Name: Una técnica eficiente para una sola persona para el muestreo de leche de ratones de laboratorio (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2025-03-28T13:45:00.000+00:00
Duration: 4 min 56 s
Description: Aprenda un método eficiente para el muestreo de leche en ratones de laboratorio que permite a una sola persona recolectar 0.1–0.5 mL en menos de 10 minutos. Esta técnica mejora la investigación sobre lactación.

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Todos los procedimientos experimentales y de cuidado animal siguieron las pautas federales y recibieron la aprobación del Comité Institucional de Cuidado y Uso de Animales de la Universidad de Rutgers. Los ratones hembra (C57BL/6 fondo) se aparearon a las 8 semanas de edad. Fueron alimentados con un chow ad libitum estándar de reproductora y se mantuvieron bajo un ciclo regular de luz-oscuridad de 12:12 h. El día de la entrega se contó como el día 1 posterior al parto (PD1). En PD2 (lactancia temprana) y PD10 (lactancia máxima), se tomaron muestras de leche como se describe a continuación.
1. Montaje de un dispositivo de ordeño 
<ol>
	<li>Conecte un extremo del tubo de cloruro de polivinilo (PVC) de 5/32" de diámetro interior (ID) a la bomba de vacío y use cinta adhesiva para asegurar el accesorio (etiquetado como a en la Figura 1A). NOTA: La bomba de vacío puede sustituirse por cualquier bomba adecuada o por una aspiradora central (a veces llamada "aspiradora doméstica") disponible en el laboratorio.</li>
	<li>Conecte el otro extremo del tubo de PVC de 5/32'' de diámetro interno al tubo de PVC de 1/8'' de diámetro interno a través de un conector recto de púas.</li>
	<li>Conecte el otro extremo del tubo de PVC de 1/8" de diámetro interno a una aguja hipodérmica de 18G a través de un conector (etiquetado como b en la Figura 1A).</li>
	<li>Corte el extremo de la punta de una pipeta P200 ~0,2 cm para crear una abertura más grande. Inserte la punta de la pipeta P200 a través de la abertura del tapón del tabique para que la punta apunte hacia arriba (Figura 1B). NOTA: Cambie las puntas de pipeta entre animales.</li>
	<li>Conecte el tapón del tabique a un tubo colector estéril. Realice una punción a través del tapón del tabique con la aguja hipodérmica de 18 G.</li>
	<li>Compruebe la presión de succión encendiendo la bomba de vacío y colocando un dedo (cubierto con un guante de laboratorio) contra la abertura de la punta de la pipeta. NOTA: Debería sentir una succión suave si está ensamblado correctamente. El tubo colector, la aguja hipodérmica de 18 G y las puntas de pipeta P200 deben ser estériles.</li>
</ol>
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67669/67669fig1.jpg"> 
Figura 1: El dispositivo de ordeño. (A) Dispositivo de ordeño con una bomba de vacío conectada a una aguja hipodérmica de 18 G a través de un tubo de PVC. La aguja pasa a través de un tapón de tabique que está conectado a un tubo colector de microcentrífuga. Una punta de pipeta P-200 invertida, que se utiliza para extraer leche de un pezón, se inserta a través de una abertura del tapón del tabique. (B) Diagrama de sección transversal del dispositivo de ordeño. (C) Una madre que se ordeña utilizando el método descrito. (D) Una alícuota representativa (0,3 mL) de leche recolectada de una madre en el pico de lactancia. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67669/67669fig1large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
2. Separación de la presa de las crías
<ol>
	<li>El día del ordeño, separe a la madre de sus crías para permitir la acumulación de leche en las glándulas.</li>
	<li>Mantén a los cachorros calientes en un nido.</li>
	<li>Permita 2 h de separación si la leche se recolecta durante la lactancia temprana (p. ej., PD2 en este estudio).</li>
	<li>Espere de 30 a 45 minutos de separación si la leche se recolecta durante el pico de lactancia (p. ej., PD10 en este estudio).</li>
</ol>
3. Anestesia de la presa
<ol>
