Name: Cirugía de bypass duodenal-yeyuno en ratones diabéticos obesos inducidos por la dieta (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2024-10-18T12:40:00.000+00:00
Duration: 8 min 50 s
Description: Aprende el protocolo de cirugía de bypass duodenal-yeyuno en ratones obesos diabéticos inducidos por dieta. Este método establece un modelo fiable para investigar la mejora del metabolismo glucídico y la resistencia a la insulina.

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Todos los pasos del protocolo que se describen a continuación siguen los lineamientos del Comité de Cuidado y Uso de Animales del Hospital General del Comando del Teatro Sur bajo el número de aprobación 2020112501.
1. Preparación preoperatoria general
NOTA: Se compraron treinta ratones machos C57BL/6 de 6 semanas de edad. Los ratones se alojaron en un laboratorio libre de patógenos específicos (SPF) bajo un ciclo de luz/oscuridad de 12 h; temperatura, 22 ± 2 °C; y la humedad, 55-65%. Los ratones tuvieron acceso gratuito al agua y se les alimentó con una dieta de 60% de kcal y grasas durante 6 semanas para inducir la obesidad. Se administró una inyección intraperitoneal de 40 mg/kg de estreptozotocina durante 5 días para inducir diabetes17. Entre los treinta ratones, veintidós ratones fueron examinados para determinar si la glucosa en sangre era aleatoria &gt; 300 mg/dL y se asignaron aleatoriamente a los grupos DJB (n = 15) y cirugía simulada (n = 7). Ocho ratones fueron excluidos del experimento debido a una glucosa en sangre por debajo de la norma.
<ol><li>Ayuna a los ratones durante 8 h antes de la cirugía. Retirar agua 2 h antes de la cirugía.</li>
	<li>Administrar solución de pentobarbital sódico al 1% (6 mL/kg) y buprenorfina (1 mg/kg) por vía intraperitoneal. Toque los dedos de los pies o la cola de los ratones con pinzas y asegúrese de que los ratones no muestren ningún espasmo o sacudida evidente. Bajo la anestesia adecuada, los ratones pueden respirar libremente sin oxígeno suplementario.</li>
	<li>Coloque los ratones en posición supina sobre una tabla estéril y bajo un microscopio estereoscópico. Aplique ungüento para los ojos en los ojos. Use una manta eléctrica para mantener a los ratones calientes durante todo el procedimiento. Use procedimientos estériles, como batas quirúrgicas, guantes estériles e instrumentos esterilizados en autoclave.</li>
	<li>En ratones de control simulados, hacer las dos incisiones respectivamente en el duodeno 1 cm por debajo del píloro y en el yeyuno 5 cm por debajo del Treitz y luego suturar las incisiones.</li>
</ol>2. Bypass duodenal yeyunal: procedimiento quirúrgico
<ol><li>Aplicar la pasta depilatoria desde el xifoides hasta el abdomen para eliminar el vello de esta región. Limpie la crema y asegúrese de que la piel esté limpia. Frote el área tres veces con un exfoliante alterno de soluciones de yodo y alcohol.</li>
	<li>Cubra el ratón con un paño estéril, dejando expuesta la zona operativa, y haga una incisión de 2 cm desde el xifoides hasta el abdomen.</li>
	<li>Use un retractor abdominal para exponer la cavidad abdominal. Empuje la grasa abdominal con un hisopo de algodón húmedo y mueva el hígado hacia el lado cefálico para exponer completamente el estómago y los intestinos.</li>
	<li>El estómago y el píloro están debajo del hígado, y el ligamento de Treitz está en el duodeno distal. Ligar dos veces el yeyuno, 5 cm distal al ligamento de Treitz con una sutura de seda 6-0 (Figura 1A). Cortar el yeyuno en el punto medio de las dos ligaduras y suturar el muñón yeyunal con una sutura de seda 10-0 (Figura 1B). NOTA: Evite retorcer los vasos sanguíneos mesentéricos.</li>
	<li>Tire de la incisión yeyunal proximal 5 cm a lo largo del intestino hasta el yeyuno para crear una anastomosis yeyunal-yeyunal. Alinee los dos intestinos horizontalmente y luego use una sutura de seda 10-0 para crear la anastomosis lateral (Figura 1C). NOTA: Durante la cirugía, mantenga el intestino húmedo con solución salina para reducir la pérdida de agua. Esto evitará que el intestino se enrolle y facilitará la sutura.</li>
	<li>Asegure ambos extremos del intestino y corte la incisión a la misma longitud (Figura 1D). Suturar la segunda capa de la pared intestinal posterior con una sutura continua de espesor completo. NOTA: La longitud de la incisión es de aproximadamente 0,5-0,6 cm y la distancia de la aguja es de ~0,5 mm.</li>
	<li>Asegure ambos extremos del intestino y suture la pared anterior del intestino. Suturar la primera capa de la pared anterior con una sutura continua simple y la segunda capa con una sutura horizontal en varo (Figura 1E-F). NOTA: Frote el contenido intestinal con hisopos de algodón para prevenir la infección de la cavidad abdominal.</li>
	<li>Tire de la incisión yeyunal distal en el duodeno 1 cm por debajo del píloro para crear una anastomosis duodenal-yeyuno (Figura 1G). Suérelo utilizando el mismo método que en los pasos 2.6-2.7 (Figura 1H-K). NOTA: Revise la sutura en la esquina anastomótica para reducir la fuga anastomótica.</li>
