Name: Estudio comparativo sobre el contenido de polisacáridos y las actividades antioxidantes de Hippophae rhamnoides subsp. sinensis e Hippophae gyantsensis (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2025-08-15T14:30:00.000+00:00
Duration: 10 min 3 s
Description: Aprende a comparar el contenido de polisacáridos y la actividad antioxidante entre Hippophae rhamnoides subsp. sinensis e Hippophae gyantsensis mediante extracción con agua caliente y colorimetría fenol-azufre.

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1. Muestras y materiales
<ol>
	<li>Recolecte muestras de espino amarillo de diferentes hipopótamos de la meseta Qinghai-Xizang. NOTA: Las muestras fueron identificadas por el profesor asociado Yue Liu de la Universidad de Medicina Tradicional China de Chengdu. Los especímenes de cupones se depositaron en la Escuela de Medicina Étnica de la Universidad de Medicina Tradicional China de Chengdu. La información de muestreo se muestra en la Tabla 1. Los detalles de los reactivos y equipos utilizados en este estudio se enumeran en la Tabla de materiales.</li>
	<li>Secar las muestras en un horno a 40 °C durante 72 h.</li>
	<li>Muele 20 g de cada muestra de espino amarillo hasta convertirla en polvo y pásala por un colador No. 3. Procese cada muestra con tres réplicas paralelas. Continúe triturando las muestras que no pasaron por el tamiz, luego tamícelas hasta que todas hayan sido tamizadas.</li>
	<li>Almacene las muestras a -20 °C para estudios de seguimiento.</li>
</ol>
2. Extracción de polisacáridos de espino amarillo
NOTA: Este estudio adoptó el método de extracción previamente establecido para el espino amarillo con algunas modificaciones para obtener polisacáridos30.
<ol>
	<li>Pesar 5,0 g de polvo de muestra de espino amarillo y colocarlo en un matraz de fondo redondo de 250 ml. Añadir 50 ml de etanol anhidro al polvo y remojarlo a temperatura ambiente (RT; 25 °C) durante 24 h para eliminar los componentes lipofílicos. Procese cada muestra con tres réplicas paralelas.</li>
	<li>Filtre el polvo de muestra, que se ha remojado durante la noche, utilizando un embudo Buchner, luego deseche el filtrado para obtener el residuo del filtro. Lave el residuo del filtro tres veces con 50 ml de agua desionizada y séquelo a un peso constante a 40 °C.</li>
	<li>Transfiera el residuo del filtro desgrasado a un matraz seco de fondo redondo de 250 ml, agregue 150 ml de agua desionizada en una proporción sólido: líquido de 1:30 (g / ml) y realice la extracción de reflujo en un baño de agua a 80 ° C dos veces durante 2 h cada vez. Separe el filtrado para obtener la solución cruda de polisacárido de espino amarillo.</li>
	<li>Concentre el extracto con un evaporador rotativo a 50 °C durante 1,5 h. Guarde la solución concentrada en un refrigerador a 4 ° C para su uso posterior.</li>
	<li>Agregue el reactivo Sevage (CHCl3:C4H9OH = 4:1, v:v) a la solución de polisacárido crudo en una relación de volumen de solución de polisacárido crudo de reactivo Sevage de 1:4. Revuelva la mezcla con un agitador magnético a una velocidad de 1050 rpm durante 20 min.</li>
	<li>Transfiera el líquido a un tubo de centrífuga de 50 ml y centríquelo a 4000 × g durante 15 min, luego recoja el sobrenadante. Repita la operación anterior tres veces hasta que no aparezca ningún precipitado floculante blanco en la interfaz entre las dos fases.</li>
	<li>Concentre el extracto de polisacárido de espino amarillo después de la eliminación de proteínas. Agregue etanol anhidro en una proporción de volumen de 1:3 para la precipitación de etanol anhidro y coloque la mezcla a 4 ° C durante la noche.</li>
	<li>Retire la capa superior de etanol anhidro, transfiera la mezcla a un tubo de centrífuga de 50 ml y centríquela a 4000 × g durante 15 min para obtener el precipitado. Liofilice el precipitado para obtener polisacáridos totales.</li>
	<li>Calcule los rendimientos totales de polisacáridos utilizando la ecuación (1) a continuación: 
	<img alt="Equation 1" src="/files/ftp_upload/68855/68855eq01.jpg" style="margin: auto;"> NOTA: En la Ecuación (1), m representa el peso (g) de los polisacáridos de espino amarillo y M representa la masa (g) de la muestra de espino amarillo.</li>
</ol>
3. Determinación del contenido de polisacáridos
<ol>
	<li>Preparación de la solución<ol>
		<li>Preparación de la solución reactiva de fenol<ol>
