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<ol><li>Balakhanlou, E., Webster, J., Borgia, M., Resnik, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Frequency+and+severity+of+phantom+limb+pain+in+veterans+with+major+upper+limb+amputation%3A+results+of+a+national+survey%5BTitle%5D)+AND+%22PM+R%22%5BJournal%5D)">Frequency and severity of phantom limb pain in veterans with major upper limb amputation: results of a national survey.</a> PM R. 13 (8), 827-835 (2021).</li>
<li>Resnik, L., Ekerholm, S., Borgia, M., Clark, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+national+study+of+veterans+with+major+upper+limb+amputation%3A+survey+methods%2C+participants%2C+and+summary+findings%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">A national study of veterans with major upper limb amputation: survey methods, participants, and summary findings.</a> PLoS One. 14 (3), e0213578(2019).</li>
<li>Ephraim, P. L., Wegener, S. T., MacKenzie, E. J., Dillingham, T. R., Pezzin, L. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phantom+pain%2C+residual+limb+pain%2C+and+back+pain+in+amputees%3A+results+of+a+national+survey%5BTitle%5D)+AND+%22Arch+Phys+Med+Rehabil%22%5BJournal%5D)">Phantom pain, residual limb pain, and back pain in amputees: results of a national survey.</a> Arch Phys Med Rehabil. 86 (10), 1910-1919 (2005).</li>
<li>R, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prosthesis+satisfaction+in+a+national+sample+of+veterans+with+upper+limb+amputation%5BTitle%5D)+AND+%22Prosthet+Orthot+Int%22%5BJournal%5D)">Prosthesis satisfaction in a national sample of veterans with upper limb amputation.</a> Prosthet Orthot Int. 44 (2), 81-91 (2020).</li>
<li>Kuiken, T. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeted+muscle+reinnervation+for+real-time+myoelectric+control+of+multifunction+artificial+arms%5BTitle%5D)+AND+%22JAMA%22%5BJournal%5D)">Targeted muscle reinnervation for real-time myoelectric control of multifunction artificial arms.</a> JAMA. 301 (6), 619-628 (2009).</li>
<li>Valerio, I. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preemptive+treatment+of+phantom+and+residual+limb+pain+with+targeted+muscle+reinnervation+at+the+time+of+major+limb+amputation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Coll+Surg%22%5BJournal%5D)">Preemptive treatment of phantom and residual limb pain with targeted muscle reinnervation at the time of major limb amputation.</a> J Am Coll Surg. 228 (3), 217-226 (2019).</li>
<li>Chang, B., Mondshine, J., Attinger, C., Kleiber, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeted+muscle+reinnervation+improves+pain+and+ambulation+outcomes+in+highly+comorbid+amputees%5BTitle%5D)+AND+%22Plast+Reconstr+Surg%22%5BJournal%5D)">Targeted muscle reinnervation improves pain and ambulation outcomes in highly comorbid amputees.</a> Plast Reconstr Surg. 148 (2), 376-386 (2021).</li>
<li>Dumanian, G. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeted+muscle+reinnervation+treats+neuroma+and+phantom+pain+in+major+limb+amputees%3A+a+randomized+clinical+trial%5BTitle%5D)+AND+%22Ann+Surg%22%5BJournal%5D)">Targeted muscle reinnervation treats neuroma and phantom pain in major limb amputees: a randomized clinical trial.</a> Ann Surg. 270 (2), 238-246 (2019).</li>
<li>Woo, S. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regenerative+peripheral+nerve+interfaces+for+the+treatment+of+postamputation+neuroma+pain%3A+a+pilot+study%5BTitle%5D)+AND+%22Plast+Reconstr+Surg+Glob+Open%22%5BJournal%5D)">Regenerative peripheral nerve interfaces for the treatment of postamputation neuroma pain: a pilot study.</a> Plast Reconstr Surg Glob Open. 4 (12), e1038(2016).</li>
<li>Dehdashtian, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sexually+dimorphic+pattern+of+pain+mitigation+following+prophylactic+regenerative+peripheral+nerve+interface+%28RPNI%29+in+a+rat+neuroma+model%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosurgery%22%5BJournal%5D)">Sexually dimorphic pattern of pain mitigation following prophylactic regenerative peripheral nerve interface (RPNI) in a rat neuroma model.</a> Neurosurgery. 93 (5), 1192-1201 (2023).</li>