	<li>Lieva el intestino con las micro pinzas y corte el intestino con las micro tijeras. Ligar doblemente el duodeno con una sutura de seda 6-0, a 2 mm del extremo distal de la anastomosis duodenal-yeyunal. Cortar en el punto medio con microtijeras y suturar el muñón con una sutura de seda 10-0 (Figura 1L). NOTA: Los vasos gastroduodenales se ramifican perpendicularmente a la cabeza del páncreas y son adyacentes al píloro, lo que requiere una exploración cuidadosa de los vasos en la sección transversal. Se localizó la confluencia de la colédoca y el duodeno, cuidando de no dañar el páncreas ni la colédoca.</li>
	<li>Enjuague la cavidad abdominal con solución salina a 30 °C. Regrese el intestino a la cavidad abdominal. Suturar el músculo y la piel por separado con una seda 6-0. A continuación, desinfecta la piel con yodoforo.</li>
	<li>Después de la cirugía, inyecte solución salina a 30 °C (30 mL/kg) por vía subcutánea en la espalda para prevenir la deshidratación. Inyecte penicilina (10 mg/kg) por vía intramuscular para prevenir la infección.</li>
</ol><img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66049/66049fig01.jpg"> Figura 1: Procedimiento de bypass duodenal-yeyunal. (A) Localización del yeyuno a 5 cm distal del ligamento de Treitz. (B) Ligar dos veces el yeyuno con seda 6-0, cortado por el medio de la ligadura. (C) Anastomosis yeyunal-yeyunal. (D) Hacer una incisión de 0,5-0,6 cm, y suturar la pared posterior. (E-F) Anastomosis yeyunal completa. (G) Tire del yeyunal distal hasta el duodeno 1 cm por debajo del píloro. H) Anastomosis duodenal-yeyunal. (I) Cortar la anastomosis duodenal-yeyunal con una incisión de 0,5-0,6 cm y suturar la pared posterior con una sutura continua simple. (J-K) Anastomosis duodenal-yeyunal completa. (L) A 2 mm desde la anastomosis distal hasta la duodenal-yeyunal, ligar dos veces el duodeno con seda 6-0 y cortar por la mitad de la ligadura. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66049/66049fig01large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
3. Cuidados postoperatorios generales
<ol><li>Después de la cirugía, coloque a los ratones sobre una manta eléctrica para prevenir la hipotermia. Permita que los ratones se arrastren libremente hasta que estén completamente despiertos antes de regresar a sus jaulas.</li>
	<li>El día del postoperatorio, restrinja la comida y el agua e inyecte 2 mL de suero fisiológico por vía subcutánea en el dorso de los ratones. En el primer día postoperatorio, dar 10 mL de glucosa al 10% y una bebida funcional (proporción 1:1) sin alimentos, e inyectar 1 mL de suero fisiológico por vía subcutánea.</li>
	<li>En el segundo y tercer día postoperatorio, alimentar a los ratones con una mezcla de 20 mL de glucosa al 10% y una bebida funcional. Después del cuarto día, dale a los ratones agua pura y una dieta alta en grasas. La alimentación transitoria debe realizarse de acuerdo con el estado de recuperación postoperatoria en el siguiente orden: alimento en solución, semilíquido o sólido.</li>
	<li>Analgesia postoperatoria: inyectar buprenorfina (0,1 mg/kg) cada 12 h desde el día 1 hasta el día 3, y luego una vez al día hasta el día 5.</li>
	<li>Después de la cirugía, observe las condiciones de alimentación, la actividad, las heces y la cicatrización de las heridas de los ratones.</li>
</ol><img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66049/66049fig02.jpg"> Figura 2: Diagrama de la cirugía de DJB. (A) Anastomosis duodenal-yeyunal. (B) Anastomosis yeyunal-yeyunal. (C) Miembro biliopancreático. (D) Miembro digestivo. e) Miembro común. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66049/66049fig02large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/66049/66049fig03.jpg"> Figura 3: Anatomía de la cirugía DJB. A) Anastomosis duodenal-yeyunal. (B) Anastomosis yeyunal-yeyunal. (C) Miembro biliopancreático. (D) Miembro digestivo. e) Miembro común. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/66049/66049fig03large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
4. Evaluación postoperatoria de parámetros metabólicos
<ol><li>Medición del peso corporal<ol><li>Ayune los ratones durante 8 h antes de la medición. Pesar a los ratones semanalmente el lunes antes y después de la cirugía durante 8 semanas.</li>
	</ol></li>
	<li>Medición de la ingesta de alimentos<ol><li>Alberga un ratón en cada jaula. Mida la cantidad de alimento sólido en cada jaula antes y después de 24 h. La diferencia entre los dos valores representa la ingesta diaria de alimentos.</li>
	</ol></li>
	<li>Medición aleatoria de glucosa en sangre<ol><li>A las 8:00 a.m. del lunes semanal de medición, recoja una gota de sangre de la punta de la cola del ratón y aplíquela a una tira de glucosa insertada en el glucómetro.</li>
	</ol></li>
	<li>Prueba de tolerancia oral a la glucosa<ol><li>Ocho semanas después de la cirugía DJB, ayunar los ratones durante 8 h antes de la prueba de tolerancia oral a la glucosa. Recoja una gota de sangre de la punta de la cola del ratón y colóquela en una tira de glucosa insertada en el glucómetro. Administrar una dosis oral de D-glucosa al 20% (2 g/kg). Mida los niveles de glucosa en sangre a los 0, 15, 30, 60, 90, 120, 150 y 180 minutos después de la sonda nasogástrica.</li>
	</ol></li>
</ol>

