Name: Análisis comparativo del analizador fecal automático frente a la baciloscopia húmeda directa para la detección de infecciones parasitarias en muestras de heces (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2025-04-25T13:30:00.000+00:00
Duration: 4 min 57 s
Description: Aprende a utilizar el analizador fecal automático para detectar infecciones parasitarias en muestras de heces con alta sensibilidad y especificidad. Este método ofrece resultados rápidos y eficientes para laboratorios clínicos.

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Este trabajo fue financiado por la Fundación Nacional de Ciencias Naturales de China (82002235, 82302571); Fundación de Investigación Básica y Básica Aplicada de Guangdong (2024A1515011037).

Este estudio fue aprobado por el Comité de Revisión Ética del Hospital Provincial de Guangdong, Universidad Médica del Sur, Guangzhou, China (número de aprobación: KY2024-445-02). Todos los participantes firmaron un consentimiento informado por escrito antes de su inscripción. Los reactivos y equipos utilizados en el estudio se enumeran en la Tabla de Materiales.
1. Recolección de muestras
<ol>
	<li>Utilice los tubos de recolección de muestras del fabricante del analizador fecal automático, asegurándose de que estén tapados, sean herméticos, limpios, secos, no tengan fugas y tengan una abertura y un volumen adecuados para el muestreo en múltiples puntos.</li>
	<li>Seleccione la mayor cantidad posible de materia fecal anormal fresca, que contenga moco, pus o sangre, con una cantidad objetivo de aproximadamente 0,5 g. Cuando las heces sean líquidas o acuosas, utilice una pipeta desechable para recoger el volumen de muestra necesario. 
	NOTA: Se debe tener cuidado para evitar la contaminación proveniente de todas las muestras fecales ajenas al paciente. Esto incluye, entre otros, heces procedentes de enemas o laxantes a base de aceite, muestras procedentes de orinales o inodoros, heces contaminadas por plantas, tierra, aguas residuales, desinfectantes, detergentes, orina, sangre menstrual o leucorrea.</li>
</ol>
2. Métodos de pruebas en heces
<ol>
	<li>Método de microscopía directa con frotis húmedo10,11
	<ol>
		<li>Aplique 1-2 gotas de solución salina sobre un portaobjetos limpio.</li>
		<li>Tome una pequeña muestra del área anormal o de múltiples áreas de las heces para extenderla.</li>
		<li>Extienda la muestra uniformemente sobre el portaobjetos. Ajuste el grosor del frotis para asegurar la visibilidad de los detalles.</li>
		<li>Coloque un cubreobjetos sobre el frotis, evitando burbujas de aire.</li>
		<li>Examine más de 10 campos al microscopio con lente de baja magnificación (10x). Si se detectan huevos o parásitos, cambie a alta magnificación (40x) para observar la morfología con detalle. 
		NOTA: Se recomienda examinar la lámina con un recorrido en forma de 'almenas' a baja magnificación para minimizar el riesgo de omitir hallazgos.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Analizador Fecal Automático (Figura 3)
	<ol>
		<li>Encienda la computadora y el analizador, haga clic para iniciar el software, ingrese el nombre de usuario y la contraseña para iniciar sesión, y espere a que el instrumento realice una verificación automática.</li>
		<li>Recolecte heces adecuadas utilizando el tubo de recolección de muestra apropiado. 
		NOTA: La muestra preferida consiste en heces anormales frescas que contengan moco, pus o sangre, con un peso aproximado de 0,5 g.</li>
		<li>Coloque el tubo de recolección de muestra en el portamuestras del analizador, coloque la bandeja en la entrada automática de muestras y haga clic en Iniciar para la primera prueba tras la verificación automática. 
		NOTA: Las pruebas subsiguientes serán detectadas y realizadas automáticamente por el instrumento. El robot del instrumento tomará fotografías de la muestra para documentación.</li>
