Name: Aislamiento y análisis de las células madre hematopoyéticas de la placenta (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2008-06-24T16:25:00.000+00:00
Duration: 14 min 42 s
Description: Aprende a aislar y analizar células madre hematopoyéticas de placenta murina. Este método permite visualizar las células en sus nichos microambientales únicos durante el desarrollo embrionario.

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1. La eliminación del embrión y la placenta disección <ol><li> Para empezar, los embriones debe ser aislado de las presas embarazadas. </li><li> Los animales son sacrificados de acuerdo con los procedimientos aprobados - en nuestro caso vamos a usar una dosis letal del anestésico isoflurano </li><li> En primer lugar, rocíe el vientre con etanol y hacer una pequeña incisión con un par de tijeras. </li><li> Arranca la piel con las dos manos para descubrir el abdomen y se abre el peritoneo. </li><li> Con unas pinzas, recoja los cuernos uterinos y recogerlos con unas tijeras en cada extremo distal. Colocar los cuernos uterinos en una placa de Petri llena de PBS y el lugar en el hielo. También, recuerde lavar varias veces con PBS antes de aislar a la placenta. Ahora podemos aislar de la placenta. </li><li> Con dos pinzas, comience cuidadosamente pelar el tejido endometrial que rodea el embrión conceptuses. Hay que tener cuidado de no perforar o no causar daños estructurales a los embriones, ya que esto va a complicar la disección de los pasos posteriores. </li><li> Coloque el conceptuses aislado en una nueva placa de Petri con PBS en hielo y continuará hasta que todos conceptuses han sido liberados a partir del endometrio. </li><li> La transferencia de un embrión de una nueva placa de Petri con PBS colocado bajo el microscopio y con dos pinzas de pelar la decidua lejos de la placenta. Eliminar la mayor cantidad de la decidua posible, ya que las células de la decidua puede interferir con una sola suspensión celular y citometría de flujo. Un suave movimiento continuo peeling se recomienda para lograr los mejores resultados. </li><li> Corte el saco vitelino de distancia de la placenta en el cruce entre los dos órganos y tire del saco vitelino y los vasos vitelino fuera de la placenta. Se debe tener cuidado de no alterar la placa coriónica de la placenta, especialmente con los embriones tempranos. </li><li> Cuidadosamente la celebración de la placa coriónica de la placenta con un par de pinzas y el cordón umbilical con otro, tirar el cordón umbilical y el embrión conectado fuera de la placenta. </li><li> Retire el exceso de tejido de células gigantes en los bordes de la placenta con el fin de minimizar la célula aglutinación durante la preparación de una sola célula de la suspensión. </li><li> Recoger la placenta en un recipiente adecuado, como por ejemplo un tubo Falcon de 15 ml, con PBS 5% de FCS y sobre hielo. Hacer esto para todas las placentas disecados. </li><li> En este punto, usted puede proceder con la preparación de una suspensión de una sola célula de la citometría de flujo, ensayos funcionales, tales como el cultivo in vitro o el trasplante, o preparar la placenta entera para la fijación del tejido y de bloque fijo congelados incorporación eventual de inmunohistoquímica. </li></ol> 2. Preparación de una sola célula de suspensión de tejido de la placenta <ol><li> A continuación se muestra cómo generar una única suspensión de células de la placenta para el análisis de FACS. </li><li> Para preparar una suspensión de células individuales de la placenta, mecánica y la disociación enzimática es necesario. En primer lugar preparar una solución de colagenasa 0,1% en PBS con 10% de FCS y 1% de solución de penicilina / estreptomicina. </li><li> Añadir un volumen adecuado de solución de colagenasa a las placentas, dependiendo de la cantidad que usted tiene. Un volumen que es el doble del volumen de la placenta y entre 2 y 5 ml se recomienda. </li><li> Use una aguja de 16 G montado en una jeringa de 5 ml para romper mecánicamente el tejido de pases de la solución de