	<li>Cuando la madre esté lista para ser ordeñada, administre una inyección de solución de ketamina/xilacina (intraperitoneal, i.p.) en un lado de la cavidad peritoneal entre el4º y5º par de pezones. NOTA: La cantidad de solución anestésica a administrar se calcula por el peso de la presa (80-100 mg/kg de ketamina, 5-12 mg/kg de xilacina, según el protocolo IACUC de la Universidad de Rutgers). Esta dosis sedará a un ratón durante 45-60 minutos, proporcionando tiempo suficiente para la recolección de leche.</li>
	<li>Confirme la anestesia apretando un pie firmemente, pero sin lesionarlo, para probar la percepción de la sensación y el dolor del animal. La anestesia adecuada no está indicada por ningún tipo de movimiento.</li>
	<li>Aplique ungüento oftálmico veterinario en los ojos de la madre para evitar la sequedad mientras está bajo anestesia.</li>
</ol>
4. Recogida de leche
<ol>
	<li>Coloque el protector anestesiado en su espalda sobre una superficie sólida de trabajo. Limpie suavemente su área mamaria con una toallita estéril con alcohol para limpiar el área antes del ordeño.</li>
	<li>Administrar 1-2 unidades de oxitocina (i.p.) entre el4º y5º par de pezones en el lado de la cavidad peritoneal que no haya recibido ninguna inyección. NOTA: La oxitocina es una molécula pequeña que se puede absorber rápidamente y tiene una vida media corta 14,15. El ordeño debe comenzar dentro de un minuto después de la inyección.</li>
	<li>Sostenga la presa frotando suavemente el área del cuello con la mano no dominante.</li>
	<li>Extraiga manualmente la leche de un pezón apretando el tejido mamario desde la base hasta la punta del pezón hasta que se vea una gota de leche.</li>
	<li>Encienda el dispositivo de vacío encendiendo el botón de encendido.</li>
	<li>Comience el ordeño aplicando suavemente la punta de pipeta P200 invertida en un pezón. Use un movimiento suave para ayudar a extraer la leche (Figura 1C).</li>
	<li>Repita los pasos 4.4 a 4.6 en todos los pezones hasta que se recoja un volumen suficiente de leche. NOTA: Durante el ordeño, la leche puede introducirse accidentalmente en la aguja hipodérmica de 18 G o en el tubo de PVC de la línea de vacío. Esto se puede remediar fácilmente cambiando la aguja o el tubo de PVC antes de ordeñar al siguiente animal.</li>
</ol>
5. Recuperación de la madre después de la recolección de leche
<ol>
	<li>Regrese a la madre anestesiada a la jaula con sus cachorros y manténgala caliente. Vigila al animal hasta que recupere la conciencia. NOTA: La madre puede negarse a amamantar nuevamente si se le permite despertarse sola en una jaula separada antes de regresar con sus cachorros. Esto es más común cuando la recolección de leche se lleva a cabo durante la lactancia temprana (PD2).</li>
	<li>Deje que las madres se alejen de sus cachorros para que se recuperen por completo cuando comience a despertar; Este es un comportamiento normal. NOTA: Observamos que las madres regresan a sus crías periódicamente y vuelven a amamantar completamente después de unas horas.</li>
</ol>
6. Análisis de la leche
<ol>
	<li>Use un kit comercial de análisis de lactosa (consulte la Tabla de materiales) para medir la lactosa de la leche. Diluir la leche 75x con agua estéril y realizar el ensayo según el protocolo del kit.</li>
	<li>Medir la grasa láctea utilizando el método de creamatocrita demostrado en otras publicaciones16,17.</li>
	<li>Estime la proteína de la leche realizando el ensayo de proteína de Bradford18 con albúmina sérica bovina como estándar19. Antes de realizar el ensayo, centrifugar la leche a 4.000 × g durante 15 min a 4 °C. Extraiga el infranadante mediante pipeteo y dilúyalo a 1:10 con agua estéril antes del ensayo.</li>
	<li>Realizar electroforesis en gel de poliacrilamida (PAGE); Separe 10 μg de proteína en un gel de Bis-Tris prefabricado con 4%-12% según las instrucciones del fabricante. Transfiera las proteínas a membranas de fluoruro de polivinilideno (PVDF) y tíñalas con Coomassie Blue R-250.</li>
</ol>