<li>Senger, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+direct+comparison+of+targeted+muscle+reinnervation+and+regenerative+peripheral+nerve+interfaces+to+prevent+neuroma+pain%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosurgery%22%5BJournal%5D)">A direct comparison of targeted muscle reinnervation and regenerative peripheral nerve interfaces to prevent neuroma pain.</a> Neurosurgery. 93 (5), 1180-1191 (2023).</li>
<li>Kuniak, C. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prophylactic+regenerative+peripheral+nerve+interfaces+to+prevent+postamputation+pain%5BTitle%5D)+AND+%22Plast+Reconstr+Surg%22%5BJournal%5D)">Prophylactic regenerative peripheral nerve interfaces to prevent postamputation pain.</a> Plast Reconstr Surg. 144 (3), 421e-430e (2019).</li>
<li>Decosterd, I., Woolf, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spared+nerve+injury%3A+an+animal+model+of+persistent+peripheral+neuropathic+pain%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">Spared nerve injury: an animal model of persistent peripheral neuropathic pain.</a> Pain. 87 (2), 149-158 (2000).</li>
<li>Hu, P., McLachlan, E. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+reactions+of+cutaneous+and+muscle+afferent+neurons+to+peripheral+nerve+transection+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Selective reactions of cutaneous and muscle afferent neurons to peripheral nerve transection in rats.</a> J Neurosci. 23 (33), 10559-10567 (2003).</li>
<li>Welin, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Survival+and+regeneration+of+cutaneous+and+muscular+afferent+neurons+after+peripheral+nerve+injury+in+adult+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Survival and regeneration of cutaneous and muscular afferent neurons after peripheral nerve injury in adult rats.</a> Exp Brain Res. 186 (2), 315-323 (2008).</li>
<li>Jivan, S., Novikova, L. N., Wiberg, M., Novikov, L. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effects+of+delayed+nerve+repair+on+neuronal+survival+and+axonal+regeneration+after+seventh+cervical+spinal+nerve+axotomy+in+adult+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Brain+Res%22%5BJournal%5D)">The effects of delayed nerve repair on neuronal survival and axonal regeneration after seventh cervical spinal nerve axotomy in adult rats.</a> Exp Brain Res. 170 (2), 245-254 (2006).</li>
<li>Garg, R., Uygur, S., Cwykiel, J., Siemionow, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+targeted+muscle+reinnervation+model+in+hind+limb+amputated+rats%5BTitle%5D)+AND+%22J+Reconstr+Microsurg%22%5BJournal%5D)">Development of targeted muscle reinnervation model in hind limb amputated rats.</a> J Reconstr Microsurg. 34 (7), 509-513 (2018).</li>
<li>Lago, N., Navarro, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+the+long-term+regenerative+potential+in+an+experimental+nerve+amputee+model%5BTitle%5D)+AND+%22J+Peripher+Nerv+Syst%22%5BJournal%5D)">Evaluation of the long-term regenerative potential in an experimental nerve amputee model.</a> J Peripher Nerv Syst. 12 (2), 108-120 (2007).</li>
<li>Hogan, Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+pain+models%5BTitle%5D)+AND+%22Reg+Anesth+Pain+Med%22%5BJournal%5D)">Animal pain models.</a> Reg Anesth Pain Med. 27 (4), 385-401 (2002).</li>
<li>Sadler, K. E., Mogil, J. S., Stucky, C. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Innovations+and+advances+in+modelling+and+measuring+pain+in+animals%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Innovations and advances in modelling and measuring pain in animals.</a> Nat Rev Neurosci. 23 (2), 70-85 (2022).</li>