			<li>Pesar con precisión 3 g de fenol y transferirlo a un matraz aforado marrón. Agregue 50 ml de agua desionizada para disolver el fenol.</li>
			<li>Agita bien la mezcla hasta que esté homogénea. Etiquete el matraz y guárdelo para su uso posterior.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Preparación de la solución patrón de glucosa<ol>
			<li>Pese con precisión 10 mg de glucosa anhidra y transfiérala a un matraz aforado de 10 ml. Agregue agua desionizada para disolver la glucosa y agite bien la mezcla.</li>
			<li>Diluir la mezcla al volumen deseado con agua desionizada para obtener una solución estándar de glucosa.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Preparación de la solución de muestra de prueba.<ol>
			<li>Pese con precisión 5 mg de polisacáridos de espino amarillo liofilizados (ZG1-ZG5 y JZ1-JZ5) en matraces volumétricos (n = 10). Agregue agua desionizada a cada matraz hasta un volumen final de 50 ml.</li>
			<li>Sonicar la mezcla durante 20 min hasta que los polisacáridos se hayan disuelto por completo. Procese cada muestra con tres réplicas paralelas.</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Construcción de la curva estándar NOTA: En el método de ácido sulfúrico de fenol, los polisacáridos reaccionan con ácido sulfúrico concentrado para generar derivados furfurales, que luego se condensan con fenol para formar un compuesto amarillo anaranjado. La longitud de onda de absorción máxima de este compuesto es de aproximadamente 490 nm. Por lo tanto, la longitud de onda de detección para este experimento se estableció en 490 nm22.<ol>
		<li>Diluir la solución de glucosa estándar con agua desionizada hasta una concentración de 0,1 mg/ml. Con una micropipeta, transfiera cuidadosamente 200, 300, 400, 500, 600 y 700 μL de la solución estándar de glucosa en seis tubos de ensayo limpios separados. Agregue agua pura hasta un volumen total de 1.0 ml, luego mezcle suavemente cada solución para asegurar una dilución uniforme.</li>
		<li>Agregue 1.0 ml de solución fenólica al 6% y 5.0 ml de ácido sulfúrico a los tubos de ensayo mencionados anteriormente. Mezclar bien, enfriar y dejar reposar a temperatura derecha durante 30 min. NOTA: El fenol es un compuesto químico tóxico y el ácido sulfúrico concentrado es corrosivo. Se deben usar guantes al preparar soluciones de fenol y ácido sulfúrico, y el procedimiento debe realizarse dentro de una campana extractora.</li>
		<li>Transfiera las muestras antes mencionadas a cubetas y use agua pura como espacio en blanco en lugar de la muestra. Mida su absorbancia a 490 nm con un espectrofotómetro UV-Vis y tres réplicas.</li>
		<li>Grafique la curva estándar con las concentraciones de glucosa como eje x y los valores de absorbancia como eje y. Obtener la ecuación de regresión y calcular el coeficiente de correlación (R²). NOTA: El espectrofotómetro UV-Vis debe precalentarse con media hora de antelación. Al medir la absorbancia en este paso, la absorbancia debe estar entre 0,2 y 0,8. Por lo tanto, es necesario cuantificar la concentración de la muestra.</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Estudio metodológico<ol>
		<li>Prueba de precisión:<ol>
			<li>Tome JZ2 y prepare la solución de prueba de acuerdo con el método descrito en el paso 3.1.3. Realice la colorimetría del ácido sulfúrico fenol siguiendo el método descrito en el paso 3.2.2.</li>
			<li>A continuación, determinar la absorbancia de acuerdo con el procedimiento descrito en el paso 3.2.3. Repita este procedimiento seis veces y calcule la desviación estándar relativa (RSD).</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Prueba de estabilidad:<ol>
			<li>Prepare la solución de muestra JZ2 siguiendo el método descrito en el paso 3.1.3. A las 0, 2, 4, 6, 8 y 10 h después de la preparación de la muestra, realice la colorimetría de ácido fenol-sulfúrico de acuerdo con el método especificado en el paso 3.2.2.</li>
			<li>A continuación, determine la absorbancia siguiendo el procedimiento descrito en el paso 3.2.3 y calcule la RSD.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Prueba de repetibilidad:<ol>
			<li>Prepare la solución de muestra JZ2 siguiendo el método descrito en el paso 3.1.3. Prepare seis réplicas en paralelo. Realizar la colorimetría del ácido sulfúrico fenol de acuerdo con el método especificado en el paso 3.2.2.</li>