<meta charset="utf8"></head><body>Método optimizado para la recolección de leche por una sola persona en estudios de lactancia de ratones

<ol><li>Ericsson, A. C., Crim, M. J., Franklin, C. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+brief+history+of+animal+modeling%5BTitle%5D)+AND+%22Mo+Med%22%5BJournal%5D)">A brief history of animal modeling.</a> Mo Med. 110 (3), 201-205 (2013).</li>
<li>Bryda, E. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+mighty+mouse%3A+The+impact+of+rodents+on+advances+in+biomedical+research%5BTitle%5D)+AND+%22Mo+Med%22%5BJournal%5D)">The mighty mouse: The impact of rodents on advances in biomedical research.</a> Mo Med. 110 (3), 207-211 (2013).</li>
<li>Watford, M., Erbelding, E. J., Smith, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Glutamine+metabolism+in+rat+small+intestine%3A+Response+to+lactation%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem+Soc+Trans%22%5BJournal%5D)">Glutamine metabolism in rat small intestine: Response to lactation.</a> Biochem Soc Trans. 14 (6), 1058-1059 (1986).</li>
<li>Robinson, A. M., Williamson, D. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+glucose+metabolism+in+the+lactating+mammary+gland+of+the+rat+in+vivo+and+in+vitro.+Effects+of+starvation%2C+prolactin+or+insulin+deficiency%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem+J%22%5BJournal%5D)">Comparison of glucose metabolism in the lactating mammary gland of the rat in vivo and in vitro. Effects of starvation, prolactin or insulin deficiency.</a> Biochem J. 164 (1), 153-159 (1977).</li>
<li>Kowalski, T. J., Wu, G., Watford, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rat+adipose+tissue+amino+acid+metabolism+in+vivo+as+assessed+by+microdialysis+and+arteriovenous+techniques%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Rat adipose tissue amino acid metabolism in vivo as assessed by microdialysis and arteriovenous techniques.</a> Am J Physiol. 273 (3 Pt 1), E613-E622 (1997).</li>
<li>Ashcroft, S. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protocol+to+assess+arteriovenous+differences+across+the+liver+and+hindlimb+muscles+in+mice+following+treadmill+exercise%5BTitle%5D)+AND+%22STAR+Protoc%22%5BJournal%5D)">Protocol to assess arteriovenous differences across the liver and hindlimb muscles in mice following treadmill exercise.</a> STAR Protoc. 4 (1), 101985(2023).</li>
<li>Hallemeesch, M. M., Ten Have, G. A., Deutz, N. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Metabolic+flux+measurements+across+portal+drained+viscera%2C+liver%2C+kidney+and+hindquarter+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Animal%22%5BJournal%5D)">Metabolic flux measurements across portal drained viscera, liver, kidney and hindquarter in mice.</a> Lab Animal. 35 (1), 101-110 (2001).</li>
<li>Le, H., Nguyen, M., Manso, H. E. C., Wang, M. D., Watford, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adipocytes+are+the+only+site+of+glutamine+synthetase+expression+within+the+lactating+mouse+mammary+gland%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Dev+Nutr%22%5BJournal%5D)">Adipocytes are the only site of glutamine synthetase expression within the lactating mouse mammary gland.</a> Curr Dev Nutr. 8 (6), 102168(2024).</li>
<li>Giordano, A., Smorlesi, A., Frontini, A., Barbatelli, G., Cinti, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((White%2C+brown+and+pink+adipocytes%3A+The+extraordinary+plasticity+of+the+adipose+organ%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Endocrinol%22%5BJournal%5D)">White, brown and pink adipocytes: The extraordinary plasticity of the adipose organ.</a> Eur J Endocrinol. 170 (5), R159-R171 (2014).</li>