<li>Svientek, S. R., Ursu, D. C., Cederna, P. S., Kemp, S. W. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fabrication+of+the+composite+regenerative+peripheral+nerve+interface+%28C-RPNI%29+in+the+adult+rat%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Fabrication of the composite regenerative peripheral nerve interface (C-RPNI) in the adult rat.</a> J Vis Exp. (156), e60841(2020).</li>
<li>Zepeda, J. L., Mraz, G., Roth, E., Weihrauch, D., Hoben, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rat+hindlimb+amputation+model+shows+analgesia+and+sexually+dimorphic+cold+hypersensitivity+with+immediate+targeted+muscle+reinnervation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Pain%22%5BJournal%5D)">Rat hindlimb amputation model shows analgesia and sexually dimorphic cold hypersensitivity with immediate targeted muscle reinnervation.</a> J Pain. 33, 105460(2025).</li>
<li>Roth, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeted+muscle+reinnervation+prevents+and+reverses+rat+pain+behaviors+after+nerve+transection%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">Targeted muscle reinnervation prevents and reverses rat pain behaviors after nerve transection.</a> Pain. 164 (2), 316-324 (2023).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>10-0 nylon microsuture (Arosurgical)</td><td>AROSurgical</td><td>T04A10N07-13</td><td>Sutura de coaptación nerviosa fina. Micro sutura 10-0.&nbsp;</td></tr><tr><td>4-0 polyglycolic acid suture</td><td>Ethicon</td><td>AQ1268</td><td>Sutura de cierre para músculo y piel. Sutura absorbible 4-0.&nbsp;</td></tr><tr><td>5-0 silk surgical suture</td><td>Generic</td><td>Generic</td><td>Sutura para ligadura de nervios</td></tr><tr><td>Adult Sprague-Dawley rats</td><td>Charles River Laboratories</td><td>Generic</td><td>Animal experimental</td></tr><tr><td>Alcohol prep pads</td><td>Dukal Corporation</td><td>Generic</td><td>Antiséptico para la piel</td></tr><tr><td>Betadine 10%</td><td>Avrio Health LP</td><td>Generic</td><td>Antiséptico</td></tr><tr><td>Bone scissors</td><td>FST</td><td>16030</td><td>Instrumento de corte de hueso</td></tr><tr><td>Cautery device</td><td>FST</td><td>18010-00</td><td>Dispositivo de hemostasia</td></tr><tr><td>Cotton tip applicator (ProAdvantage)</td><td>ProAdvantage</td><td>Ref 76100</td><td>Manipulación de tejido</td></tr><tr><td>Curved microdissector scissors</td><td>FST</td><td>15019-10</td><td>Tijeras finas para neurolisis</td></tr><tr><td>Forceps (fine Dumont)</td><td>FST</td><td>11254-20</td><td>Instrumento para manejo de nervios</td></tr><tr><td>Forceps (suture tying Dumont)</td><td>FST</td><td>11063-07</td><td>Instrumento para manejo de suturas</td></tr><tr><td>Gauze USP type VII (Cardinal Health)</td><td>Cardinal Health</td><td>Ref 2146</td><td>Mantiene el campo estéril</td></tr><tr><td>Heating pad warmer (TC1000 temperature controller)</td><td>Generic</td><td>TC1000</td><td>Dispositivo de control de temperatura</td></tr><tr><td>Induction chamber (Braintree Scientific)</td><td>Braintree Scientific Inc.</td><td>Generic</td><td>Para la inducción de la anestesia</td></tr><tr><td>Isoflurane (Isospire)</td><td>Phoenix</td><td>Generic</td><td>Agente anestésico</td></tr><tr><td>Meloxicam (Ostilox)</td><td>VetONE</td><td>5 mg/mL</td><td>Agente analgésico</td></tr><tr><td>Ruler</td><td>Generic</td><td>Generic</td><td>Instrumento de medición para puntos anatómicos</td></tr><tr><td>Sterile saline</td><td>Baxter</td><td>0.9 Sodium Lot Y425131</td><td>Solución de irrigación</td></tr><tr><td>Surgical blade 15&nbsp;</td><td>FST</td><td>10015-00</td><td>Herramienta para incisión de piel</td></tr><tr><td>Tuberculin syringe</td><td>Generic</td><td>Generic</td><td>Administración de medicación</td></tr><tr><td>Vaporizer (Surgivet model 100)</td><td>Surgivet</td><td>Model 100 S/N W2211123</td><td>Para el mantenimiento de la anestesia</td></tr><tr><td>Vetbond tissue adhesive</td><td>World Precision Instruments</td><td>Generic</td><td>Adhesivo para la piel</td></tr></tbody></table>