			<li>Después, determine la absorbancia siguiendo el procedimiento descrito en el paso 3.2.3 y calcule la RSD.</li>
		</ol>
		</li>
		<li>Prueba de recuperación:<ol>
			<li>Tome JZ2 y prepare la solución de prueba de acuerdo con el método descrito en el paso 3.1.3. Prepare nueve réplicas en paralelo. Agregue las soluciones de referencia equivalentes al 80%, 100% y 120% del contenido total de polisacáridos en la muestra y prepare tres muestras paralelas.</li>
			<li>Realice la colorimetría de ácido fenol-sulfúrico de acuerdo con el método especificado en el paso 3.2.2. A continuación, se determina la absorbancia siguiendo el procedimiento descrito en el paso 3.2.3 y se calcula la tasa de recuperación utilizando la ecuación (2). 
			<img alt="Equation 2" src="/files/ftp_upload/68855/68855eq02.jpg" style="margin: auto;"> NOTA: En la ecuación (2), A representa la cantidad de glucosa en la solución de muestra de espino amarillo, B representa la cantidad de glucosa agregada y C representa el valor medido de la solución que contiene glucosa y la solución de muestra de espino amarillo.</li>
		</ol>
		</li>
	</ol>
	</li>
	<li>Determinación del contenido<ol>
		<li>Preparar la solución de muestra como se describe en el paso 3.1.3 y realizar la colorimetría del ácido fenol-sulfúrico de acuerdo con el método especificado en el paso 3.2.2.</li>
		<li>Determine la absorbancia siguiendo el procedimiento descrito en el paso 3.2.3 y calcule el contenido de polisacáridos utilizando el método de la curva estándar. Realice estas operaciones en paralelo tres veces para cada muestra.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>
4. Actividad de eliminación de radicales DPPH 31,32
<ol>
	<li>Pese con precisión 2,7 mg de DPPH en un matraz aforado vacío de 50 ml. Disuélvalo en 50 ml de etanol anhidro para preparar una solución madre DPPH con una concentración de 0,054 mg/ml y obtener la solución de trabajo DPPH. NOTA: La solución de DPPH debe almacenarse en la oscuridad.</li>
	<li>Pese con precisión 5 mg de vitamina C (Vc) en un matraz aforado vacío de 10 ml y disuélvalo en 10 ml de agua desionizada para preparar una solución de Vc con una concentración de 0,5 mg / ml. Diluirlo sucesivamente para preparar soluciones de prueba de Vc con concentraciones de 0,5, 0,125, 0,03125, 0,0078125 y 0,001953 mg/ml.</li>
	<li>Pesar con precisión 5 mg de cada polisacárido de espino amarillo (ZG1-ZG5 y JZ1-JZ5). Disuelva cada muestra en 10 ml de agua desionizada para preparar soluciones de muestra de polisacáridos de espino amarillo con una concentración de 0,5 mg/ml. Diluya las soluciones anteriores sucesivamente para preparar soluciones de prueba de polisacáridos de espino amarillo con concentraciones de 0,5, 0,125, 0,03125, 0,0078125 y 0,001953 mg/ml.</li>
	<li>Utilizando la solución DPPH como sustrato, prepare los siguientes grupos en una placa de 96 pocillos: grupo de control negativo A0 (150 μL de agua y 50 μL de solución DPPH), grupo de muestra A1 (150 μL de muestra o solución de Vc y 50 μL de solución de DPPH) y grupo de control de muestra A2 (150 μL de muestra y 50 μL de etanol anhidro). Realice este procedimiento por triplicado.</li>
	<li>Deje que la reacción continúe durante 30 minutos en la oscuridad. A continuación, mida la absorbancia a 517 nm. Repita el experimento tres veces y calcule la tasa de eliminación de radicales libres DPPH usando la Ecuación (3). NOTA: La absorbancia de la solución DPPH debe mantenerse a 0,7 ± 0,02. Las concentraciones excesivamente altas y bajas pueden conducir a lecturas de absorbancia inexactas, lo que afecta los resultados experimentales finales. 
	<img alt="Equation 3" src="/files/ftp_upload/68855/68855eq03.jpg" style="margin: auto;"> En la ecuación (3), A0 es la absorbancia del agua desionizada y la solución DPPH, A1 es la absorbancia de la muestra o solución Vc y DPPH, y A2 es la absorbancia de la muestra y el etanol anhidro.</li>
	<li>Cálculo de la concentración semiinhibitoria (Ic50)<ol>
		<li>Genere una tabla de datos organizada visualmente que ilustre la correlación entre las concentraciones de compuestos de prueba de reacción (0,5, 0,125, 0,03125, 0,0078125 y 0,001953 mg/ml) y sus correspondientes valores porcentuales de reacción.</li>
		<li>Utilice el ajuste de curva no lineal (con GraphPad Prism) para determinar el IC50 y el error estándar.</li>
	</ol>
	</li>
</ol>