colagenasa y la placenta a través de la aguja de 3 veces. Repita el procedimiento con una aguja 18-G. </li><li> Colocar la muestra en un 37 ° C, 5% de CO 2 incubadora durante 45 minutos. </li><li> Después de la incubación de 45 minutos en la colagenasa, la aprobación de la solución de células a través de una aguja de 20 G, y se incuba durante 45 minutos, en 37 ° C. </li><li> Después de la incubación total de 1,5 horas en la colagenasa, la aprobación de la solución de células a través de 22 G y las agujas 25-G 3 veces con cada aguja. </li><li> Filtrar la muestra a través de un filtro de 50 micras, unido a una nueva de 15 ml tubo Falcon, lavar con PBS 5% de FCS y se centrifuga a 4 ° C durante 5 minutos a 300 x g. </li><li> En este punto, tenemos una suspensión de células individuales para el análisis de FACS o ensayos funcionales. </li></ol> 3. La fijación del tejido de las secciones congeladas <ol><li> Inmediatamente después de aislar a la placenta de cada embrión, que se colocan en frío PBS 1X. Por lo general, una placa de 96 pozos que funciona mejor para placentas jóvenes (E8.5-11.5), pero con mayores placentas, E12.5 y mayores, una placa de 24 y puede ser más conveniente. </li><li> Cada placenta se transfiere a un nuevo pozo lleno de recién descongelado 4% paraformaldahyde o PFA. Para el E12.5 placentas, el tejido se trasladó a un nuevo pozo a mano, pero para el E10.5 puede quitar la PBS cuidadosamente con una pipeta y se añade la PFA. Es importante que la placenta está totalmente sumergida durante 2-4 horas a 4 ° C, dependiendo de la edad y el tamaño de los tejidos. </li><li> La transferencia de los tejidos en 30% de sacarosa, o si los tejidos son muy pequeños y frágiles, aspirar la PFA y añadir la sacarosa directamente. En esta etapa, las placentas estarán flotando en la solución. Deje que los tejidos pasar la noche a 4 ° C.</li><li> Después del paso de la noche en el 30% de sacarosa, en última instancia, los tejidos deben hundirse hasta el fondo del pozo, lo que indica la criopreservación adecuada. Eliminar la mitad de la solución de sacarosa y reemplazar el volumen de octubre y el lugar del tejido de vuelta en 4 ° C durante 1-2 horas. Esto facilita la penetración de octubre </li><li> La transferencia de los tejidos de 100% octubre durante 1 hora, después de lo cual puede ser embebido. </li></ol> 4. Incorporación de los tejidos fijados <ol><li> Etiqueta de moldes de plástico con la identificación de tejido apropiado (molde mostrar ejemplo). </li><li> Tire el tejido de la solución de octubre y reducir a la mitad de la placenta mediante la orientación de la placenta en forma de disco con el lado del cordón umbilical hacia abajo y cortar cuidadosamente con una cuchilla de afeitar limpia, asegurándose de mover la hoja de ida y vuelta antes de liberar la presión para asegurar un corte parejo. La placenta se reduce a la mitad para conseguir el mejor prientation para visualizar más tarde, el HSCs la placenta. </li><li> Coloque una placenta media en el fondo del molde con el borde del corte en contacto con la superficie del fondo del molde. Repita el procedimiento con un nuevo molde para la otra mitad. Por E10.5 placentas, las dos mitades se pueden colocar en el mismo molde con la misma técnica. </li><li> Cuando se vierte en el molde de octubre, puede ser difícil mantener la placenta en la orientación correcta. Asegurar la placenta en su lugar mediante la celebración de la segunda mitad del tejido con una pinza. Verter lentamente la solución octubre en el molde y evitar la producción de las burbujas. Por E10.5 placentas, mantenga la mitad del tejido con las pinzas y el resto de la mitad de otro tejido contra el exterior de la pinza. Verter lentamente la solución octubre como se describe para E12.5 placentas. </li><li> Una vez que el molde está lleno de octubre, rápidamente coloque el molde sobre el hielo seco, la OCT a su vez, un flash para congelar el tejido </li><li> Coloque el molde en una pequeña bolsa de plástico que contiene Drierite e inmediatamente guarde en el congelador de -80 º C. </li></ol>