		<li>Agregue 5 mL de diluyente al tubo de muestra, mezcle bien mediante mezcla neumática y deje reposar la muestra antes del análisis. 
		NOTA: El tubo de recolección de la muestra está revestido con un filtro especial para eliminar residuos sin significado patológico, como grandes cantidades de fibras vegetales, semillas y residuos de alimentos no digeridos.</li>
		<li>Deje que la muestra fluya hacia la cámara de conteo para el análisis, donde el analizador capturará imágenes microscópicas de alta resolución y el software procesará y reconocerá dichas imágenes.</li>
		<li>Cambie a la interfaz de Resultado, revise las imágenes del análisis y envíe el resultado al Sistema de Gestión de Información de Laboratorio (LIS) o imprímalo.</li>
		<li>Haga clic en Detener para finalizar la prueba.</li>
		<li>Seleccione Enjuagar y Apagar.</li>
		<li>Cargue la bandeja del líquido limpiador concentrado. El instrumento realizará automáticamente el enjuague y se apagará.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
<img alt="Flujo de trabajo del analizador de laboratorio; configuración del análisis por microscopía; diagrama; procesamiento de muestras; integración de software." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67706/67706fig03v2.jpg" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="Figure 3"> 
Figura 3: Flujo de trabajo del sistema automatizado de análisis fecal. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67706/67706fig03large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
3. Evaluación metodológica
<ol>
	<li>Cálculo del tiempo de detección 
	NOTA: Los tiempos de detección se calcularon registrando la hora de inicio y finalización de cada procedimiento de prueba. Los resultados de las pruebas se compararon analizando la sensibilidad y especificidad de cada método para detectar parásitos.
	<ol>
		<li>Método de microscopía directa con frotis húmedo
		<ol>
			<li>Para cada muestra fecal, mida el tiempo necesario para tomar una cantidad de heces del tamaño de un grano de arroz y extenderlas uniformemente sobre un portaobjetos de vidrio.</li>
			<li>Mida el tiempo necesario para leer los resultados de cada participante.</li>
			<li>Sumar los tiempos de extensión y lectura para cada participante.</li>
			<li>Multiplicar la suma del paso 3.1.1.3 por el número de participantes para obtener el tiempo total de prueba para el método de microscopía directa con frotis húmedo (T1).</li>
			<li>Dividir T1 del paso 3.1.1.4 por el número de muestras analizadas para obtener el tiempo promedio de prueba para el método de microscopía directa con frotis húmedo (t1).</li>
		</ol>
		</li>
		<li>El analizador fecal automático (informe de IA) 
		NOTA: El proceso puede realizarse por una sola persona.
		<ol>
			<li>Mida el tiempo de prueba del analizador fecal automático para cada muestra (T2).</li>
			<li>Divida T2 por el número de muestras analizadas para obtener el tiempo promedio de prueba para el analizador fecal automático (informe de IA) (t2).</li>
		</ol>
		</li>
		<li>El analizador fecal automático (auditoría por usuario)
		<ol>
			<li>Mida el tiempo de prueba del analizador fecal automático para cada muestra (véase el paso 3.1.2).</li>
			<li>Mida el tiempo de revisión manual de imágenes para cada muestra. Inicie el cronómetro (reloj manual o digital) tan pronto como comience la revisión de las imágenes capturadas por el analizador fecal automático de una muestra. Examine cuidadosamente las imágenes para identificar componentes relevantes o anomalías. Detenga el cronómetro una vez finalizada la revisión de esa muestra, anote el tiempo empleado en cada revisión y registre los datos en una hoja de cálculo para su posterior análisis.</li>
			<li>Sumar el tiempo de prueba del analizador fecal automático y el tiempo de revisión manual de imágenes para cada muestra.</li>