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<li>Rumpf, J., Burger, R., Schulze, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Statistical+evaluation+of+DPPH%2C+ABTS%2C+FRAP%2C+and+Folin-Ciocalteu+assays+to+assess+the+antioxidant+capacity+of+lignins%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Biol+Macromol%22%5BJournal%5D)">Statistical evaluation of DPPH, ABTS, FRAP, and Folin-Ciocalteu assays to assess the antioxidant capacity of lignins.</a> Int J Biol Macromol. 233, 123470(2023).</li>
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<li>Li, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization%2C+antioxidant+and+immunomodulatory+activities+of+polysaccharides+from+Prunella+vulgaris+Linn%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Biol+Macromol%22%5BJournal%5D)">Characterization, antioxidant and immunomodulatory activities of polysaccharides from Prunella vulgaris Linn.</a> Int J Biol Macromol. 75, 298-305 (2015).</li>
<li>Cao, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Physicochemical+characterization%2C+potential+antioxidant+and+hypoglycemic+activity+of+polysaccharide+from+Sargassum+pallidum%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Biol+Macromol%22%5BJournal%5D)">Physicochemical characterization, potential antioxidant and hypoglycemic activity of polysaccharide from Sargassum pallidum.</a> Int J Biol Macromol. 139, 1009-1017 (2019).</li>
<li>Li, Q. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+comparison+study+on+structure-function+relationship+of+polysaccharides+obtained+from+sea+buckthorn+berries+using+different+methods%3A+antioxidant+and+bile+acid-binding+capacity%5BTitle%5D)+AND+%22Food+Sci+Hum+Wellness%22%5BJournal%5D)">A comparison study on structure-function relationship of polysaccharides obtained from sea buckthorn berries using different methods: antioxidant and bile acid-binding capacity.</a> Food Sci Hum Wellness. 13 (1), 494-505 (2024).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>Balanza analítica (con una precisión de 0,0001 g)</td><td>Instrumentos científicos Sartorius (Beijing) Co., Ltd.</td><td>BSA224S-CW</td><td></td></tr><tr><td>Balanza analítica (con una precisión de 0,00001 g)</td><td>Instrumentos científicos Sartorius (Beijing) Co., Ltd.</td><td>CPA225D</td><td></td></tr><tr><td>Centrífuga de sobremesa de baja velocidad</td><td>Shanghai Zigui Instrument Co., Ltd.</td><td>TD4K-Z</td><td></td></tr><tr><td>DPPH</td><td>Shanghai Yuanye Bio-Technology Co., Ltd.</td><td>CAS 1898-66-4</td><td></td></tr><tr><td>Etanol</td><td>Productos químicos Chengdu Kelong Co., Ltd.</td><td>CAS 64-17-5</td><td></td></tr><tr><td>Tubo EP</td><td>Hunan BKMAK Holding Co., Ltd.</td><td>BS-20-M</td><td>2 ml</td></tr><tr><td>Liofilizador</td><td>Corporación Labconco</td><td>LABCONCO</td><td></td></tr><tr><td>Glucosa anhidra</td><td>Productos químicos Chengdu Kelong Co., Ltd.</td><td>CAS 50-99-7</td><td>Estándar de referencia</td></tr><tr><td>GraphPad&nbsp; Prim 9.5.0&nbsp;</td><td>GraphPad Software</td><td>N/A</td><td>Determine el valor IC50 y el valor P.</td></tr><tr><td>Horno de secado por circulación de aire caliente</td><td>Instrumento de tecnología Yiheng de Shanghái Co., Ltd.</td><td>NB-DGG-9070A</td><td></td></tr><tr><td>Ácido L-ascórbico</td><td>Beijing Labgic Technology Co., Ltd.</td><td>CAS 50-81-7</td><td>Fármaco de control positivo</td></tr><tr><td>Lector de microplacas</td><td>Shanghai Shanpu Biotechnology Co., Ltd.</td><td>Leer máximo 1500</td><td></td></tr><tr><td>Placa de 96 pocillos</td><td>Beijing Labgic Technology Co., Ltd.</td><td>11512</td><td></td></tr><tr><td>OriginPro 2025</td><td>Laboratorio de origen</td><td>N/A</td><td>Crear un gráfico de líneas de tasa de liquidación</td></tr><tr><td>PUNTAS DE PIPETA</td><td>Beijing Labgic Technology Co., Ltd.</td><td>BS-200-T</td><td>200 &mu; L</td></tr><tr><td>PUNTAS DE PIPETA</td><td>Beijing Labgic Technology Co., Ltd.</td><td>T-1000-B</td><td>1000 &mu; L</td></tr><tr><td>Fenol</td><td>Productos químicos Chengdu Kelong Co., Ltd.</td><td>CAS 108-95-2</td><td></td></tr><tr><td>Evaporador rotativo</td><td>&nbsp; BUCHI Laboratory Equipment Trading (Shanghai) Ltd.</td><td>Buchi R-100</td><td></td></tr><tr><td>Sistema de agua pura tipo reactivo estándar</td><td>Tecnología Qingdao Flom Co., Ltd.</td><td>FBZ2001-up-p</td><td></td></tr><tr><td>Baño de agua con pantalla digital termostática</td><td>Instrumentos científicos de Guan'an (Zhejiang) Co., Ltd.</td><td>WB100-6F</td><td></td></tr><tr><td>Espectrofotómetro UV-Visible</td><td>Shanghai Mapada Instruments Co., Ltd.</td><td>V-1100D</td><td></td></tr><tr><td>Limpiador ultrasónico</td><td>Sheng Zheng ChaoJie Industrial Co., Ltd.</td><td>CJ-060SD</td><td>Limpiador ultrasónico 360 W 50 Hz</td></tr></tbody></table>