<ol><li>Gekas, C., Dieterlen-Lievre, F., Orkin, S. H., Mikkola, H. K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+placenta+is+a+niche+for+hematopoietic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Cell%22%5BJournal%5D)">The placenta is a niche for hematopoietic stem cells.</a> Dev Cell. 8, 365-375 (2005).</li>
<li>Rhodes, K. E., Gekas, C., Wang, Y., Lux, C. T., Francis, C. S., Chan, D. N., Conway, S., Orkin, S. H., Yoder, M. C., Mikkola, H. K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Emergence+of+Hematopoietic+Stem+Cells+Is+Initiated+in+the+Placental+Vasculature+in+the+Absence+of+Circulation%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">The Emergence of Hematopoietic Stem Cells Is Initiated in the Placental Vasculature in the Absence of Circulation.</a> Cell Stem Cell. 2, 252-263 (2008).</li>
</ol>

Los procedimientos experimentales descritos en este protocolo permitirá que para el aislamiento y la visualización de tejido de la placenta y la madre hematopoyéticas y las células progenitoras. Para un resumen completo sobre el rendimiento esperado y el número de celular de las CMH en la placenta y otros órganos hematopoyéticos fetal durante el desarrollo fetal que se refieren a Gekas, et al. 2005. Para la localización de las CMH en desarrollo y otras células hematopoyéticas de la placenta que se refieren a Rodas, et al. 2008.

Lista de Materiales: La glucosa 100 mM 10 mM NaN3 15 ml tubos cónicos (BD) 16-G, 18 G, 20 G, 22 G y 25-G agujas (BD) 30% de sacarosa solución 35 mm placas de Petri (BD) Paraformaldehído al 4% 50 - m filtros celular (Celltrics) Jeringas de 5 ml (BD) Fosfatasa alcalina sustrato Kit I (Vector Rojo, Vector) Fosfatasa alcalina sustrato Kit III (Blue Vector, Vector) Antibióticos (penicilina / estreptomicina, P / S) solución Colagenasa tipo I (Sigma) Cryomold Moldes desechables de vinilo de la muestra (10 mm x 10 mm x 5 mm, Tissue-Tek) Citoqueratina primaria de anticuerpos (DakoCytomation) Pinzas de disección, de acero inoxidable o de titanio, el número 5 o 55 Drierite De suero fetal bovino (FBS) Fisherbrand plástico portaobjetos del microscopio Mailer (Fisher) Glucosa oxidasa 1000u/ml Levamisol (Vector) Montaje de los medios de comunicación, de base acuosa medio de montaje (VectamountTM AQ) Suero normal de caballo (Vector) La temperatura óptima de corte (octubre, Tissue-Tek) Kit de sustrato de peroxidasa DAB (Vector) Tampón fosfato salino (PBS) con calcio / magnesio (w Ca2 + / Mg2 +) Tampón fosfato salino (PBS) sin calcio / magnesio (w / o Ca2 + / Mg2 +) Caja de diapositivas de plástico (capacidad para 100 diapositivas) Tubería de plástico (Nalgene 180 PVC no tóxico autoclave) Polipropileno de fondo redondo de tubo de ensayo, 5 ml (12x75 mm, BD Falcon) Proteinasa K 20mg/ml solución (Amresco) Investigación de Productos International Corp Súper Pluma de Papanicolaou HT * Marcadores de diapositivas (2,5 mm, Fisher) De cultivo de tejidos tratados en forma de U (de fondo redondo) placas de 96 pozos, o bien 24 (BD Falcon) Tween 20, SigmaUltra (Sigma) Kit de amplificación tiramida (Invitrogen) Vectastain ABC de fosfatasa alcalina Standard Kit (Vector) Vectastain ABC Kit estándar Elite (Vector)