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<li>Nasser, K. M., Wahba, H. A., Kamal, E., El-Makhzangy, A. M., Bahaa, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+model+for+training+and+improvement+of+the+surgical+skills+in+endolaryngeal+microsurgery%5BTitle%5D)+AND+%22J+Voice%22%5BJournal%5D)">Animal model for training and improvement of the surgical skills in endolaryngeal microsurgery.</a> J Voice. 26 (3), 351-357 (2012).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>Retractor abdominal</td><td>FST</td><td>17000-03</td><td>Retractor Colibri -3 cm, rango de retractor 1,5 cm / 3 cm de largo</td></tr><tr><td>solución de pentobarbital de sodio al 1% Fábrica</td> de <td>reactivos químicos de Guangzhou</td> <td>/</td> <td>&nbsp; Disuelto 500 mg de polvo de pentobarbital sódico en 50 ml de solución salina normal para obtener una solución de pentobarbital sódico al 1%.</td></tr><tr><td>Bencilpenicilina sódica para inyección</td><td>North China Pharmaceutical Company Ltd.</td><td>F2062121</td><td>Penicilina</td></tr><tr><td>Buprenorfina</td><td>Guangzhou Fábrica de reactivos químicos</td><td>/</td><td>Analgesia</td></tr><tr><td>Buprenorfina</td><td>Guangzhou Otsuka Pharmaceutical Co., Ltd</td><td>/</td><td>Analgésico</td></tr><tr><td>Tampón de citrato de sodio y ácido cítrico</td><td>LEAGENE</td><td>R00522</td><td>Solución tampón</td></tr><tr><td>Bastoncillos de algodón</td><td>HaoZheng Medical</td><td>60220610</td><td>Hisopos de algodón</td></tr><tr><td>Pasta depilatoria</td><td>Veet</td><td>AAPR-S222</td><td>Crema depilatoria</td></tr><tr><td>Marca auricular</td><td>ZEYA</td><td>SUS304</td><td>Ear-mark</td></tr><tr><td>Manta eléctrica</td><td>ZOSEN</td><td>ZS-CWDRT</td><td>Almohadilla térmica Báscula</td></tr><tr><td>electrónica</td><td>WETTLER TOLEDO</td><td>20060902-6</td><td>Medir el peso</td></tr><tr><td>Nutrición enteral en polvo</td><td>Abbott Laboratories</td><td>/</td><td>Nutrición en polvo</td></tr><tr><td>Ojo ungüento</td><td>Guangzhou Otsuka Pharmaceutical Co., Ltd</td><td>/</td><td>Proteger los ojos</td></tr><tr><td>Gúlcómetro</td><td>Roche</td><td></td><td>6993788001 Evaluar la glucosa en sangre</td></tr><tr><td>Prisma Graphpad versión 9.4.1</td><td>Software GraphPad</td><td>versión 9.4.1</td><td>Software para análisis estadístico</td></tr><tr><td>Dieta alta en grasas (Dieta purificada para roedores alta en grasas [60FDC]Dyets</td><td></td> <td>112252</td><td>60kcal% Dieta alta en grasas</td></tr><tr><td>Micro Pinzas</td><td>Jinzhong Medical</td><td>18-1140</td><td>Micro pinzas</td></tr><tr><td>Micro portaagujas</td><td>Jinzhong Medical</td><td>EMT-160-Z</td><td>Portaagujas</td></tr><tr><td>Micro Tijeras</td><td>Jinzhong Medical</td><td>YBC010</td><td>Micro tijeras</td></tr><tr><td>Cámara microscópica</td><td>LAPSUN</td><td>E 2000</td><td>Video</td></tr><tr><td>Tijeras oftálmicas</td><td>Jinzhong Medical</td><td>Y00030</td><td>Tijeras quirúrgicas</td></tr><tr><td>Pentobarbital</td><td>Guangzhou Fábrica de reactivos químicos</td><td>/</td><td>Narcosis</td></tr><tr><td>Inyección de cloruro de sodio</td><td>Guangzhou Otsuka Pharmaceutical Co., Ltd</td><td>B21L0301</td><td>NaCl 0.9%</td></tr><tr><td>Microscopio estereoscópico</td><td>ZEISS</td><td>Stemi 305</td><td>Microscopio estereoscópico binocular</td></tr><tr><td>Estreptozotocina</td><td>Sigma</td><td>S110910-1g</td><td>STZ</td></tr><tr><td>Línea de sutura</td><td>LINGQIAO SUTURE</td><td>ZS-LQPMRZ5/ 0</td><td>Prolene 6/0,Prolene 10/0</td></tr><tr><td>Pinza de tejido</td><td>Jinzhong Medical</td><td>H1701</td><td>Pinzas quirúrgicas</td></tr></tbody></table>