<li>Knight, C. H., Maltz, E., Docherty, A. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Milk+yield+and+composition+in+mice%3A+Effects+of+litter+size+and+lactation+number%5BTitle%5D)+AND+%22Comp+Biochem+Physiol+A+Comp+Physiol%22%5BJournal%5D)">Milk yield and composition in mice: Effects of litter size and lactation number.</a> Comp Biochem Physiol A Comp Physiol. 84 (1), 127-133 (1986).</li>
<li>Willingham, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Milk+collection+methods+for+mice+and+reeves%27+muntjac+deer%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Milk collection methods for mice and reeves' muntjac deer.</a> J Vis Exp. (89), e51007(2014).</li>
<li>Muranishi, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Method+for+collecting+mouse+milk+without+exogenous+oxytocin+stimulation%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechniques%22%5BJournal%5D)">Method for collecting mouse milk without exogenous oxytocin stimulation.</a> Biotechniques. 60 (1), 47-49 (2016).</li>
<li>Gómez-Gallego, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+method+to+collect+high+volumes+of+milk+from+mice+%28mus+musculus%29%5BTitle%5D)+AND+%22Anales+de+Veterinaria+de+Murcia%22%5BJournal%5D)">A method to collect high volumes of milk from mice (mus musculus).</a> Anales de Veterinaria de Murcia. 29, 55-61 (2014).</li>
<li>DePeters, E. J., Hovey, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methods+for+collecting+milk+from+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Mammary+Gland+Biol+Neoplasia%22%5BJournal%5D)">Methods for collecting milk from mice.</a> J Mammary Gland Biol Neoplasia. 14 (4), 397-400 (2009).</li>
<li>Oxytocin- oxytocin injection. , 
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<li>Lucas, A., Gibbs, J. A., Lyster, R. L., Baum, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Creamatocrit%3A+Simple+clinical+technique+for+estimating+fat+concentration+and+energy+value+of+human+milk%5BTitle%5D)+AND+%22Br+Med+J%22%5BJournal%5D)">Creamatocrit: Simple clinical technique for estimating fat concentration and energy value of human milk.</a> Br Med J. 1 (6119), 1018-1020 (1978).</li>
<li>Paul, H. A., Hallam, M. C., Reimer, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Milk+collection+in+the+rat+using+capillary+tubes+and+estimation+of+milk+fat+content+by+creamatocrit%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Milk collection in the rat using capillary tubes and estimation of milk fat content by creamatocrit.</a> J Vis Exp. (106), e53476(2015).</li>
<li>Ernst, O., Zor, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Linearization+of+the+Bradford+protein+assay%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Linearization of the Bradford protein assay.</a> J Vis Exp. (38), e1918(1918).</li>
<li>Hueso, D., Fontecha, J., Gomez-Cortes, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparative+study+of+the+most+commonly+used+methods+for+total+protein+determination+in+milk+of+different+species+and+their+ultrafiltration+products%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Nutr%22%5BJournal%5D)">Comparative study of the most commonly used methods for total protein determination in milk of different species and their ultrafiltration products.</a> Front Nutr. 9, 925565(2022).</li>
<li>Anderson, S. M., Rudolph, M. C., Mcmanaman, J. L., Neville, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Key+stages+in+mammary+gland+development.+Secretory+activation+in+the+mammary+gland%3A+It%27s+not+just+about+milk+protein+synthesis%5BTitle%5D)+AND+%22Breast+Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Key stages in mammary gland development. Secretory activation in the mammary gland: It's not just about milk protein synthesis.</a> Breast Cancer Res. 9 (1), 204(2007).</li>