aislamiento y análisis de las células madre hematopoyéticas de la placenta

Isolation and Analysis of Hematopoietic Stem Cells from the Placenta

Las células madre hematopoyéticas (HSC) tienen la capacidad de auto-renovación y generar todos los tipos celulares de los linajes de sangre durante toda la vida de un individuo. Todos los HSCs surgir durante el desarrollo embrionario, después de que su tamaño de la agrupación se mantiene gracias a la auto-renovación de las divisiones celulares. Identificar el origen anatómico de las CMH y los acontecimientos de desarrollo fundamental que regula el proceso de desarrollo de HSC se ha complicado ya que muchos sitios anatómicos participar durante la hematopoyesis fetal. Recientemente, hemos identificado la placenta como un órgano principal hematopoyéticas en HSCs se generan y se amplió en exclusiva nichos microambientales (Gekas, et al 2005, Rodas, et al 2008). En consecuencia, la placenta es una fuente importante de HSC durante su surgimiento y la expansión inicial. En este artículo se muestran las técnicas de disección para el aislamiento de los murinos placenta de E10.5 E12.5 y embriones, correspondientes a las etapas de desarrollo de la iniciación de las CMH y el pico en el tamaño de la piscina HSC en la placenta, respectivamente. Además, presentamos un protocolo optimizado para la disociación enzimática y mecánica de tejido de la placenta en una sola célula de suspensión para su uso en citometría de flujo o ensayos funcionales. Hemos encontrado que el uso de colagenasa por una sola célula de suspensión de la placenta produce rendimientos suficientes de las CMH. Un factor importante que afecta el rendimiento HSC de la placenta es el grado de disociación mecánica antes, y la duración de, tratamiento enzimático. Disponemos también de un protocolo para la preparación de las secciones fijas congeladas de tejido placentario para la visualización del desarrollo de HSC por inmunohistoquímica en sus nichos celulares precisos. Como hematopoyéticas antígenos específicos no se conservan durante la preparación de las secciones incluidas en parafina, que utilizan habitualmente fija las secciones congeladas para la localización de la placenta y HSCs progenitores.

Hemos identificado la placenta como un órgano principal hematopoyéticas durante el desarrollo. Encontramos que las células madre hematopoyéticas (HSC), son generados y ampliado en la placenta en el único nichos microambientales. A continuación, describimos las técnicas experimentales necesarias para el aislamiento y la visualización de la CMH en la placenta del ratón.

Aislamiento y análisis de las células madre hematopoyéticas de la placenta

Las células madre hematopoyéticas (HSC) tienen la capacidad de autorrenovarse y generar todos los tipos celulares de los linajes sanguíneos a lo largo de la vida de un individuo. ...