modelo de amputación de la extremidad posterior de rata por debajo de la rodilla y reinervación muscular dirigida inmediata

Rat Hindlimb Below-Knee Amputation Model and Immediate Targeted Muscle Reinnervation

Modelo de amputación de la extremidad posterior de rata por debajo de la rodilla y reinervación muscular dirigida inmediata

Amputation-related pain reduces patient quality of life, contributes to opioid use, and can reduce functional rehabilitation and prosthesis use. ...

Una investigación examina el dolor relacionado con lesiones nerviosas y amputaciones, y cómo la reubicación de nervios puede afectar ese dolor. La amputación limita las evaluaciones estándar del dolor. Este protocolo utiliza pruebas modificadas y alternativas para medir los comportamientos relacionados con el dolor postamputación.Para comenzar, obtenga una rata Sprague Dawley de entre ocho y 10 semanas de edad y que pese entre 250 y 300 gramos. Encienda la almohadilla calefactora y prepare un campo quirúrgico estéril. Organice todas las herramientas y materiales estériles necesarios para la cirugía.Después de anestesiar la rata con isoflurano al 4 % para la inducción y al 1-2 % para el mantenimiento, afeite el área que comienza en la parte baja de la espalda y continúa a lo largo de toda la longitud de la extremidad trasera. Limpie el sitio quirúrgico con solución antiséptica de povidona yodada, seguido de la limpieza con una toallita desinfectante con alcohol. Repita este procedimiento otras dos veces.Utilice una jeringa tuberculínica para inyectar un miligramo por kilogramo de meloxicam por vía subcutánea. Utilice una regla para marcar la línea de la articulación de la rodilla. Y haga dos marcas adicionales, dos centímetros y tres centímetros distales a la rodilla.Utilice un escalpelo para realizar una incisión cutánea circunferencial a tres centímetros distales de la rodilla. Realice una disección roma y afilada para separar circunferencialmente la piel de los músculos subyacentes hasta que esta se retrácte libremente. Repita el proceso de desinserción a través de las capas musculares más profundas para diseccionar hasta el hueso, preservando los planos tisulares.Utilice un marcador para señalar la tibia y el peroné un centímetro proximal a la incisión circunferencial. Utilice tijeras óseas pequeñas para seccionar la tibia y el peroné en el lugar marcado. Utilice electrocoagulación para controlar el sangrado y lograr la hemostasia.Examine el extremo del hueso y emboté o recorte los bordes afilados según sea necesario. Utilice una sutura trenzada absorbible 4-O para aproximar los bordes anteriores de los compartimentos musculares sobre la tibia, y fíjela con cuatro a seis puntos sueltos espaciados uniformemente. Alinee y cierre juntos los compartimentos musculares anterior y posterior sobre el hueso para formar una almohadilla muscular.Cierre la piel lateralmente con suturas interrumpidas de 4-O absorbibles trenzadas, evitando su colocación sobre el muñón portador de peso. Aplique adhesivo cutáneo a lo largo de la línea de incisión. Realice una incisión longitudinal de separación glútea de 1,5 a dos centímetros, aproximadamente cinco milímetros posterior al fémur.Utilice disección roma para separar los músculos glúteo e isquiotibiales y exponer el nervio ciático proximal a su trifurcación. Identifique las ramas motoras proximales, incluyendo la rama grande situada debajo del músculo femoral caudal o CFM y sus divisiones. Eleve el CFM con pinzas y córtelo.Utilice pinzas microquirúrgicas finas Dumont para neuralizar las divisiones del semimembranoso y del bíceps femoral mediante disección romo. Sujete el epineurio y ábralo