<li>Meier, H., Hoag, W. G., Mcburney, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chemical+characterization+of+inbred-strain+mouse+milk.+I.+Gross+composition+and+amino+acid+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Nutr%22%5BJournal%5D)">Chemical characterization of inbred-strain mouse milk. I. Gross composition and amino acid analysis.</a> J Nutr. 85 (3), 305-308 (1965).</li>
<li>Hohlbaum, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Severity+classification+of+repeated+isoflurane+anesthesia+in+c57bl%2F6jrj+mice-assessing+the+degree+of+distress%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Severity classification of repeated isoflurane anesthesia in c57bl/6jrj mice-assessing the degree of distress.</a> PLoS One. 12 (6), e0179588(2017).</li>
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<li>Chen, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+high-fat+diet+on+secreted+milk+transcriptome+in+midlactation+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol+Genomics%22%5BJournal%5D)">Effect of high-fat diet on secreted milk transcriptome in midlactation mice.</a> Physiol Genomics. 49 (12), 747-762 (2017).</li>
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<li>Falconer, D. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Milk+production+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J+Agric+Sci%22%5BJournal%5D)">Milk production in mice.</a> J Agric Sci. 37 (3), 224-235 (1947).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>Viales criogénicos de 1 mL</td><td>Corning</td><td></td><td>430658 Preferido para la recolección temprana de leche</td></tr><tr><td>Jeringa de 1 mL</td><td>Exel</td><td>26048</td><td></td></tr><tr><td>Tubo colector de microcentrífuga de 2 mL</td><td>Fisher Scientific</td><td>02-681-344</td><td>Preferido para la recolección de leche pico y tardía</td></tr><tr><td>Aguja hipodérmica de 18 G</td><td>BD PrecisionGlide</td><td>305195</td><td></td></tr><tr><td>27 g Aguja hipodérmica</td><td>BD PrecisionGlide</td><td>305109</td><td></td></tr><tr><td>Toallita de preparación con alcohol</td><td>Honeywell</td><td>154818</td><td></td></tr><tr><td>Bio-Rad Ensayo de proteínas Concentrado de reactivo de colorante</td><td>Bio-Rad</td><td>5000006</td><td></td></tr><tr><td>Albúmina sérica bovina</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A2153</td><td></td></tr><tr><td>Immobilon -P Membrana de PVDF</td><td>Immobilon</td><td>IPVH00010</td><td></td></tr><tr><td>Ketamina</td><td>Dechra</td><td>1000001250</td><td>Comprado a través de Veternarian Office&nbsp;</td></tr><tr><td>Cinta de etiquetado de laboratorio</td><td>VWR International</td><td>89097</td><td></td></tr><tr><td>Kit de ensayo de lactosa</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>MAK487</td><td></td></tr><tr><td>Mini accesorios de polipropileno con púas</td><td>Cole-Parmer Instrument Company</td><td>6365-90</td><td></td></tr><tr><td>Dieta para ratones</td><td>Lab Diet</td><td>5015</td><td></td></tr><tr><td>NuPAGE Bis-Tris Mini Geles de proteínas, 4&ndash; 12%</td><td>Invitrogen</td><td>NP0335BOX</td><td></td></tr><tr><td>Optixcare Eye Lube</td><td>Aventix</td><td>N/A</td><td>comprado a través de Veternarian Office&nbsp;</td></tr><tr><td>Oxitocina</td><td>Bimeda</td><td>1OXY015</td><td>Comprado a través de la oficina veterinaria&nbsp;</td></tr><tr><td>Puntas de pipeta P200</td> Tubo de PVC <td>Gilson</td><td>F1733001</td><td></td></tr><tr><td>: 1/8'' ID</td><td>VWR International</td><td>MFLX07407-75&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Tubo de PVC: 5/32'' ID</td><td>VWR International</td><td>MFLX07407-77</td><td></td></tr><tr><td>Tapón de tabique</td><td>Chemglass Life Sciences</td><td>CG-3022-91</td><td></td></tr><tr><td>Bomba de vacío</td><td>Drummond Scientific Co.</td><td>P-103635</td><td></td></tr><tr><td>Xilacina</td><td>Akorn Animal Health</td><td>NDC 59399-110-20</td><td>Comprado a través de la oficina de Veternarian&nbsp;</td></tr></tbody></table>