			<li>Multiplicar la suma del paso 3.1.3.3 por el número de participantes para obtener el tiempo total de prueba para el analizador fecal automático (auditoría por usuario) (T3).</li>
			<li>Divida T3 por el número de muestras analizadas para obtener el tiempo promedio de prueba para el analizador fecal automático (auditoría por usuario) (t3).</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Comparación de los resultados de las pruebas 
	NOTA: El desempeño del informe generado por IA del analizador fecal automático y los resultados de la auditoría por usuario se evaluaron utilizando el método de frotis húmedo directo como referencia.
	<ol>
		<li>Recopile los resultados del método de microscopía directa con frotis húmedo, que servirá como referencia.</li>
		<li>Recopile los resultados del informe generado por IA del analizador fecal automático.</li>
		<li>Recopile los resultados de la auditoría por usuario del analizador fecal automático.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Calcular las métricas de evaluación.
	<ol>
		<li>Considere una muestra como Verdadero Positivo (VP) cuando los resultados del analizador fecal automático (informe de IA o auditoría por usuario) y el método de microscopía directa con frotis húmedo indiquen ambos la presencia del analito objetivo.</li>
		<li>Considere una muestra como Verdadero Negativo (VN) cuando tanto los resultados del analizador fecal automático (informe de IA o auditoría por usuario) como el método de microscopía directa con frotis húmedo indiquen la ausencia del analito objetivo.</li>
		<li>Considere una muestra como Falso Positivo (FP) cuando el informe de IA o la auditoría por usuario del analizador fecal automático indique la presencia del analito objetivo, pero el método de microscopía directa con frotis húmedo no confirme su presencia.</li>
		<li>Considere una muestra como Falso Negativo (FN) cuando el informe de IA o la auditoría por usuario del analizador fecal automático indique la ausencia del analito objetivo, mientras que el método de microscopía directa con frotis húmedo detecte efectivamente su presencia.</li>
		<li>Calcule la Especificidad de la siguiente manera: 
		​Especificidad = Verdaderos Negativos (VN) / (Verdaderos Negativos + Falsos Positivos)</li>
		<li>Calcule la Sensibilidad de la siguiente manera. 
		​Sensibilidad = Verdaderos Positivos (VP) / (Verdaderos Positivos + Falsos Negativos)</li>
		<li>Calcule el Valor Predictivo Positivo (VPP) de la siguiente manera: 
		VPP = Verdaderos Positivos (VP) / (Verdaderos Positivos + Falsos Positivos)</li>
		<li>Calcule el Valor Predictivo Negativo (VPN) de la siguiente manera: 
		​VPN = Verdaderos Negativos (VN) / (Verdaderos Negativos + Falsos Negativos)</li>
		<li>Calcule el valor Kappa utilizando software estadístico.</li>
		<li>Calcule la Tasa de Concordancia de la siguiente manera: 
		​Tasa de Concordancia = Acuerdos (tanto el informe de IA como el de usuario coinciden con la referencia) / Muestras Totales.</li>
		<li>Calcule la tasa de detección positiva de la siguiente manera: 
		Tasa de detección positiva = Número de Positivos / Muestras Totales.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
4. Analice los resultados
<ol>
	<li>Introduzca los datos en hojas de cálculo y analícelos estadísticamente.</li>
	<li>Para datos de conteo, utilice tasas y proporciones para la descripción, y compare entre grupos mediante la prueba chi-cuadrado de dos colas emparejada.</li>
	<li>Compare los tiempos medios de detección entre los dos métodos utilizando la prueba T para muestras independientes.</li>
	<li>Evalúe la concordancia en la detección de especies de parásitos entre las técnicas mediante el coeficiente de acuerdo Kappa (κ).</li>
	<li>Considere que P &lt; 0,05 es estadísticamente significativo.</li>
</ol>