longitudinalmente utilizando tijeras de resorte curvas finas. Luego, separe las ramas nerviosas.Preservar la rama caudofemoral y dividir las ramas restantes cerca del tronco ciático. Curvar las ramas motoras en dirección inferior para facilitar la coaptación. Utilizar tijeras de resorte curvas para abrir el epineuro y dividirlo con el fin de neuralizar la trifurcación ciática.Utilice pinzas finas para separar suavemente las ramas nerviosas. Use pinzas para sujetar cada una de las tres ramas, peronea común, tibial y sural, entre cinco y diez milímetros distales a la trifurcación. Mientras aplica tensión, seccione cada nervio en sentido distal y extirpe entre cinco y diez milímetros del segmento.Utilice suturas de nylon 10-0 para realizar las coaptaciones conectando primero el nervio perineal común al semimembranoso. Utilice al menos tres nudos por sutura. Asegure una colocación sin tensión, evitando apretar en exceso y arrugar el nervio, y coloque las coaptaciones sin ángulos agudos.Luego, conecte el nervio tibial a la rama grande del bíceps femoral y conecte el nervio sural a la rama pequeña del bíceps femoral. Para la amputación sin reinnervación muscular objetivo, después de exponer las ramas del nervio ciático, utilice un sutura de seda 5-0 y pinzas para ligar los nervios peroneo común, tibial y sural, asegurándose de que la ligadura pliegue el nervio y se asegure con cuatro nudos cuadrados. Tire suavemente de cada nervio en dirección proximal utilizando el nudo y seccione uno o dos milímetros distal a la ligadura.Retire 10 milímetros del segmento nervioso distal y luego proceda con la amputación tal como se demostró previamente. Después de cerrar la incisión, aplique adhesivo cutáneo a lo largo de la línea de incisión. Observe la rata diariamente durante siete días para verificar la integridad de la herida, signos de infección, dolor o malestar, e intervenga según sea necesario siguiendo las directrices del IACUC.Los umbrales mecánicos de retirada medidos mediante la prueba de Von Frey se redujeron significativamente respecto a la línea base y permanecieron disminuidos en todos los puntos temporales posteriores a la amputación. La prueba con alfiler mostró una tendencia hacia un aumento de las respuestas nociceptivas con el tiempo en comparación con la línea base. La hipersensibilidad al frío del muñón fue intensa y se mantuvo sostenida en comparación con la línea base en todos los puntos temporales.Este protocolo permite evaluar diferentes estrategias de manejo nervioso en el contexto de la amputación. El mayor desafío durante la realización de este protocolo es manipular los nervios de manera no traumática cuando tienen menos de un milímetro de ancho. Estudios futuros pueden ampliar este trabajo para mejorar los modelos y desarrollar métodos más confiables para estudiar el dolor del miembro fantasma.

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Research

Investigación

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Medicina

A continuación se describe la rata ortotópico patas traseras procedimiento de trasplante, lo que parece ser el estándar de...

Ortotópico patas traseras trasplante en ratas

Fuente: Brakkee, E. M., et al. Cirugía y pruebas conductuales en el modelo de transposición del neuroma tibial en ratas. J. Vis. Exp. (2023). Este video muestra un procedimiento para generar un modelo de transposición de neuroma tibial (TNT) en ratas. Después de exponer el nervio tibial en la pata trasera de una rata anestesiada, transecte el nervio. A continuación, crea un túnel subcutáneo, pasa el nervio cortado a través del túnel y sutura en su lugar. En ausencia de un objetivo para la...

