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Artículo de método

In vivo Registro de pinzas de parche de células completas de neuronas peptidérgicas hipotalámicas en larvas de pez cebra

843 visualizaciones

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DOI:

10.3791/68943

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22 de agosto de 2025

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* These authors contributed equally

En este artículo

Resumen

Este artículo presenta un protocolo para el registro in vivo de la actividad eléctrica de las neuronas peptidérgicas hipotalámicas utilizando electrofisiología de pinza de parche de células enteras en larvas intactas de pez cebra.

Resumen

El hipotálamo es una antigua región del cerebro que regula diversos aspectos de la fisiología y el comportamiento, incluidos el sueño y la vigilia, el apetito, la homeostasis energética, la ansiedad, la depresión y la interacción social. Poblaciones neuronales específicas en el hipotálamo ejercen sus efectos a través de la liberación de neurotransmisores y neuropéptidos. El registro de pinzas de parche de células completas es un enfoque indispensable para estudiar las funciones de estos factores en la transmisión sináptica y la función cerebral. Sin embargo, es un desafío acceder a las neuronas hipotalámicas para registros electrofisiológicos en mamíferos intactos debido a su ubicación en lo profundo del cerebro. Como resultado, nuestra comprensión de las propiedades intrínsecas y las funciones fisiológicas de las neuronas hipotalámicas es limitada. El pez cebra larvario es un modelo alternativo útil para estudiar las neuronas hipotalámicas debido a su cerebro vertebrado transparente y pequeño, pero bien conservado. Aquí, presentamos un protocolo para grabaciones de pinzas de parche de células enteras in vivo de neuronas hipotalámicas en larvas intactas de pez cebra. Usando esta técnica, podemos registrar las neuronas peptidérgicas en el hipotálamo, examinar las respuestas de estas neuronas a los estímulos sensoriales y explorar sus efectos en las neuronas posteriores. Esta técnica experimental proporciona un enfoque útil para estudiar las funciones fisiológicas de las neuronas neuropeptidérgicas hipotalámicas en animales intactos.

Introducción

Como modelo animal vertebrado popular, el pez cebra (Danio rerio) se usa ampliamente en la investigación en neurociencia y tiene varias ventajas1. Su complemento de genes y arquitectura cerebral está altamente conservado con los mamíferos, y tienen un rico repertorio de comportamiento, lo que los hace útiles para estudiar los mecanismos genéticos y neuronales que subyacen a comportamientos como el sueño, la ansiedad, la depresión y la interacción social 2,3,4,5,6 <....

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Protocolo

Todos los experimentos fueron aprobados por el Comité de Cuidado y Uso Institucional (IACUC) de la Universidad de Shanghai (protocolo animal YS 2025-169) y el IACUC del Instituto de Tecnología de California (protocolo animal 1836). El pez cebra de 5 a 7 días después de la fertilización (dpf) se alimentó con rotíferos y se utilizó para experimentos. En esta etapa de desarrollo, el sexo no está determinado. Para la reproducción se utilizaron peces cebra adultos sobre un fondo de nácar [mitfa(w2/w2)]24 .

1. Soluciones y recetas

  1. Prepare un medio E3 que conten....

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Resultados

En este manuscrito, presentamos una técnica mejorada de registro de pinza de parche de células enteras in vivo para investigar las neuronas hipotalámicas en el pez cebra intacto, centrándonos particularmente en las neuronas de hipocretina (Hcrt).

Como se presenta en la Figura 1, nuestra metodología permite registros electrofisiológicos directos de estas neuronas en lo profundo del cerebro en un animal intacto (Figura 1A), sup.......

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Discusión

El protocolo descrito aquí permite grabaciones de pinzas de parche de neuronas peptidérgicas en el hipotálamo larvario del pez cebra, una de las regiones cerebrales más profundas y técnicamente difíciles de acceder. Debido a la dificultad inherente de esta preparación, los registros exitosos de la pinza del parche requieren una atención meticulosa a algunos parámetros críticos, a saber, la calidad de la pipeta, la técnica de aproximación, la pureza de la solución y la salud del tejido. E.......

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Divulgaciones

Los autores declaran no tener conflictos de intereses ni nada que revelar.

Agradecimientos

Nos gustaría agradecer al Dr. Daniel Wagenaar por su ayuda en el diseño de dispositivos para experimentos optogenéticos. Este trabajo fue apoyado por subvenciones de NS122172 R35 y R34 NS126800 de los Institutos Nacionales de Salud a DAP, y el Programa de Introducción de Talentos en el Extranjero de Shanghai a R.Z.

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Materiales

Lista de materiales utilizados en este artículo
NombreEmpresaNúmero de catálogoComentarios
AmplificadorAxón700B
Capilares de vidrio de borosilicatoSutterBF100-58-10
Cámara CCDDage-MTIIR-1000 (en inglés)
Ordenadores para registros electrofisiológicosDellPrecisión 3660
DigidataAxón1440A
Jaula de FaradayHecho a medida
FórcepsF.S.T.Dumont #5
IncubadoraLonroyGZP-150B
Filtro de membranaMillipore SigmaSLGV004SL
Micro cuchilloF.S.T.10318-14
ObjetivoOlimpoMplan 5X/0.1; UMPlanFI/IR 60X/0.9w
Bomba peristálticaMás tiempoBT100-1L
Soporte para pipetasNarishigeH-7para disección
TiradorInstrumento Sutterpág. 97
Estereomicroscopio para cribado y disección fluorescenteOlimpoSZX16
EstimuladorA.M.P.IMaestro8
Micromanipulador tridimensionalInstrumento SutterMPC-325
Microscopio DIC infrarrojo verticalOlimpoBX51WI
Mesa de aislamiento de vibracionesTMC61-541-06
Monitor de vídeoSUNSPOSP-717
Baño de aguaYihengHWS-12
Traductor X-YHecho a medida

Referencias

  1. Bradbury, J. Small fish, big science. PLoS Biology. 2, e148(2004).
  2. Rihel, J., et al. Zebrafish behavioral profiling links drugs to biological targets and rest/wake regulation. Science. 327, 348-351 (2010).
  3. Oikonomou, G., Prober, D. A.

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Reimpresiones y permisos

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