cirugía de bypass duodenal-yeyuno en ratones diabéticos obesos inducidos por la dieta

Duodenal-Jejunal Bypass Surgery in Diet-Induced Obese Diabetic Mice

Condiciones generales El tiempo operatorio medio del procedimiento DJB fue de 84,5 ± 2,6 min. Quince ratones se sometieron a la cirugía DJB, nueve ratones sobrevivieron. Como se muestra en la Tabla 1, la mayoría de las muertes ocurrieron durante la cirugía o en los 7 días siguientes. Las causas de muerte postoperatoria fueron sangrado (n=2) en el día postoperatorio 1, fuga anastomótica (n=1) en el día 4 postoperatorio, obstrucción anastomótica (n=2) en el día 7 postoperatorio y causa ...

Cirugía de bypass duodenal-yeyuno en ratones diabéticos obesos inducidos por la dieta

The prevalence of obesity and type 2 diabetes is a serious global health concern. Obesity is a major pathogenic factor in type 2 diabetes, cardiovascular ...

duodenal-jejunal-bypass-surgery-in-diet-induced-obese-diabetic-mice

Research

Investigación

JoVE Journal

Medicine

Medicina

Numerosos estudios con modelos de ratas de bypass gástrico se han llevado a cabo recientemente para descubrir los mecanismos fisiológicos de Roux-en-Y las operaciones de bypass gástrico. En este artículo se pretende demostrar y discutir los detalles técnicos y experimentales de nuestro modelo de rata de derivación gástrica publicada a entender las ventajas y limitaciones de esta herramienta experimental.

