23 de junio de 2026
Este protocolo describe un método de clasificación basado en perlas magnéticas que utiliza anticuerpos de citometría de flujo marcados con ficoeritrina (PE) y microperlas anti-PE para aislar subpoblaciones específicas de células madre mesenquimales con alta positividad de marcadores objetivo postclasificación y actividad metabólica preservada basada en CCK-8 bajo las condiciones probadas, sin requerir costosos clasificadores celulares ni perlas personalizadas específicas para cada objeti
Nuestra investigación se centró en aislar un subconjunto específico de células madre mesenquimales para un ablandamiento de perlas magnéticas rentable con alta pureza y legibilidad. Este protocolo puede aplicarse a cualquier proteína de membrana utilizando anticuerpos conjugados estándar con EP. Para empezar, reúne los reactivos necesarios.
Selecciona células madre mesenquimales, o MSCs, de los conductos tres a cinco que hayan alcanzado un 80-90% de confluencia. Descarta el medio cultural. Lava las células dos veces con 10 mililitros de PBS precalentado.
Mecía suavemente el recipiente y descarta el PBS. Añade dos mililitros de tripsina-EDTA al 0,25% y incuba a 37 grados Celsius durante tres a cinco minutos. Bajo un microscopio, observa las células hasta que se reúnen y empiecen a desprenderse.
Añade cuatro mililitros de medio de cultivo que contenga un 16,5% de FBS para neutralizar la tripsina. Pipetee suavemente las células para asegurar el desprendimiento completo y transfiere la suspensión de la celda a un tubo centrífugo de 15 mililitros. Centrifuga la suspensión de celda a 300 g durante tres minutos y descarta el sobrenadante.
Resuspende el pellet celular en un mililitro de tampón. Cuenta las celdas para determinar el número total de celdas. Centrifugar y descartar el sobrenadante como se ha demostrado anteriormente.
Resuspende las células con tampón para lograr una densidad de 100 millones de células por mililitro. Transfiere la suspensión de la celda a un tubo de fondo redondo de poliestireno de cinco mililitros. Añade 10 microlitros de bloqueador Fc gamma RII por cada 10 millones de celdas.
Mezcla suavemente y incuba a temperatura ambiente durante 10 minutos. Añade cinco microlitros de podoplanina antihumana conjugada con PE o conjugada con PE, o anticuerpo PDPN, por cada 10 millones de células. Mezcla suavemente y incuba a temperatura ambiente durante 15 a 20 minutos protegido de la luz.
Añade 10 microlitros de cóctel de selección por cada 10 millones de células. Mezcla suavemente y incuba a temperatura ambiente durante 15 minutos. Utiliza un mezclador de vórtice para mezclar vigorosamente el vial de las perlas magnéticas durante 30 segundos.
Añade cinco microlitros de perlas magnéticas por cada 10 millones de celdas. Mezcla suavemente y incuba a temperatura ambiente durante 10 minutos. Coloque el tubo de fondo redondo de poliestireno de cinco mililitros que contiene la muestra de celda etiquetada en el soporte de separación magnética.
Añade buffer al tubo para llevar el volumen total a 2,5 a tres mililitros. Y incubar a temperatura ambiente durante cinco minutos. Manteniendo el imán y el tubo juntos como una sola unidad, inviertelos para verter el sobrenadante en un nuevo tubo de recogida.
Coloca la fracción de células negativas de PDPN recogida sobre hielo. Repite el procedimiento de separación magnética tres veces como se demostró anteriormente, vertiendo el sobrenadante en el mismo tubo de recogida de fracciones negativas PDPN tras cada separación. Tras el lavado final, retirar el tubo que contiene la fracción positiva de la célula PDPN unida magnéticamente del soporte de separación magnética.
Añade tres mililitros de tampón para volver a suspender las células positivas. Transfiere la suspensión de celda de fracción positiva a un tubo recién etiquetado. Cuenta las células tanto de los tubos de fracción positiva como negativa.
Registra el rendimiento de las celdas para cada fracción. Centrifuga la suspensión de celda de fracción positiva a 300 g durante tres minutos y descarta el sobrenadante. Resuspende el pellet celular en un medio de cultivo alfa MEM que contenga un 16,5% de FBS.