una técnica eficiente para una sola persona para el muestreo de leche de ratones de laboratorio

An Efficient Single-Person Technique for Milk Sampling from Laboratory Mice

Utilizando esta técnica, hemos muestreado con éxito suficiente leche en diferentes momentos durante una lactancia de 21 días. Consideramos que el día del parto es el día 1 post-parto (PD1), y en este trabajo se muestrearon leche en PD2 (lactancia temprana) y PD10 (lactancia pico), n = 4 cada uno. Obtuvimos cómodamente de 0,1 a 0,5 mL de leche de cada madre (Figura 1D). Para validar este método, medimos la composición bruta de macronutrientes de estas muestras de leche y comparamos las diferencias entre la leche recolectada al principio y la lactancia máxima mediante la prueba t de Student.
Encontramos que la concentración de lactosa en la leche promedió 12,3 ± 0,6 g/L en PD2 y 12,0 ± 0,9 g/L en PD10 (Tabla 1). El porcentaje de grasa láctea fue de 26,0 ± 1,0% y de 33,4 ± 2,5% en PD2 y PD10, respectivamente. La concentración de grasa fue de 174,4 ± 7,1 g/L en PD2 y significativamente mayor, 224,4 ± 17,1 g/L en PD10 (Tabla 1). El contenido promedio de proteína fue de 70,1 ± 5,2 g/L en PD2 y de 75,1 ± 2,6 g/L en PD10 (Tabla 1). Aunque el contenido total de proteína de la leche no fue diferente entre PD2 y PD10, la abundancia relativa de la proteína de la leche individual sí difirió. En concreto, la αS1-caseína y la proteína ácida de suero fueron mayores en la leche PD10 que en la leche PD2 (p &lt; 0,05), mientras que la β-caseína (p &lt; 0,05) mostró mayor abundancia en PD2 que en PD10 (Figura 2).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67669/67669fig2.jpg"> 
Figura 2: Análisis de la proteína de la leche. (A) Análisis de PAGE teñido de azul de Coomassie de la leche recolectada en PD2 y PD10. La identificación de proteínas se realizó como se describió anteriormente14. (B) Las señales de proteínas individuales se analizaron en ImageJ y se normalizaron a la proteína total teñida. Los resultados se expresaron como el promedio con barras de error estándar y puntos de datos individuales como puntos. La abundancia promedio de cada proteína en PD2 y PD10 se comparó mediante una prueba t de Student de dos colas. *p &lt; 0,05, n = 4. Abreviaturas: PAGE = electroforesis en gel de poliacrilamida; PDn = día posterior a la entrega n. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67669/67669fig1large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td colspan="2"></td>
			<td>Promedio</td>
			<td>SEM</td>
			<td>Valor p</td>
		</tr>
		<tr>
			<td rowspan="2">Lactosa (g/L)</td>
			<td>PD2</td>
			<td>12.3</td>
			<td>0.6</td>
			<td rowspan="2">0.75</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PD10</td>
			<td>12.0</td>
			<td>0.9</td>
		</tr>
		<tr>
			<td rowspan="2">Gordo (g/L)</td>
			<td>PD2</td>
			<td>174.4</td>
			<td>7.1</td>
			<td rowspan="2">0.04</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PD10</td>
			<td>224.4</td>
			<td>17.1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td rowspan="2">Proteína (g/L)</td>
			<td>PD2</td>
			<td>70.1</td>
			<td>5.2</td>
			<td rowspan="2">0.42</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PD10</td>
			<td>75.1</td>
			<td>2.6</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>
Tabla 1: Composición de macronutrientes de la leche recolectada en PD2 y PD10. Los resultados, expresados como el promedio y el error estándar de la media (SEM), se analizaron para examinar los efectos del día de lactancia en la composición de la leche mediante una prueba t de Student de dos colas, n = 4.

Una técnica eficiente para una sola persona para el muestreo de leche de ratones de laboratorio

Rodent models have been widely used in biology since the early 20th century to study basic physiology and biochemical mechanisms. In lactation and ...

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Research

Investigación

JoVE Journal

Biology

Biología

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