response+resulting+from+different+force+magnitudes+combined+with+osteoperforation+in+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Applied+Oral+Science%22%5BJournal%5D)">Comparison of tooth movement and biological response resulting from different force magnitudes combined with osteoperforation in rabbits.</a> Journal of Applied Oral Science. 29 (2), 20200734(2021).</li>
<li>Alhasyimi, A. A., Pudyani, P. P., Asmara, W., Ana, I. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enhancement+of+post-orthodontic+tooth+stability+by+carbonated+hydroxyapatite-incorporated+advanced+platelet-rich+fibrin+in+rabbits%5BTitle%5D)+AND+%22Orthodontics+%26+Craniofacial+Research%22%5BJournal%5D)">Enhancement of post-orthodontic tooth stability by carbonated hydroxyapatite-incorporated advanced platelet-rich fibrin in rabbits.</a> Orthodontics & Craniofacial Research. 21 (2), 112-118 (2018).</li>
<li>Elkattan, A. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+Different+Parameters+of+Diode+Laser+on+Acceleration+of+Orthodontic+Tooth+Movement+and+Its+Effect+on+Relapse%3A+An+Experimental+Animal+Study%5BTitle%5D)+AND+%22Open+Access+Macedonian+Journal+of+Medical+Sciences%22%5BJournal%5D)">Effects of Different Parameters of Diode Laser on Acceleration of Orthodontic Tooth Movement and Its Effect on Relapse: An Experimental Animal Study.</a> Open Access Macedonian Journal of Medical Sciences. 7 (3), 412-420 (2019).</li>
<li>von Böhl, M., Maltha, J. C., Von Den Hoff, J. W., Kuijpers-Jagtman, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Focal+hyalinization+during+experimental+tooth+movement+in+beagle+dogs%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Orthodontics+and+Dentofacial+Orthopedics%22%5BJournal%5D)">Focal hyalinization during experimental tooth movement in beagle dogs.</a> American Journal of Orthodontics and Dentofacial Orthopedics. 125 (5), 615-623 (2004).</li>
<li>Machibya, F. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+bone+regeneration+materials+and+tooth+movement+timing+on+canine+experimental+orthodontic+treatment%5BTitle%5D)+AND+%22Angle+Orthodontist%22%5BJournal%5D)">Effects of bone regeneration materials and tooth movement timing on canine experimental orthodontic treatment.</a> Angle Orthodontist. 88 (2), 171-178 (2018).</li>
<li>Deguchi, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Histomorphometric+evaluation+of+alveolar+bone+turnover+between+the+maxilla+and+the+mandible+during+experimental+tooth+movement+in+dogs%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Orthodontics+and+Dentofacial+Orthopedics%22%5BJournal%5D)">Histomorphometric evaluation of alveolar bone turnover between the maxilla and the mandible during experimental tooth movement in dogs.</a> American Journal of Orthodontics and Dentofacial Orthopedics. 133 (6), 889-897 (2008).</li>
<li>Tanimoto, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Experimental+tooth+movement+into+new+bone+area+regenerated+by+use+of+bone+marrow-derived+mesenchymal+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cleft+Palate-craniofacial+Journal%22%5BJournal%5D)">Experimental tooth movement into new bone area regenerated by use of bone marrow-derived mesenchymal stem cells.</a> Cleft Palate-craniofacial Journal. 52 (4), 386-394 (2015).</li>
<li>Oltramari, P. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Orthodontic+movement+in+bone+defects+filled+with+xenogenic+graft%3A+an+experimental+study+in+minipigs%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Orthodontics+and+Dentofacial+Orthopedics%22%5BJournal%5D)">Orthodontic movement in bone defects filled with xenogenic graft: an experimental study in minipigs.</a> American Journal of Orthodontics and Dentofacial Orthopedics. 131 (3), e10-e17 (2007).</li>
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<li>Holmes, H. D., Tennant, M., Goonewardene, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Augmentation+of+faciolingual+gingival+dimensions+with+free+connective+tissue+grafts+before+labial+orthodontic+tooth+movement%3A+an+experimental+study+with+a+canine+model%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Orthodontics+and+Dentofacial+Orthopedics%22%5BJournal%5D)">Augmentation of faciolingual gingival dimensions with free connective tissue grafts before labial orthodontic tooth movement: an experimental study with a canine model.</a> American Journal of Orthodontics and Dentofacial Orthopedics. 127 (5), 562-572 (2005).</li>
<li>Wennström, J. L., Lindhe, J., Sinclair, F., Thilander, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Some+periodontal+tissue+reactions+to+orthodontic+tooth+movement+in+monkeys%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Clinical+Periodontology%22%5BJournal%5D)">Some periodontal tissue reactions to orthodontic tooth movement in monkeys.</a> Journal of Clinical Periodontology. 14 (3), 121-129 (1987).</li>
<li>Ibrahim, A. Y., Gudhimella, S., Pandruvada, S. N., Huja, S. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Resolving+differences+between+animal+models+for+expedited+orthodontic+tooth+movement%5BTitle%5D)+AND+%22Orthodontics+%26+Craniofacial+Research%22%5BJournal%5D)">Resolving differences between animal models for expedited orthodontic tooth movement.</a> Orthodontics & Craniofacial Research. 20, 72-76 (2017).</li>
<li>Kirschneck, C., Bauer, M., Gubernator, J., Proof, P., Schröder, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparative+assessment+of+mouse+models+for+experimental+orthodontic+tooth+movement%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Comparative assessment of mouse models for experimental orthodontic tooth movement.</a> Scientific Reports. 10 (1), 1-12 (2020).</li>
<li>Ransom, R. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanoresponsive+stem+cells+acquire+neural+crest+fate+in+jaw+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Mechanoresponsive stem cells acquire neural crest fate in jaw regeneration.</a> Nature. 563 (7732), 514-521 (2018).</li>
<li>Mardas, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Experimental+model+for+bone+regeneration+in+oral+and+cranio-maxillo-facial+surgery%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Investigative+Surgery%22%5BJournal%5D)">Experimental model for bone regeneration in oral and cranio-maxillo-facial surgery.</a> Journal of Investigative Surgery. 27 (1), 32-49 (2014).</li>
</ol>