<ol><li>Yu, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Report+on+the+first+nationwide+survey+of+the+distribution+of+human+parasites+in+China.+1.+Regional+distribution+of+parasite+species%5BTitle%5D)+AND+%22Zhongguo+Ji+Sheng+Chong+Xue+Yu+Ji+Sheng+Chong+Bing+Za+Zhi%22%5BJournal%5D)">Report on the first nationwide survey of the distribution of human parasites in China. 1. Regional distribution of parasite species.</a> Zhongguo Ji Sheng Chong Xue Yu Ji Sheng Chong Bing Za Zhi. 12 (4), 241-247 (1994).</li>
<li>Coordinating Office of the National Survey on the Important Human Parasitic Diseases. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+national+survey+on+current+status+of+the+important+parasitic+diseases+in+human+population%5BTitle%5D)+AND+%22Zhongguo+Ji+Sheng+Chong+Xue+Yu+Ji+Sheng+Chong+Bing+Za+Zhi%22%5BJournal%5D)">A national survey on current status of the important parasitic diseases in human population.</a> Zhongguo Ji Sheng Chong Xue Yu Ji Sheng Chong Bing Za Zhi. 23 (5), 332-340 (2005).</li>
<li>Yindan, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((National+survey+on+the+current+status+of+important+human+parasitic+diseases+in+China+in+2015%5BTitle%5D)+AND+%22Chinese+Journal+of+Parasitology+and+Parasitic+Diseases%22%5BJournal%5D)">National survey on the current status of important human parasitic diseases in China in 2015.</a> Chinese Journal of Parasitology and Parasitic Diseases. 38 (1), 5-16 (2020).</li>
<li>Mengran, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+survey+of+epidemic+status+of+principal+human+parasites+in+Guangdong+Province+in+2015%5BTitle%5D)+AND+%22Chinese+Journal+of+Endemiology%22%5BJournal%5D)">A survey of epidemic status of principal human parasites in Guangdong Province in 2015.</a> Chinese Journal of Endemiology. 37 (2), 144-148 (2018).</li>
<li>Pacheco, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Specific+IgG+and+IgA+antibody+reactivities+in+sera+of+children+by+enzyme-linked+immunoassay+and+comparison+with+Giardia+duodenalis+diagnosis+in+feces%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Lab+Med%22%5BJournal%5D)">Specific IgG and IgA antibody reactivities in sera of children by enzyme-linked immunoassay and comparison with Giardia duodenalis diagnosis in feces.</a> Ann Lab Med. 40 (5), 382-389 (2020).</li>
<li>Rahman, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Application+of+a+loop-mediated+isothermal+amplification+%28LAMP%29+assay+targeting+cox1+gene+for+the+detection+of+Clonorchis+sinensis+in+human+fecal+samples%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Negl+Trop+Dis%22%5BJournal%5D)">Application of a loop-mediated isothermal amplification (LAMP) assay targeting cox1 gene for the detection of Clonorchis sinensis in human fecal samples.</a> PLoS Negl Trop Dis. 11 (10), e5995(2017).</li>
<li>Koontz, F., Weinstock, J. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+approach+to+stool+examination+for+parasites%5BTitle%5D)+AND+%22Gastroenterol+Clin+North+Am%22%5BJournal%5D)">The approach to stool examination for parasites.</a> Gastroenterol Clin North Am. 25 (3), 435-449 (1996).</li>
<li>Boonyong, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-throughput+detection+of+parasites+and+ova+in+stool+using+the+fully+automatic+digital+feces+analyzer%2C+orienter+model+fa280%5BTitle%5D)+AND+%22Parasit+Vectors%22%5BJournal%5D)">High-throughput detection of parasites and ova in stool using the fully automatic digital feces analyzer, orienter model fa280.</a> Parasit Vectors. 17 (1), 13(2024).</li>
<li>Dacal, E., Köster, P. C., Carmena, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diagn%C3%B3stico+molecular+de+parasitosis+intestinales%5BTitle%5D)+AND+%22Enferm+Infecc+Microbiol+Clin%22%5BJournal%5D)">Diagnóstico molecular de parasitosis intestinales.</a> Enferm Infecc Microbiol Clin. 38 (1), 24-31 (2020).</li>
<li>Deka, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+diagnostic+performance+of+single+and+multiple+fecal+sampling+in+the+detection+of+soil-transmitted+helminths+in+school-aged+children%5BJ%5D%5BTitle%5D)+AND+%22J+Parasit+Dis%22%5BJournal%5D)">Comparison of diagnostic performance of single and multiple fecal sampling in the detection of soil-transmitted helminths in school-aged children[J].</a> J Parasit Dis. 45 (2), 324-329 (2021).</li>
<li>Deka, S., Kalita, D., Hazarika, N. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prevalence+and+risk+factors+of+intestinal+parasitic+infection+in+under-five+children+with+malnutrition%3A+A+hospital+based+cross-sectional+study%5BTitle%5D)+AND+%22J+Family+Med+Prim+Care%22%5BJournal%5D)">Prevalence and risk factors of intestinal parasitic infection in under-five children with malnutrition: A hospital based cross-sectional study.</a> J Family Med Prim Care. 11 (6), 2794-2801 (2022).</li>
<li>Fairweather, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drug+resistance+in+liver+flukes%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Parasitol+Drugs+Drug+Resist%22%5BJournal%5D)">Drug resistance in liver flukes.</a> Int J Parasitol Drugs Drug Resist. 12, 39-59 (2020).</li>
<li>Soares, F. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detection+of+intestinal+parasites+in+human+faecal+samples+using+dissolved+air+flotation%5BTitle%5D)+AND+%22Trop+Med+Int+Health%22%5BJournal%5D)">Detection of intestinal parasites in human faecal samples using dissolved air flotation.</a> Trop Med Int Health. 27 (12), 1044-1052 (2022).</li>
</ol>