Ajusta la densidad celular según sea necesario y siembra las células en placas de cultivo o frascos. Incuba las células a 37 grados Celsius en una incubadora de dióxido de carbono al 5%. Tras contar las células, siembralas en una bandeja de cultivo de 100 milímetros con una densidad de tres millones de células por recipiente en 12 mililitros de medio de cultivo.
24 horas después de la siembra, observa la unión de la célula. Sustituye el medio de cultivo por un medio fresco para eliminar las perlas magnéticas residuales y las células no adherentes. Extrae las células mediante tripsinización.
Haz una pipete suave en la suspensión celular de 10 a 15 veces para desalojar y eliminar las perlas magnéticas y los anticuerpos residuales. Evalúa el porcentaje de células positivas a PDPN para PE mediante citometría de flujo. Recoge células durante la fase de crecimiento logarítmico.
Siembra las células en una placa de 96 pozos. En diferentes momentos, añadir el Kit de Conteo de Celas-8m o CCK-8, reactivar y medir la absorbancia según las instrucciones del fabricante. Tabula los datos pre-ordenado y post-ordenado para diferentes momentos en el software GraphPad Prism, y luego haz clic en datos para representar la curva de proliferación.
Tras el bloqueo del receptor de FC, el marcado de anticuerpos y la separación magnética, el recuento final de células fue de aproximadamente 3,5 millones de células para la fracción positiva de PDPN y 6,4 millones de células para la fracción negativa de PDPN. Antes de la clasificación magnética, la frecuencia de las células positivas para PDPN en la población inicial era del 38,7%. Tras la clasificación, la fracción positiva contenía un 97,9% de células positivas para PDPN en PE. El análisis de citometría de flujo de la fracción negativa reveló que el 4,30% de las células positivas para PDPN permanecían, lo que indica una disminución eficiente de las células positivas para PDPN respecto a la fracción negativa.
La curva de proliferación de células positivas para PDPN durante tres días consecutivos de cultivo no mostró diferencias significativas en comparación con las MSC no clasificadas, lo que indica que la estrategia de clasificación no causó una reducción detectable en la proliferación o actividad metabólica basada en CCK-8 en comparación con las MSC no clasificadas. Este enfoque permite a la investigación estudiar subpoblaciones con alta pureza y legibilidad. La consideración más importante en este protocolo es mantener suavemente la legibilidad de las células y eliminar las perlas sueltas.
Siguiendo este procedimiento, la investigación puede realizar ensayos de proliferación, estudios sedimentarios y de deflación.
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El estudio presenta un protocolo estandarizado de clasificación mediante perlas magnéticas para el aislamiento de subpoblaciones de células madre mesenquimales utilizando anticuerpos para citometría de flujo marcados con ficoeritrina (PE) y perlas magnéticas anti-PE. Este enfoque de acoplamiento indirecto permite el enriquecimiento de células diana sin necesidad de citómetros de flujo clasificadores costosos ni perlas magnéticas personalizadas. Utilizando células positivas para podoplanina (PDPN) como modelo, el método logra una alta pureza tras la clasificación, manteniendo al mismo tiempo la proliferación celular y la actividad metabólica.
El aislamiento eficiente de subpoblaciones raras de células madre mesenquimales, como las células positivas para podoplanina, es fundamental para la validación de objetivos y la reducción del riesgo funcional en las fases iniciales del descubrimiento. La estrategia indirecta con microperlas magnéticas que utiliza anticuerpos marcados con PE y microperlas anti-PE permite un enriquecimiento rápido y rentable de poblaciones celulares diana sin depender de reactivos personalizados ni de ordenadores citométricos de flujo. Este enfoque facilita la selección escalable de carteras y acelera la investigación traslacional sobre marcadores superficiales poco estudiados.
Este protocolo de clasificación indirecta mediante perlas magnéticas se sitúa en la intersección entre el descubrimiento inicial y la investigación preclínica, actuando como puente entre la validación de dianas y el desarrollo de ensayos para poblaciones celulares raras.