Los autores declaran no tener conflictos de intereses.

En este trabajo, intentamos describir paso a paso el protocolo de movimiento dental de ortodoncia más simple en el modelo maxilar murino para estudiar los mecanismos latentes de la remodelación ósea inducida por carga mecánica. Aparte de la investigación sobre la remodelación ósea, existen otras aplicaciones principales de este método: 1) investigación metodológica sobre la aceleración del movimiento dental de ortodoncia; 2) investigación sobre la reabsorción radicular ortodóncica; 3) mecanismos biológicos del movimiento...

El hueso es un tejido reconstruido altamente activo que adapta su tamaño, forma y propiedades a lo largo de la vida del individuo 1,2. Además de las hormonas, el envejecimiento, la nutrición y otros factores biológicos o bioquímicos3, la idea de que la carga mecánica es el factor más determinante ha obtenido una aceptación general 4,5. En algunas circunstancias con carga mecánica anormal, el desequilibrio entre la resorción ósea y la formación ósea puede conducir a una remodelación ósea anormal y trastornos óseos. Las enfermedades óseas como la osteoporosis por desuso y la pérdida ósea durante el reposo en cama a largo plazo o en presencia de microgravedad en vuelos espaciales tienen una estrecha relación con la carga mecánica anormal 6,7,8.
La carga mecánica también se ha utilizado para tratar enfermedades relacionadas con los huesos, como el tratamiento de distracción y el tratamiento de ortodoncia. El tratamiento de distracción se ha utilizado en enfermedades del desarrollo como la craneosinostosis y la hipoplasia mandibular 9,10, mientras que el tratamiento de ortodoncia se ha utilizado ampliamente para rectificar la posición anormal de los dientes y cualquier maloclusión11. El núcleo del tratamiento de ortodoncia es también el manejo de la carga mecánica. Cuando el tejido óseo es sometido a carga mecánica, se induce un proceso de remodelación ósea altamente coordinado mediante el acoplamiento de la resorción ósea seguido de la formación de hueso, que puede mover los dientes para lograr el propósito ortodóncico12,13.
Aunque el tratamiento de ortodoncia se ha aplicado ampliamente en la práctica clínica, ya que nuestro conocimiento de los efectos biológicos de la carga mecánica es limitado, los resultados del tratamiento de ortodoncia son incontrolables. Para superar estas limitaciones, se han establecido varios modelos animales como ratón, rata, conejo, gato, perro, mono y cerdo para investigar el mecanismo subyacente de la remodelación ósea inducida por la carga mecánica (Tabla 1)14,15,16,17,18,19,20,21,22,23,24, 25,26,27,28,29,30,31,32. Los animales grandes como perros, monos y cerdos tienen algunas ventajas sobre los animales pequeños en la operación de ortodoncia: tienen dientes y dentición más parecidos a los humanos, por lo que el procedimiento quirúrgico es fácil de replicar en humanos. Además, una visión amplia puede reducir la dificultad de la operación y posibilitar la aplicación de una variedad de esquemas de ortodoncia33,34. Sin embargo, los animales grandes son difíciles de obtener, lo que genera desafíos relacionados con el tamaño de la muestra y están sujetos a restricciones éticas35. Además, los procedimientos de extracción rutinarios y los instrumentos complejos dificultan la realización de los experimentos, por lo que rara vez se utilizan animales grandes.
En tales circunstancias, los roedores se utilizan principalmente para establecer modelos de ortodoncia. Entre estos modelos, las ratas y los conejos tienen menor dificultad de operación y más esquemas de movimiento de los dientes en comparación con los ratones. Sin embargo, el modelo murino tiene la ventaja única de que hay un gran número de ratones modificados genéticamente disponibles, lo que es especialmente crucial para investigar los mecanismos subyacentes36. Sin embargo, el modelo murino es el modelo más difícil de manipular debido a su pequeño tamaño. Revisando los métodos actuales, mover el primer molar en la dirección mesial es el único método práctico para un modelo de ortodoncia. Se utilizan principalmente dos dispositivos para mover el resorte helicoidal y la banda elástica. Usar una banda elástica es más fácil, pero la fuerza de ortodoncia varía mucho, lo que dificulta la obtención de resultados estables.
Xu et al.15 han establecido un modelo murino con un muelle helicoidal en la mandíbula. Sin embargo, debido a la movilidad de la mandíbula y a la naturaleza obstructiva de la lengua, la operación en el maxilar es siempre la primera opción tanto para consideraciones intraoperatorias como postoperatorias. Taddei et al.16 describieron un protocolo más detallado en el maxilar murino hace 10 años y se deben añadir más detalles visuales y pelúcidos. En resumen, este protocolo ha descrito sistemáticamente un protocolo detallado de movimiento dental ortodóncico en un modelo maxilar murino para ayudar a los investigadores a dominar el método de modelado de forma estandarizada y permitir la evaluación comparativa entre diferentes estudios.