Los autores no tienen conflictos de intereses que declarar.

Las enfermedades parasitarias representan un importante problema de salud pública mundial12, particularmente en los países en desarrollo, donde conducen a problemas de salud como desnutrición, retraso en el crecimiento, anemia y obstrucción biliar13, y también están relacionadas con un desarrollo socioeconómico y una educación inadecuados. Las pruebas fecales para detectar parásitos se han convertido en una parte rutinaria de la práctica clínica, y la precisión, la velocida...

A nivel mundial, las enfermedades parasitarias intestinales persisten como un problema de salud pública importante, predominantemente en naciones en desarrollo. Los datos históricos de la Comisión de Salud y Bienestar de la República Popular de China revelan una marcada disminución en las tasas de infección, que pasaron del 62,63 % en 1992 al 5,96 % en 20151,2,3. A pesar de su drástica disminución1, con una prevalencia nacional ponderada del 0,47 % y un estimado de 5,98 millones de individuos infectados3, la prevalencia de la infección por Clonorchis sinensis en la población de Guangdong sigue siendo notablemente alta, alcanzando el 4,90 %4. Regiones específicas como Guangdong aún presentan tasas más elevadas de infección por C. sinensis, lo que subraya la necesidad de métodos diagnósticos precisos.
El diagnóstico de enfermedades parasitarias puede lograrse mediante examen microscópico, imágenes médicas, análisis serológicos y métodos moleculares. El análisis serológico mediante ensayo inmunoenzimático (ELISA) es útil para el diagnóstico de enfermedades parasitarias, pero su sensibilidad es moderada, de aproximadamente el 80%5. Las técnicas de diagnóstico basadas en biología molecular presentan alta sensibilidad y especificidad6, pero se ven limitadas por procedimientos engorrosos, que consumen mucho tiempo y por altos costos del análisis, lo que las hace inadecuadas para pruebas rutinarias a gran escala.
La detección de huevos de C. sinensis en las heces del paciente es la base para confirmar el diagnóstico. El método de frotis grueso de Kato-Katz, que busca huevos de C. sinensis, es el método clásico comúnmente utilizado para diagnosticar enfermedades parasitarias7,8. Aunque es económico, es un procedimiento lento, intensivo en mano de obra e inadecuado para la práctica clínica ante un alto volumen de muestras que deben analizarse. Actualmente, la mayoría de los hospitales primarios emplean el método de microscopía directa en fresco. Sin embargo, este método sigue siendo lento e intensivo en mano de obra, presenta un olor fecal desagradable, es propenso a la contaminación cruzada, conlleva altos riesgos de bioseguridad y sus resultados dependen de la experiencia y diligencia del personal que realiza el análisis9.
Las técnicas diagnósticas convencionales, si bien son valiosas, enfrentan limitaciones en cuanto a sensibilidad y practicidad. Sin embargo, con los avances continuos en ciencia y tecnología, el análisis de heces se está volviendo más automatizado y estandarizado. Los instrumentos automatizados que utilizan métodos basados en imágenes digitales para detectar cuantitativamente parásitos u huevos de parásitos en heces están ganando popularidad en los laboratorios clínicos. Ofrecen ventajas como facilidad de operación, detección rápida, un entorno de trabajo limpio e higiénico, y alta sensibilidad y especificidad. El Analizador Automático de Heces utiliza tecnología de imágenes digitales para registrar observaciones microscópicas mediante la captura de una serie de fotografías digitales con baja y alta magnificación a través del microscopio y su sistema integrado de imágenes digitales. Luego, el sistema transmite estas imágenes a un sistema informático de procesamiento de datos, que las identifica y analiza según corresponda. Recientemente, hemos intentado diagnosticar un espectro de infecciones parasitarias, centrándonos en la detección de parásitos y sus huevos en muestras de heces. Las muestras positivas se identifican por la presencia de sus características morfológicas. Evaluamos el Analizador Automático de Heces para la detección de parásitos en muestras fecales y confirmamos su potencial como complemento a los métodos convencionales de microscopía. El Analizador Automático de Heces consta de una unidad principal y un software complementario que incluye varias unidades especializadas, como una unidad de muestreo automático, una unidad de muestreo por punción, una unidad de observación de características y color de la muestra, una unidad de cámara y una unidad de tarjeta de reactivo (Figura 1).
<img alt="Diagrama del analizador médico con componentes etiquetados: microscopio, escáner de códigos de barras, soporte de muestras." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67706/67706fig01.jpg" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="Figure 1"> 
Figura 1: Componentes del instrumento. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67706/67706fig01large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>
En este estudio, se evaluaron de manera doble ciega 2 305 muestras frescas de heces de pacientes hospitalizados del Hospital Popular de la Provincia de Guangdong en julio de 2024, utilizando el Analizador Fecal Automático y el método de microscopía directa en fresco (Figura 2). Un grupo realizó pruebas mediante el método de microscopía directa en fresco, mientras que el otro utilizó un Analizador Fecal Automático con un informe generado por inteligencia artificial. Tras registrar los resultados de cada grupo, un tercer grupo de investigadores revisó manualmente las imágenes capturadas por el analizador automático. Examinaron detenidamente la presencia de parásitos o huevos sospechosos, imágenes que se desviaban del análisis automático, imágenes borrosas o faltantes, y aquellas con fondos complejos que contenían residuos excesivos. Este proceso incluyó la corrección de los resultados, los cuales posteriormente se denominaron auditoría del usuario del Analizador Fecal Automático. Finalmente, una cuarta persona resumió y analizó estadísticamente los hallazgos. La eficacia de la instrumentación fecal completamente automatizada se evaluó mediante una detección doble ciega de parásitos/huevos, comparando el tiempo de detección y los resultados entre las tres metodologías.
<img alt="Diagrama del proceso de análisis de heces: microscopía frente a métodos automatizados; detecta infecciones parasitarias." class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67706/67706fig02.jpg" data-altupdatedat="1788304762000" data-alt="Figura 2"> 
Figura 2: Ilustración esquemática del plan de investigación. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67706/67706fig02large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>