estudio comparativo sobre el contenido de polisacáridos y las actividades antioxidantes de hippophae rhamnoides subsp. sinensis e hippophae gyantsensis

Comparative Study on the Polysaccharide Contents and Antioxidant Activities of Hippophae rhamnoides subsp. sinensis and Hippophae gyantsensis

Rendimiento de polisacáridos crudos Los polisacáridos se extrajeron a través de HWE. El reflujo del baño de agua se muestra en la Figura complementaria 1. La concentración de la solución de extracto de polisacárido se ilustra en la Figura complementaria 2. El efecto de estratificación por centrifugación después de la desproteinación se presenta en la Figura complementaria 3. Los cinco lotes de H. rhamnoides subsp. sinensis tienen ren...

Estudio comparativo sobre el contenido de polisacáridos y las actividades antioxidantes de Hippophae rhamnoides subsp. sinensis e Hippophae gyantsensis

This paper reports a well-designed and in-depth comparative study on the polysaccharide yields, contents, and antioxidant activities of two Hippophae ...

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Research

Investigación

JoVE Journal

Chemistry

Química

Presentamos un protocolo para usar etanol como solvente para extraer y caracterizar propóleos verde Taiwan que exhibe actividad antibacteriana.

Extracción y análisis de propóleos verde Taiwan

Los ácidos fenólicos son fitoquímicos importantes que están presentes en los granos enteros. Poseen propiedades bioactivas como funciones protectoras antioxidantes. Este trabajo tuvo como objetivo informar sobre un método generalizado para la identificación de HPLC, la estimación del contenido fenólico total y la determinación de la capacidad antioxidante de los ácidos fenólicos en cereales y legumbres.