<table><tbody><tr><td>Experimental Models: Mouse Lines</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>C57/B6J&nbsp;</td><td>Gempharmatech Compañía de Animales de Experimentación&nbsp;</td><td>C57/B6J</td><td></td></tr><tr><td><Ensayos comerciales críticos> </Kit ></td> tinción de <td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>hematoxilina y eosina</td><td>Biosharp</td><td>BL700B</td><td></td></tr><tr><td>Masson' s Kit de tinte tricrómico</td><td>Solarbio</td><td>G1340</td><td></td></tr><tr><td>Instruments</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>27 G</td><td>needle Chengdu Xinjin Shifeng Medical Apparatus & Instrumentos Co. LTD.</td><td>SB1-074(IV)</td><td></td></tr><tr><td>Adhesivos</td><td>Minnesota Mining and Manufacturing Co., Ltd.</td><td>41282</td><td></td></tr><tr><td>Tablero de corcho</td><td>DELI Group Co., Ltd.</td><td>8705</td><td></td></tr><tr><td>Bolas de algodón</td><td>Haishi Hainuo Group Co.,&nbsp; Ltd.</td><td></td><td></td>20120047</tr><tr><td>Palitos de algodón</td><td>Lakong Medical Devices Co., Ltd.</td><td>M6500R</td><td></td></tr><tr><td>Resorte helicoidal personalizado</td><td>Chengdu Mingxing Spring Co., Ltd.</td><td>1109-02</td><td></td></tr><tr><td>Pinzas</td><td>Chengdu Shifeng Co., Ltd.</td><td>ninguno</td><td></td></tr><tr><td>Resina fluida fotopolimerizable</td><td>Shofu Dental Trading (SHANGHAI) Co., Ltd.</td><td></td><td></td>518785</tr><tr><td>Curador de luz</td><td>Liang Ya Dental Equipment Co., Ltd.</td><td>LY-A180</td><td></td></tr><tr><td>Cintas adhesivas médicas&nbsp;</td><td>Haishi Hainuo Grupo Co., &nbsp; Ltd.</td><td>0008-2014</td><td></td></tr><tr><td>Tela no tejida médica</td><td>Henan Yadu Industrial Co., Ltd.</td><td></td><td></td>01011500018</tr><tr><td>Portaagujas</td><td>Chengdu Shifeng Co., Ltd.</td><td>ninguno</td><td></td></tr><tr><td>Bandas elásticas</td><td>Haishi Hainuo Group Co.,&nbsp; Ltd.</td>Tijeras quirúrgicas <td>32X1</td><td></td></tr><tr><td></td><td>Chengdu Shifeng Co., Ltd.</td><td>none</td><td></td></tr><tr><td>Pinzas</td><td>Chengdu Shifeng Co., Ltd.</td><td>ninguno</td><td></td></tr></tbody></table>