Hola, soy Mikkola y bienvenidos a mi laboratorio. El enfoque principal de nuestro laboratorio es investigar el desarrollo de las células madre hematopoyéticas. Durante la embriogénesis, hemos identificado la placenta como un órgano hematopoyético importante y descubierto que las células madre hematopoyéticas se generan y expanden en la placenta dentro de nichos microambientales únicos.Por tanto, la placenta tiene un valor inmenso como fuente de células madre hematopoyéticas durante su aparición y expansión inicial. Hoy, los miembros de mi laboratorio mostrarán las técnicas experimentales necesarias para el aislamiento de células madre hematopoyéticas a partir de la placenta y la visualización de las CSH en sus nichos microambientales únicos. Hola, soy Chriss Geka del laboratorio de la Dra. Hannah Mola en el Departamento de Biología Celular y del Desarrollo Molecular de la UCLA.Hoy les mostraré cómo diseccionar la placenta de ratón y cómo preparar una suspensión de células individuales del tejido placentario para análisis por citometría de flujo de células madre hematopoyéticas fetales. Yo soy Katrina Rhodes, y les mostraré cómo preparar el tejido placentario para inmunohistoquímica. Así que comencemos.Para comenzar, primero deben aislarse los embriones de las hembras preñadas. Los animales se sacrifican según procedimientos aprobados. En nuestro caso, vamos a utilizar una dosis letal del anestésico isoflurano.Primero, rocíe el abdomen con etanol y realice una pequeña incisión con un par de tijeras. Retire la piel con ambas manos para exponer el abdomen y corte el peritoneo con pinzas. Tome los cuernos uterinos y recójalos usando tijeras en cada extremo distal.Coloque los cuernos uterinos en una placa de Petri llena con PBS y colóquela en hielo. Además, recuerde lavar varias veces con PBS antes de aislar la placenta con dos pinzas. Comience a desprender cuidadosamente el tejido endometrial que rodea los conceptos embrionarios.Estos embriones son del día embrionario 12,5, que es la edad de desarrollo en la que las células madre hematopoyéticas o HSCs se encuentran en su punto máximo en la placenta. Se debe tener cuidado de no perforar ni causar daño estructural a los embriones, ya que esto complicaría los pasos posteriores de la disección. Coloque los conceptos aislados en la nueva placa de Petri con PBS sobre hielo y continúe hasta que todos los conceptos hayan sido liberados del endometrio.Transfiera un concepto al nuevo plato de Petri con PBS colocado bajo el microscopio. Y con dos pinzas, desprenda la decidua de la placenta G. Elimine la mayor cantidad posible de decidua, ya que las células deciduales interferirán.Con suspensión de células individuales y citometría de flujo. Se recomienda un movimiento de pelado suave y continuo para obtener los mejores resultados. Vale la pena destacar que, al trabajar con embriones más jóvenes como estos embriones de día 10.5 embrionario o E 10.5, la deidra rodeará todo el concepto.A diferencia de los embriones en E 12.5, en E 10.5 las CTH apenas comienzan a aparecer dentro de la placenta. Observe la diferencia considerable de tamaño entre los embriones en E 10.5 y E 12.5. Corte el saco vitelino de la placenta en la unión entre los dos órganos, y separe suavemente el saco vitelino y los vasos alantoides de la placenta.Se debe tener cuidado para no alterar la placa corial de la placenta, especialmente con embriones tempranos. Sostenga cuidadosamente la placa corial de la placenta con un par de pinzas y el cordón umbilical con otro par. Separe el cordón umbilical y el embrión adjunto de la placenta.Elimine el tejido excesivo de células gigantes en los bordes de la placenta para minimizar la agregación celular durante la preparación de la suspensión de células individuales. Recoja la placenta en un recipiente adecuado, como un tubo Falcon de 15 mL con PBS y 5 %FCS, y colóquelo en hielo. Haga esto con todas las placentas diseccionadas. En este punto, puede proceder con la preparación de una suspensión de células individuales para ensayos funcionales de citometría de flujo, como cultivo in vitro o trasplante, o preparar la placenta completa para fijación tisular e inclusión en bloque fijado y congelado para inmunohistoquímica posterior.A continuación, le mostraremos cómo generar una suspensión de células individuales a partir de placenta para análisis por fax. Primero, prepare una solución de colagenasa al 0,1 % en PBS con FCS al 10 % y solución de penicilina-estreptomicina al 1 %. Añada un volumen adecuado de solución de colagenasa a la placenta según la cantidad que tenga; se recomienda un volumen que sea el doble del volumen de la placenta, entre dos y cinco mililitros.Utilice una aguja de calibre 16 acoplada a una jeringa de cinco ml para romper mecánicamente el tejido mediante el paso de la solución de colagenasa y la placenta a través de la aguja tres veces. Repita el procedimiento con una aguja de calibre 8. Incube la muestra en un incubador a 37 grados Celsius con 5% de CO₂ durante 45 minutos tras la incubación de 45 minutos.En el paso con colagenasa, pase la solución celular a través de una aguja de calibre 20 e incube durante 45 minutos adicionales a 37 grados después de la incubación total de una hora y media en el paso con colagenasa; luego, pase la solución celular a través de agujas de calibre 22 y calibre 25 tres veces con cada aguja. Ahora filtre la