18 de julio de 2025
Modelo murino de enfermedad hepática esteatótica asociada a disfunción metabólica (MASLD) con disfunción metabólica, cambios en la expresión génica hepática y alteraciones histopatológicas hepáticas que se asemejan a la MASLD humana, incluida la fibrosis que progresa a la fase 3 de fibrosis avanzada. Este modelo se puede utilizar en estudios de fisiopatología de MASLD y en estudios preclínicos de nuevas terapias.
En nuestra investigación, nos centramos en la enfermedad hepática estetótica asociada a disfunción metabólica, o MASLD, y específicamente en los mecanismos de acumulación de lípidos y fibrosis. Algunos de los desarrollos recientes son la transcriptómica unicelular y la transcriptómica especial, la estandarización de modelos animales de MASLD y la aprobación de semaglutida para el tratamiento de MASLD. Existen muchos modelos animales de MASLD, pero descubrimos que muchos no inducían fibrosis hepática.
Así que, para abordar ese punto, desarrollamos nuestro modelo ratón de MASLD. Nuestro modelo murino induce la MASLD con fibrosis al alimentar a ratones hiperfágicos con una dieta similar a la dieta media estadounidense. Esto causa MASLD muy similar a la enfermedad en humanos.
Nuestro método facilitará estudios sobre la fisiopatología de la MASLD y la prueba de nuevas terapias. Para empezar, obtén una sección de tejido hepático incrustada en parafina en una lámina. Para la desparafinización, sumerge la lámina en xileno o citrisolv durante cinco a quince minutos.
Luego rehidrata la sección en serie con etanol 100, 95 y 70%, seguida de agua destilada durante cinco minutos en cada una. Luego tiñe la sección con Sirius Red y deshidrata el portaobjetos. Retira una lámina a la vez de la solución limpiadora y ponla con papel de cocina para eliminar el exceso de líquido.
Añade aproximadamente entre 50 y 100 microlitros de medio de montaje a la sección. Cubre la sección con un engobe de cubierta y presiónala suavemente para eliminar las burbujas de aire. Deja que el portaobjetos se seque al aire.
Ahora, observa la sección preparada bajo un microscopio óptico con iluminación en campo brillante usando objetivos de 4x a 20x. Transfiere aproximadamente entre 500 y 1000 microlitros de homogeneado hepático a tubos centrífugos de 1,5 mililitros y añade ácido tricloroacético para alcanzar una concentración final del 12%. Vórtice brevemente el tubo para mezclar el contenido. Incuba el tubo en un baño de agua con hielo durante 30 minutos y centrívalo a 6.000 g a cuatro grados Celsius durante 10 minutos.
Luego retira el sobrenadante con una pipeta. Añade un mililitro de etanol 100% frío para lavar el pellet y sonicarlo para que se resuspenda bien. Después de centrifugar la suspensión de nuevo, aspira el sobrenadante.
Tras el tercer lavado, mantén el tubo abierto para que seque el pellet al aire durante 10 minutos o más según sea necesario. Luego añade 800 microlitros de 6 ácidos clorhídricos normales al tubo que contiene la boluleta de proteína, y resuspende la pastilla usando un sonador, como se ha demostrado antes. Transfiere la suspensión a un tubo de vidrio o vial con tapón de rosca y sella herméticamente la tapa.
Incuba el tubo en un horno a 110 grados Celsius durante unas 22 horas. Si es necesario, transfiere el contenido del vial de vidrio a un tubo de centrifugadora antes de centrifugarlo. Centrifugar la muestra hidrolizada a 16.000 g durante 10 minutos y aspirar el sobrenadante que contiene hidroxiprolina en un tubo de 1,5 mililitros.
Para la oxidación de hidroxiprolina, añadir 450 microlitros de solución de cloramina a tubos con 50 microlitros de muestra y estándares. Mezcla el contenido de los tubos con un vórtice e incuba a temperatura ambiente durante 25 minutos. Luego añade 500 microlitros del reactivo de Ehrlich a cada muestra y estándar.
Después del vórtice, incuba las muestras a 65 grados Celsius durante 20 minutos en una incubadora. Tras la incubación, deja que los tubos se enfríen hasta temperatura ambiente y observa el color final de las muestras. Finalmente, mide la absorbancia de muestras y estándares usando un espectrofotómetro a una longitud de onda de 550 nanómetros.
La tinción de colágeno del tejido hepático con Rojo Picro Sirius, observada con iluminación de campo brillante, mostró rojo colágeno con fondo naranja claro o amarillo. Se tintó la deposición de colágeno correspondiente a fibrosis, así como el colágeno en las paredes de los vasos sanguíneos, el hilo y la cápsula hepática. La microscopía de luz polarizada reveló fibras de colágeno birrefringentes distintas sobre un fondo oscuro, mejorando la visualización de la fibrosis.
La cuantificación del área positiva de colágeno hepático en ratones amarillos de agutí alimentados con dieta alta en grasas y fructosa, o HFFD, mostró una fibrosis significativamente mayor en comparación con ratones control salvajes alimentados con dieta baja en grasa y fructosa. La cuantificación del contenido hepático de hidroxiprolina reveló un nivel significativamente mayor en ratones amarillos de agutí alimentados con dieta HFFD en comparación con los ratones control tras 16 semanas de dieta, confirmando un aumento en la deposición de colágeno en hígados fibróticos.
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Este estudio presenta un modelo murino de enfermedad hepática esteatósica asociada a disfunción metabólica (MASLD) que imita de cerca la MASLD humana, incluida la progresión hacia fibrosis avanzada. El modelo es fundamental para investigar la fisiopatología de la MASLD y probar nuevos enfoques terapéuticos.
Los modelos preclínicos robustos que reproducen la enfermedad hepática esteatósica asociada a disfunción metabólica (MASLD) humana con fibrosis son esenciales para el descubrimiento traslacional de fármacos y la reducción de riesgos mecanicistas. Este modelo de ratón permite la evaluación cuantitativa de la progresión de la fibrosis y de la disfunción metabólica, lo que respalda la confianza predictiva en la evaluación terapéutica en fases tempranas. Su alineación con la patología de la enfermedad humana mejora la selección de carteras y las decisiones de avance ajustadas al riesgo en las líneas de desarrollo de enfermedades metabólicas.
Este modelo conecta el descubrimiento inicial, la identificación de compuestos activos y la validación preclínica de terapias para la DMAFL al proporcionar puntos finales cuantitativos y relevantes para la enfermedad.