<table><tbody><tr><td>Software del Analizador Automático de Heces (FA280S)</td><td>ORIENTER</td><td>v.1.028(RecoV2.9.14)</td><td>El software del sistema del Analizador Automático de Heces (FA280S)</td></tr><tr><td>Fluido de Limpieza Concentrado</td><td>ORIENTER</td><td></td><td>Adecuado para la limpieza de tuberías</td></tr><tr><td>Cubierta GLASS</td><td>SAIL BRAND</td><td></td><td>Proteja la muestra de daños y contaminación.</td></tr><tr><td>Pajita de plástico desechable</td><td>Nantong Lingke Biotechnology</td><td></td><td>Pajita de plástico desechable utilizada para la aspiración de solución salina fisiológica</td></tr><tr><td>FA280S</td><td>ORIENTER</td><td>A022201035</td><td>Analizador de heces totalmente automático Fluido</td></tr><tr><td>de lavado</td><td>ORIENTER</td><td>Q/WWT-019-2021</td><td>Tubería de lavado del analizador de heces totalmente automático producido&nbsp;</td></tr><tr><td>Microscopio</td><td>OLYMPUS</td><td>3H51278</td><td>Observación de células Portaobjetos de</td></tr><tr><td></td><td>microscopio</td><td>WS-7101</td><td>Proporcionan una superficie plana y estable para montar muestras para su examen bajo un microscopio.</td></tr><tr><td>Diluyente de muestra</td><td>ORIENTER</td><td>Sichuan Rong Maquinaria 20150025</td><td>Adecuado para la dilución de muestras de heces</td></tr><tr><td>Estante de muestras</td><td>ORIENTER</td><td></td><td>Estantes de carga</td></tr><tr><td>Tubo de muestra</td><td>ORIENTADOR Sichuan</td><td>Rong Maquinaria 20200204</td><td>Colector fecal</td></tr><tr><td>Inyección de Chloeide de sodio</td><td>Guangdong Daxiang Pharmaceutical Co.</td><td>H14020786</td><td>Dilución Software</td></tr><tr><td>estadístico SPSS</td><td>IBM</td><td>SPSS Statistics 22.0</td><td>Adecuado para una variedad de tareas de investigación y análisis</td></tr><tr><td>Palo</td><td></td><td></td> de madera <td>Un palo de madera desechable que se utiliza para recoger una cantidad adecuada de muestra fecal.</td></tr></tbody></table>

análisis comparativo del analizador fecal automático frente a la baciloscopia húmeda directa para la detección de infecciones parasitarias en muestras de heces