muestra a través de un filtro de 50 micrómetros acoplado a un nuevo tubo Falcon de 15 mL, lávelo con PBS más 5 %FCS y centrifugue a cuatro grados Celsius durante cinco minutos a 300 ×g. En este punto, se obtiene una suspensión de células individuales adecuada para análisis por citometría de flujo.Le mostraré cómo preparar tejido placentario para inmunohistoquímica. La inmunohistoquímica de tejido placentario puede utilizarse para localizar células madre hematopoyéticas dentro del microambiente placentario. Inmediatamente después de aislar la placenta de cada embrión, se colocan en PBS 1X frío; por lo general, una placa de 96 pocillos funciona mejor para placentas jóvenes del día embrionario 8.5 al 11.5, pero con placentas más viejas, del día 12.5 en adelante, una placa de 24 pocillos puede ser más conveniente.Cada placenta se transfiere a un nuevo pocillo lleno con PARALDEHÍDO al 4% recién descongelado o PFA para la placenta del día E 12.5. El tejido se mueve manualmente a un nuevo pocillo. Pero para la placenta del día E 10.5, se puede eliminar cuidadosamente el PBS con una pipeta y añadir el PFA.Es importante que la placenta permanezca completamente sumergida entre dos y cuatro horas a cuatro grados C, dependiendo de la edad y el tamaño del tejido. Luego, transfiera el tejido a sacarosa al 30%. O, si los tejidos son muy pequeños y frágiles, aspire el PFA y agregue la sacarosa directamente.En esta etapa, la placenta estará flotando en la solución. Deje el tejido durante la noche a cuatro grados C. Después del paso nocturno en sacarosa al 30%, los tejidos finalmente deberían hundirse hasta el fondo del pocillo, lo que indica una criopreservación adecuada. A continuación, retire la mitad de la solución de sacarosa y reemplace el volumen con OCT.Coloque el tejido nuevamente a cuatro grados C durante una a dos horas. Esto facilita la penetración de OCT. Finalmente, el tejido se transferirá a OCT al cien por ciento durante una hora, tras lo cual podrá ser incluido.Etiquetar moldes de plástico con la identificación adecuada del tejido. Sacar el tejido de la solución OCT y cortar la placenta por la mitad orientando la placenta con forma de disco con el lado del cordón umbilical hacia abajo y cortando cuidadosamente con la cuchilla limpia, asegurándose de mover la cuchilla hacia atrás. Y cuarto, antes de liberar la presión, para garantizar un corte uniforme.La placenta se corta por la mitad para lograr la mejor orientación para la posterior visualización de las células madre hematopoyéticas placentarias. Luego, coloque una mitad de la placenta en la base del molde con el borde cortado en contacto con la superficie inferior del molde. Repita el procedimiento con un molde nuevo para la otra mitad.Para placenta de E 10.5, ambas mitades pueden colocarse en el mismo molde utilizando la misma técnica. Al verter el OCT en el molde, puede resultar difícil mantener la placenta en la orientación adecuada. Sujete la placenta en su lugar sosteniendo la mitad del tejido con pinzas para la placenta de E 10.5.Sostenga una mitad del tejido con pinzas y apoye la otra mitad del tejido contra la parte exterior de las pinzas. Luego, vierta lentamente la solución OCT como se describió para E 12.5. Una vez que el molde esté lleno de OCT, coloque rápidamente el molde sobre hielo seco.El OCT se volverá blanco al congelar rápidamente el tejido; coloque el molde en una bolsa de plástico pequeña y guárdelo inmediatamente en un congelador a menos un DC. A continuación se muestra una sección representativa de una placenta E 10.5. Es importante que sus secciones incluyan la lámina coriónica, mostrada en la parte inferior de la imagen, y el laberinto placentario, la región de la placenta que facilita el intercambio feto-materno y que se observa en el centro.Esta sección fue teñida con un anticuerpo contra CD31, que ha marcado de rojo el endotelio. Los trofoblastos mostrados en marrón están marcados por citokeratina. El laberinto alberga tanto vasos de la circulación fetal marcados en rojo como espacios sanguíneos maternos revestidos por los trofoblastos marrones.Las células azules son células madre y progenitoras hematopoyéticas positivas para CD41 que observan que se localizan en la vasculatura fetal. Acabamos de mostrarle cómo diseccionar y preparar una suspensión de células individuales de placenta de masa, así como también cómo identificar células madre hematopoyéticas placentarias mediante citometría de flujo. Además, le hemos mostrado cómo preparar secciones de tejido placentario para la visualización de células madre hematopoyéticas mediante inmunohistoquímica.Es importante prestar atención a algunos parámetros críticos al realizar estos procedimientos. Al hacer la disección placentaria, es fundamental trabajar rápidamente y mantener los embriones y las soluciones lo más frescas posible para conservar una viabilidad celular alta durante la preparación de la suspensión de células individuales. El grado de disociación mecánica previa y el tiempo de incubación durante el tratamiento enzimático son los factores más críticos que afectan la viabilidad y la salud celular.Y por último, al realizar inmunohistoquímica, la sobrefijación puede plantear problemas para algunos antígenos, mientras que, por otro lado, la subfijación puede provocar la destrucción del tejido. Eso es todo. Gracias por ver este video y buena suerte con sus experimentos.