Roux-en-Y Gastric operación de bypass en las ratas

Este video describe un procedimiento de cirugía bariátrica-Roux-en-Y. Se trata del corte del yeyuno, la porción media del intestino, para generar dos extremidades intestinales. La extremidad biliar se une al asa intestinal existente y la extremidad alimentaria se une al estómago, creando un bypass gástrico. El bypass gástrico creado aquí ayuda a disminuir la absorción de nutrientes y reduce eficazmente el peso corporal.

Procedimiento de bypass gástrico en Y de Roux: un procedimiento quirúrgico bariátrico para la resección gástrica en modelo murino

La cirugía bariátrica es la forma más eficiente de reducir el peso corporal y las complicaciones metabólicas mortales (diabetes, obesidad y dislipidemia) frecuentemente asociadas con la obesidad mórbida. Los modelos murinos de cirugía bariátrica representan un activo único para descifrar los mecanismos moleculares detrás de los efectos beneficiosos de estas cirugías sobre la diabetes, la hipertensión y la dislipidemia.

Técnicas de Manga Gástrica y modificación de Roux-en-Y bypass gástrico en ratones

Este protocolo demuestra el aislamiento de los islotes murinos y la siembra en un andamio decelularizado. Los islotes soportados por el andamio fueron trasplantados en la almohadilla de grasa epididimal de ratones diabéticos inducidos por estreptozotocina (STZ). Los islotes sobrevivieron en el sitio del trasplante e invirtieron la condición hiperglucémica.

Transplante de islotes en el cojín de grasa epididimal de ratones diabéticos

A continuación describen los resultados de la gastrectomía en manga vertical en ratones. Se trata de un tipo de cirugía de pérdida de peso que consiste en la extracción de aproximadamente el 70% del estómago.

Un modelo murino de gastrectomía en manga Vertical

Este protocolo es para la realización de bypass gástrico de una anastomosis (OAGB) en rata. El operador realiza una larga y tubular con grapas bolsa gástrica seguida de anastomosis cosida a mano. Para este modelo, el operador reproduce la misma relación entre Biliopancreática y miembro común en los seres humanos; por lo tanto, la rama Biliopancreática mide 35 cm.

Bypass gástrico de una anastomosis (OAGB) en ratas

La prevalencia de la diabetes y la obesidad está aumentando continuamente en todo el mundo. Es necesario seguir investigando los mecanismos entre la diabetes, la obesidad y sus morbilidades y coinmordías asociadas. Aquí, presentamos un protocolo para la gastrectomía de manga (SG) en animales como un modelo preclínico sin complicaciones de cirugía bariátrica.

Gastrectomía de manga en ratones usando clips quirúrgicos

El bypass gástrico Roux-en-Y (RYGB) se realiza para tratar la obesidad y la diabetes. Sin embargo, los mecanismos que subyacen a la eficacia de RYGB no se entienden completamente, y los estudios están limitados por la dificultad técnica que conduce a una alta mortalidad en modelos animales. Este artículo proporciona instrucciones sobre cómo realizar RYGB en ratas con altas tasas de éxito.

Un Protocolo Para Roux-en-Y Bypass Gástrico En Ratas Usando Grapadoras Lineales

El bypass duodeno-ileal de anastomosis única (SADI-S) es un procedimiento bariátrico emergente con importantes efectos metabólicos. En este artículo, presentamos un modelo confiable y reproducible de SADI-S en ratones.

Bypass duodeno-ileal de anastomosis única con modelo de gastrectomía en manga en ratones

Determinación del vaciamiento gástrico con un no-invasivo...

Evaluación del vaciamiento gástrico en ratones diabéticos no obesos mediante un [<sup&gt; 13</sup&gt; C]-octanoico prueba del aliento ácido

Aprende el protocolo de cirugía de bypass duodenal-yeyuno en ratones obesos diabéticos inducidos por dieta. Este método establece un modelo fiable para investigar la mejora del metabolismo glucídico y la resistencia a la insulina.

Cirugía de bypass duodenal-yeyuno en ratones diabéticos obesos inducidos por la dieta

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