Comparative Analysis of Automatic Fecal Analyzer versus Direct Wet Smear Microscopy for Detecting Parasitic Infections in Stool Samples

Con el desarrollo socioeconómico, la prevalencia de enfermedades parasitarias intestinales ha disminuido significativamente año tras año. Sin embargo, las infecciones parasitarias siguen siendo un importante problema de salud pública a nivel mundial, especialmente en los países y regiones en desarrollo. El diagnóstico y el tratamiento oportunos son cruciales para controlar la propagación de estas enfermedades. El método tradicional de microscopía directa de frotis húmedo, aunque ampliamente utilizado, es laborioso, propenso a la contaminación y depende de las habilidades del técnico. Este documento presenta un analizador fecal automático, que automatiza el procesamiento de muestras de heces, ofreciendo ventajas sobre el método tradicional de microscopía de frotis húmedo directo, como la facilidad de operación, la detección rápida, un entorno de trabajo limpio e higiénico, y una alta sensibilidad y especificidad, mejorando así la eficiencia y precisión del diagnóstico.
Comparamos tres métodos diferentes para el análisis fecal: método de microscopía de frotis húmedo directo, analizador fecal automático (informe AI) y analizador fecal automático (auditoría de usuario). El informe de IA utiliza análisis de imágenes automatizados y algoritmos de aprendizaje automático para identificar componentes como parásitos y huevos en muestras fecales. Este método puede procesar un gran número de muestras rápidamente, lo que aumenta la eficiencia. La auditoría de usuario también utiliza un analizador fecal automático, pero incluye un paso adicional de auditoría de usuario. Técnicos experimentados revisan el informe de IA para mejorar la precisión y fiabilidad de los resultados. El analizador demostró una sensibilidad del 84,31 % para los informes de IA y del 94,12 % para las auditorías de usuarios, junto con una especificidad del 98,71 % para los informes de IA y del 99,69 % para las auditorías de usuarios, lo que lo convierte en una herramienta inestimable para el diagnóstico clínico y el tratamiento de infecciones parasitarias.

Comparación de los tiempos de detección entre los tres métodos de detección 
El tiempo medio de detección fue de 1,55 min por persona por muestra para el método de microscopía directa en fresco, 1,30 min por persona por muestra para el analizador fecal automático (informe de IA) y 1,47 min por persona por muestra para el analizador fecal automático (auditoría por usuario). El método de microscopía directa en fresco requirió 1,1 veces más tiempo en comparación con el analizador fecal automático (inform...

Las infecciones parasitarias plantean un importante desafío de salud pública, especialmente en los países y regiones en desarrollo. En este estudio se compara un analizador automático de heces para evaluar su eficacia diagnóstica con la del método tradicional de microscopía directa de frotis húmedo.

Análisis comparativo del analizador fecal automático frente a la baciloscopia húmeda directa para la detección de infecciones parasitarias en muestras de heces

With socio-economic development, the prevalence of intestinal parasitic diseases has significantly decreased year by year. However, parasitic infections ...

comparative-analysis-automatic-fecal-analyzer-versus-direct-wet-smear

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Este artículo describe los diversos procedimientos de selección para las ratas y ratones para detectar endo-o ectoparasitismo. Varios ensayos de diagnóstico se ha demostrado, tanto las que son adecuadas para su uso en animales vivos y los que se utilizan después de la eutanasia del animal. Fotografías para ayudar en la identificación de los parásitos de ratas y ratones se incluirán.