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Investigación

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Biología

Este video muestra la forma de micro-disección del saco vitelino y la aorta-gonadal-mesonefros región a partir de embriones y el uso de la citometría de flujo para clasificar las células madre hematopoyéticas.

El aislamiento de las primeras células madre hematopoyéticas murinas saco vitelino y AGM

Un método para analizar la distribución de progenitores hematopoyéticos de médula ósea en citometría de flujo, así como para aislar eficazmente altamente purificadas células madre hematopoyéticas (HSC) se describe. El procedimiento de aislamiento se basa esencialmente en el enriquecimiento magnética de c-kit + células y células de clasificación para purificar las CMH para los estudios celulares y moleculares.

El análisis fenotípico y aislamiento de células madre hematopoyéticas murinas y progenitores comprometidos Lineage

Dos técnicas para aislar las gotas de lípidos celulares de 1) las células de levadura y 2) se presentan placentas humanas. La pieza central de ambos procedimientos es la centrifugación en gradiente de densidad, donde la capa flotante resultante que contiene las gotas puede ser visualizado fácilmente por el ojo, se extrae, y se cuantifica por análisis de Western Blot para la pureza.

El aislamiento de gotas de lípidos celulares: dos técnicas de purificación partir de células de levadura y placentas humanas

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Aislamiento de leucocitos de la interfaz humana Materno-fetal

En este trabajo se describe un protocolo para aislar y analizar los leucocitos infiltrantes de tejidos en la interfaz materno-fetal (útero, decidua y placenta) de ratones. Este protocolo mantiene la integridad de la mayoría de los marcadores de superficie celular y produce suficientes células viables para aplicaciones posteriores, incluido el análisis de citometría de flujo.

Aislamiento de leucocitos a partir de los tejidos murinos en la interfase materno-fetal

células madre y progenitoras hematopoyéticas (HSPC) se derivan de las células endoteliales especializadas (hemogenic) durante el desarrollo, sin embargo, se sabe poco sobre el proceso por el cual algunas células endoteliales especifican a convertirse en la formación de la sangre. Demostramos un método basado en citometría de flujo permite el aislamiento simultáneo de las células endoteliales y hemogenic HSPC de tejidos embrionarios murinos.

Aislamiento de las células murinas embrionarias Hemogenic endoteliales

En este documento se describen los métodos para la disección de tejidos fetales y maternas de placenta humana a término, seguido por el aislamiento y expansión de células madre mesenquimatosas / estroma (MSC) de estos tejidos.

Aislamiento y expansión de células madre mesenquimales / estromales derivadas de tejido de placenta humana

Aquí, se presenta un protocolo para la disección de cordón umbilical humano umbilical (CU) y la muestra de placenta fetal en cable de forro (CL), gelatina de Wharton (WJ), la unión de cordón placenta (CPJ), y placenta fetal (FP) para el aislamiento y caracterización de células estromales mesenquimales (MSCs) utilizando la técnica de cultivo de explantes.

Aislamiento y caracterización de las células mesenquimales del estroma de cordón umbilical humano y fetal Placenta

El objetivo de este protocolo es aislar las células progenitoras endoteliales de cordón umbilical. Algunas de las aplicaciones incluyen el uso de estas células como un biomarcador para identificar pacientes con riesgo cardiovascular, tratamiento de enfermedades isquémicas, y construye creando ingeniería de tejido vascular y del corazón la válvula.

Aislamiento de células endoteliales progenitoras de la sangre de cordón Umbilical humano

Este protocolo muestra un método para el aislamiento de las células decidual humanas primarias recogidas de las membranas fetales de la placenta de término que puede ser utilizada para una variedad de aplicaciones (es decir, inmunocitoquímica, citometría de flujo, etc.) con el objetivo de para estudiar el papel de diferentes poblaciones celulares en complicaciones del embarazo.

Aislamiento de células Decidual humanas primarias de las membranas fetales de la placenta de término

Presentamos un protocolo paso a paso para el aislamiento de células madre hematopoyéticas a largo plazo (LT-HSCs) y HSCs a corto plazo (ST-HSCs) utilizando el sistema reportero Hoxb5.

Método de aislamiento para células madre hematopoyéticas a largo y corto plazo

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