Un método generalizado para determinar la composición del ácido fenólico soluble libre y la capacidad antioxidante de los cereales y las legumbres

El objetivo de este protocolo es detectar metabolitos fenólicos en plasma utilizando un método de cromatografía semi-dirigida-espectrometría de masas.

Cromatografía semidirigida de ultra alto rendimiento acoplada al análisis de espectrometría de masas de metabolitos fenólicos en plasma de adultos mayores

El presente protocolo describe los pasos de purificación y los estudios posteriores de cuatro β-glucanos fúngicos diferentes como moléculas inmunomoduladoras potenciales que mejoran las propiedades antitumorales de la microglía contra las células de glioblastoma.

Aislamiento y purificación del β-glucano fúngico como estrategia de inmunoterapia para el glioblastoma

Aquí, presentamos un método de evaluación de estabilidad basado en tecnología de dispersión de luz múltiple para evaluar la estabilidad de los extractos de medicina tradicional china.

Uso de dispersión múltiple de luz para examinar la estabilidad de Phyllanthus emblica L. Extractos obtenidos con diferentes métodos de extracción

Aquí, describimos varios protocolos que apuntan a una valorización integrada de Gracilaria gracilis: recolección de especies silvestres, crecimiento interno y extracción de ingredientes bioactivos. Se evalúan los efectos antioxidantes, antimicrobianos y citotóxicos de los extractos, junto con la evaluación nutricional y de estabilidad de los alimentos enriquecidos con biomasa y pigmentos de algas marinas enteras.

Valorización del alga roja Gracilaria gracilis a través de un enfoque de biorrefinería

Este protocolo detalla la utilización de un método de extracción asistido por microondas a base de polioles para extraer compuestos fenólicos y antioxidantes naturales, lo que representa un enfoque práctico y ambientalmente sostenible para el desarrollo de extractos listos para usar.

Extracción asistida por microondas de compuestos fenólicos y antioxidantes para aplicaciones cosméticas mediante tecnología basada en polioles

Tegumento de los mamíferos contiene lípidos extraíbles con disolventes que pueden proporcionar composiciones química característica de las especies individuales. Este trabajo presenta un método de rutina para separar grandes clases de lípidos aislados de tejidos tegumentarios utilizando cromatografía en capa fina y la determinación del perfil triacilglicérido por láser de desorción / ionización por espectrometría de masas de tiempo de vuelo asistida por matriz.

Perfiles de los Contenidos triacilglicérido en Bat Tegumentario lípidos por cromatografía preparativa en capa fina y MALDI-TOF espectrometría de masas

Vigas mixtas microestructuradas (3D) en tres dimensiones se fabrican a través de la infiltración dirigida y localizada de nanocompuestos en redes de microfluidos porosas 3D. La flexibilidad de este método de fabricación permite la utilización de diferentes materiales termoendurecibles y nanocargas con el fin de lograr una variedad de 3D funcional nanocompuestos productos macroscópicas reforzados.

Fabricación de tridimensionalmente Microestructurados nanocompuestos mediante Microfluidic Infiltración

Los glucósidos de indoxilo son herramientas bien establecidas y ampliamente utilizadas para el cribado y la monitorización de la actividad enzimática. Especialmente para las estructuras de tipo glucosa, las síntesis anteriores demostraron ser desafiantes y de bajo rendimiento. Nuestro novedoso enfoque emplea ésteres de ácido indoxílico como intermediarios preciosos para producir un número considerable de glucósidos de indoxilo con buenos rendimientos.

Síntesis de indoxil-glucósidos para la detección de glucosidasa Actividades

Aprende a comparar el contenido de polisacáridos y la actividad antioxidante entre Hippophae rhamnoides subsp. sinensis e Hippophae gyantsensis mediante extracción con agua caliente y colorimetría fenol-azufre.

Estudio comparativo sobre el contenido de polisacáridos y las actividades antioxidantes de Hippophae rhamnoides subsp. sinensis e Hippophae gyantsensis (Video) | JoVE Journal

Estudio comparativo sobre el contenido de polisacáridos y las actividades antioxidantes de Hippophae rhamnoides subsp. sinensis e Hippophae gyantsensis

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