El diagnóstico de ecto y endoparásitos en ratas y ratones de laboratorio

La infección crónica por helmintos transmitidos por el suelo (STHS) provoca malabsorción, retraso del crecimiento y la emaciación en el niño en crecimiento. Por lo tanto, es plausible que estas infecciones también reducen la aptitud física de los niños. A continuación, visualizamos dos técnicas para el diagnóstico de STHS y la prueba de lanzadera de 20 metros de largo para la evaluación de la aptitud física de los niños.

La determinación de helmintos transmitidos por el suelo el estado de infección y estado físico de los niños en edad escolar

Este protocolo se describe el uso de un flujo tangencial de fibra hueca sistema de ultrafiltración concentración de la muestra y una disociación calor como pasos alternativos para la detección de vías...

Una modificación de la EPA Método 1623 que utiliza el flujo tangencial de fibra hueca de ultrafiltración y la Plaza de calor de disociación para detectar a base de agua<em&gt; Cryptosporidium</em&gt; Y<em&gt; Esp.</em

Este video muestra un ensayo de fagocitosis basado en citometría de flujo que involucra eritrocitos infectados con Plasmodium falciparum marcados y opsonizados por monocitos. La citometría de flujo identifica la fluorescencia en los monocitos, lo que confirma la identificación exitosa de eritrocitos opsonizados a través de la fagocitosis.

Un ensayo para cuantificar la fagocitosis mediada por anticuerpos de eritrocitos infectados por parásitos

Aquí, presentamos un protocolo para la detección y cuantificación de Plasmodium falciparum en acuosas rojo sangre células infectadas usando un espectrómetro de infrarrojos reflexión total atenuada y análisis de datos multivariantes.

Detección y cuantificación de Plasmodium falciparum en acuosa glóbulos rojos por espectroscopia infrarroja de atenuada Total reflexión y análisis de datos multivariantes

Este manuscrito describe un detallado protocolo estandarizado de secuenciación de amplicones de rRNA 16S de alto rendimiento. El protocolo presenta un protocolo integrado, uniformado, factible y de bajo costo a partir de la recolección de muestras fecales a través de análisis de datos. Este protocolo permite el análisis de un gran número de muestras con estándares rigurosos y varios controles.

Protocolo guía para caracterización microbiana Fecal por secuencia de 16S rRNA-productos

El kit de diagnóstico de FL-DNA presentado es un método fácil de ahorrar tiempo y fácil de usar para determinar la probabilidad confiable de la presencia de lesiones por cáncer colorrectal.

Evaluación del riesgo y la prevalencia del cáncer colorrectal mediante la detección de la integridad del ADN de las heces

El objetivo general de este protocolo es proporcionar instrucciones sobre cómo medir la capacidad de los anticuerpos presentes en los sueros o plasma de individuos, expuestos naturalmente a la infección por Plasmodium falciparum, para opsonizar e inducir la fagocitosis de los eritrocitos infectados por parásitos (IE).

Medición de anticuerpos que inducen la fagocitosis adquirida naturalmente a los parásitos plasmodium falciparum mediante un ensayo basado en citometría de flujo

El ensayo estándar de alimentación por membrana (SMFA) se considera el estándar de oro para la evaluación e identificación de posibles compuestos antipalúdicos. Este sistema de alimentación artificial se utiliza para infectar mosquitos para evaluar más a fondo los efectos de tales compuestos sobre la intensidad y prevalencia del parásito Plasmodium falciparum .

Ensayo estándar de alimentación por membrana para la detección de la infección por Plasmodium falciparum en mosquitos vectores Anopheles

En este trabajo se describe el uso de un método de flotación para identificar Toxocara canis y Ancylostoma spp. detectados en muestras fecales colectadas de perros en México de 2017 a 2021 en condiciones de campo.

Un método simple de flotación fecal para diagnosticar nematodos zoonóticos en condiciones de campo y laboratorio

Aprende a utilizar el analizador fecal automático para detectar infecciones parasitarias en muestras de heces con alta sensibilidad y especificidad. Este método ofrece resultados rápidos y eficientes para laboratorios clínicos.

Análisis comparativo del analizador fecal automático frente a la baciloscopia húmeda directa para la detección de infecciones parasitarias en muestras de heces (Video) | JoVE Journal

Análisis comparativo del analizador fecal automático frente a la baciloscopia húmeda directa para la detección de infecciones parasitarias en muestras de heces

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