el establecimiento de un modelo de ortodoncia maxilar murina

The Establishment of a Murine Maxillary Orthodontic Model

Debido a la falta de protocolos reproducibles para establecer un modelo de ortodoncia maxilar murina, presentamos un protocolo confiable y reproducible para proporcionar a los investigadores una herramienta factible para analizar el remodelado óseo asociado a la carga mecánica. Este estudio presenta un diagrama de flujo detallado, además de diferentes tipos de diagramas esquemáticos, fotos de operaciones y videos. Realizamos este protocolo en 11 ratones adultos de tipo ancho C57/B6J y recolectamos muestras en los días postoperatorios 3, 8 y 14. La micro-TC y los datos histopatológicos han demostrado el éxito de los movimientos dentales junto con el remodelado óseo mediante este protocolo. Además, de acuerdo con los resultados de la micro-TC en los días 3, 8 y 14, hemos dividido el modelado óseo en tres etapas: etapa de preparación, etapa de resorción ósea y etapa de formación ósea. Se espera que estas etapas ayuden a los investigadores que se ocupan de las diferentes etapas a establecer el tiempo de recolección de muestras de manera razonable. Este protocolo puede dotar a los investigadores de una herramienta para llevar a cabo análisis regenerativos del remodelado óseo.

Hemos realizado la cirugía OTM en 11 ratones machos adultos (C57/BL6, de 3 meses de edad). Se les practicó la eutanasia para obtener resultados en los días 3, 8 y 14 después de la cirugía. En estos experimentos, el lado maxilar derecho es el lado de operación, mientras que el lado maxilar izquierdo es el lado de control. La micro-TC mostró que hubo un aumento temporal consecutivo en la distancia entre M1 y M2: 30 μm, 70 μm y 110 μm a los 3, 8 y 14 días postoperatorios, respectivamente (Figura 4</stro...

Aquí demostramos paso a paso un protocolo de movimiento dental de ortodoncia manejable operado en un modelo maxilar murino. Con la explicación explícita de cada paso y la demostración visual, los investigadores pueden dominar este modelo y aplicarlo a sus necesidades experimentales con algunas modificaciones.

El establecimiento de un modelo de ortodoncia maxilar murina

Due to the lack of reproducible protocols for establishing a murine maxillary orthodontic model, we present a reliable and reproducible protocol to ...

Como hemos revisado, el modelo de ortodoncia maxilar murina es muy utilizado, pero descrito de forma sencilla. Es difícil repetir y comparar los datos experimentales entre diferentes estudios basados en los métodos actuales. Por lo tanto, este protocolo ayudará a los investigadores a dominar el método de modelado de forma estandarizada y permitirá realizar evaluaciones comparativas entre diferentes estudios.Este protocolo es en realidad el método de modelado más simple en murino hasta la fecha, y nuestro video ha mostrado muchos detalles prácticos de modelado. Este método se basa en murino y el estrechamiento del espacio de operación definitivamente traerá grandes desafíos para los principiantes. Una cierta cantidad de práctica puede ser útil.Este protocolo proporciona carga ortodóncica de la manera más sencilla, por lo que los experimentos con este protocolo ahorrarán tiempo y serán fáciles de repetir. También hay muchas ventajas para los principiantes, como un amplio campo de visión quirúrgico y procedimientos quirúrgicos visuales. El alumno de base cero puede dominar este modelo más fácilmente con nuestro protocolo.

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Research

Investigación

JoVE Journal

Medicine

Medicina

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Imágenes 3D De Fibras De Colágeno PDL Durante El Movimiento Dental Ortodoncia En El Modelo Murino Mandibular

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El establecimiento de un modelo de curación del alvéolo de extracción molar mandibular murina

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Establecimiento de un modelo de exposición a la pulpa murina con una mordaza bucal novedosa para la investigación de la pulpitis

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Aprende a establecer un modelo de ortodoncia maxilar murino con este protocolo estandarizado. Incluye demostraciones visuales detalladas para mejorar la reproducibilidad y facilitar comparaciones entre estudios experimentales.

El establecimiento de un modelo de ortodoncia maxilar murina

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