Generación de un modelo de rata de la transposición del neuroma tibial

El modelo de transección del nervio tibial es un bien tolerado, validado, y reproducible modelo de atrofia del músculo esquelético. El modelo de protocolo quirúrgico se describe y se demuestra en C57Black6 ratones.

Transección del nervio tibial - Un modelo normalizado para la atrofia del músculo esquelético denervación inducida en ratones

Este modelo novedoso para posterior trasplante ortotópico extremidad en el ratón, la aplicación de una técnica de manguito no de sutura para la anastomosis super-microvascular, proporciona una herramienta poderosa para la investigación inmunológica in vivo mecanicista relacionada con alotrasplante compuesto vascularizado (VCA).

Ortotópico de la extremidad posterior de trasplante en el ratón

Este protocolo presenta un modelo robusto y reproducible de alotrasplante compuesto vascularizado (VCA) orientado al estudio simultáneo de la inmunología y la recuperación funcional. El tiempo invertido en la técnica meticulosa en un trasplante ortotópico de las extremidades traseras de la parte media derecha con anastomosas vasculares cosidas a mano y coaptación neuronal produce la capacidad de estudiar la recuperación funcional.

Dar el siguiente paso: un modelo de trasplante de extremidades hindópicos ortotópicos de coaptación neuronal para maximizar la recuperación funcional en rata

Este trabajo presenta un protocolo de trasplante de colgajo osteomiocutáneo heterotópico parcial en ratas y sus posibles resultados en el seguimiento a medio plazo.

Modelo de trasplante parcial de extremidades posteriores heterotópicas en ratas

Este trabajo presenta un protocolo para mejorar la función protésica después de la cirugía selectiva de transferencia nerviosa. Las intervenciones de rehabilitación incluyen información y selección del paciente, apoyo a la cicatrización de heridas, reactivación cortical de las áreas sensitivo-motoras de la extremidad superior, entrenamiento de la activación muscular selectiva, manejo protésico en la vida diaria y evaluaciones de seguimiento regulares.

Intervenciones terapéuticas para amputados de miembros superiores sometidos a transferencias nerviosas selectivas

Este manuscrito proporciona un método innovador para desarrollar una interfaz nerviosa periférica biológica denominada Interfaz nerviosa periférica regenerativa del manguito muscular (MC-RPNI).  Esta construcción quirúrgica puede amplificar las señales eferentes motoras de su nervio periférico asociado para facilitar la detección precisa de la intención motora y el control potencial de los dispositivos de exoesqueleto.

La interfaz nerviosa periférica regenerativa del manguito muscular para la amplificación de señales nerviosas periféricas intactas

El protocolo describe el procedimiento quirúrgico para el tratamiento del dolor posterior a la amputación mediante la reinervación muscular dirigida (TMR). La TMR se comparará con otras dos técnicas quirúrgicas, específicamente la Interfaz Nerviosa Periférica Regenerativa (RPNI) y la escisión del neuroma, seguida de un enterramiento inmediato dentro del músculo en el contexto de un ensayo controlado aleatorio internacional.

Reinervación muscular dirigida: protocolo quirúrgico para un ensayo controlado aleatorizado en el dolor posterior a la amputación

Este protocolo presenta un modelo de rata reproducible que utiliza nervios sensoriales para imitar el dolor del neuroma humano y evaluar los tratamientos quirúrgicos, ofreciendo una herramienta valiosa para la investigación traslacional del neuroma.

Nuevo modelo quirúrgico de roedores para estudiar las opciones de tratamiento del dolor del neuroma mediante la reinervación muscular dirigida a través del nervio safeno

Medical College of Wisconsin.  Este protocolo demuestra cómo realizar una amputación por debajo de la rodilla en ratas y realizar inmediatamente la inervación muscular dirigida (iTMR) para investigar estrategias que traten y previenen el dolor relacionado con la amputación y para comprender mejor los mecanismos del dolor asociados a la amputación.

Modelo de amputación de la extremidad posterior de rata por debajo de la rodilla y reinervación muscular dirigida inmediata

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