Name: 3d cell growth on engineered matrices
Uploaded: 2023-04-30T06:32:19.000Z
Duration: 9 min 35 s
Channel: JoVE

<div class="chapter_text" id="script_0">Histotypic culture de tissus permet aux cellules d’être cultivées en trois dimensions, en créant in vitro des morphologies de tissu qui imitent la fonction tissu réaliste, qui peut être utilisée comme constructions viables pour la réparation tissulaire. Ces cultures sont généralement des structures tridimensionnelles composées de cellules du même type cultivé à haute densité. Les trois dimensions structure, également connus comme l’échafaud, imite la matrice extracellulaire naturelle. Selon le type de cellule utilisé, échafaudages peuvent être conçus pour une application spécifique et généralement agissent comme modèle pour des tissus bio-mimétique. Cette vidéo va présenter les principes fondamentaux des cultures de tissus histotypic, une procédure d’isolement de cellules, et la fabrication et la cellularisation d’un tissu de soie poreux d’échafaudage pour imiter le tissu cardiaque.</div><div class="chapter_text" id="script_1">Tous les tissus sont constitués de deux éléments fondamentaux, la matrice extracellulaire et les cellules de tissu-spécifique qui l’habitent. La matrice extracellulaire est un réseau de protéines structurales qui créent un trois environnement tridimensionnel pour cellules à occuper, et les cellules qu’il contient sont censés récapituler les processus physiologiques natives du tissu. Actuellement, une technique courante utilisée pour les tissus de modèle est deux dimensions culture de tissus, où les cellules sont dispensés sur un substrat plat et autorisés à former une couche mince. En général, cette méthode n’est pas fiable pour le maintien d’un phénotype in vivo, les fonctions de certains organes et cellule à cellule ou cellule d’interactions contextuelles de substrat. Culture de tissus Histotypic soulage ces limitations en fournissant un échafaudage 3D pour les cellules à se développer, résultant en un réseau dense de cellules qui plus étroitement imite morphologies cellulaires natives et facilite le développement de réseaux intercellulaires réalistes et voies de communication. Une variété de réseaux de polymères 3D, y compris les tapis de soie hydrogels et électrofilées, offrent des moyens pratiques pour cellules de culture tissulaire spécifique en trois dimensions. Afin de remplir ces échafaudages, les cellules doivent être isolées. Les cellules primaires utilisés dans cette vidéo sont récoltées dans des tissus vivants, ce qui sont frit et ensuite digéré dans une solution d’enzyme pour séparer les cellules cibles de la matrice extracellulaire. Une fois que les cellules sont isolées, il y a deux techniques utilisées pour amorcer les échafaudages. La technique de gouttelettes implique pipetage une solution des cellules sur l’échafaud à une vitesse lente et constante. La deuxième, ou la technique de suspension cellulaire, submerge l’échafaud dans une suspension cellulaire. Souvent, l’échafaudage et la suspension sont secouées pour encourager la migration cellulaire dans la matrice. Les deux techniques créent bioingénierie à haute densité. Les procédures suivantes impliquera l’isolement des cellules cardiaques et la technique de suspension de cellules à créer un échafaudage spécifique des cellules cardiaque, qu’il conservera la morphologie tissulaire de cœur natif.</div><div class="chapter_text" id="script_2">Pour commencer le processus permettant d’isoler les cellules provenant de tissus de donneurs, commencez en veillant à ce que les instruments de travail zone et dissection sont stérilisés. Ensuite, placez un drap stérile sur la surface de travail dans le cabinet de bio-sécurité. Placer les instruments chirurgicaux stériles sur le drap sans y toucher et puis ouvrez une lame de bistouri stérile numéro 20. Après euthanasier le spécimen, stériliser la zone chirurgicale avec une compresse imbibée de Bétadine. Lorsque vous êtes prêt, sécuriser l’échantillon et commencer l’approche chirurgicale pour isoler le tissu d’intérêt. Dans ce cas, il sera le coeur. Une fois excisées, placer le tissu sur la glace dans la boîte de Pétri contenant du glucose de PBS. Enlever les résidus de sang ou du tissu conjonctif et ensuite transférer le tissu à une boîte de Pétri avec du glucose de PBS frais. Puis, à l’aide de micro-ciseaux stériles et forceps, mâcher soigneusement les échantillons de tissus en morceaux d’environ 1 millimètre cube. À l’aide d’une pipette, transférer les morceaux et la mémoire tampon dans un tube conique. Ensuite, retirez tout sauf 10 millilitres de tampon. Ajouter 7 millilitres de solution de collagènase et puis agiter le mélange à 37 ° c pendant 7 minutes. Puis, Pipetez doucement 10 fois pour séparer les morceaux de tissu. Laisser les morceaux à régler, puis aspirer le liquide et jetez-le. Ensuite, répétez la digestion et déposer délicatement la solution pour séparer les morceaux de tissu. Après que les pièces sont sont installés, retirer le surnageant et ramasser dans un tube conique séparé 50 millilitre. Puis, ajouter 10 millilitres de solution d’arrêt dans chaque tube conique contenant le surnageant pour arrêter la digestion.</div><div class="chapter_text" id="script_3">Maintenant que les cellules primaires ont été isolés, nous allons fabriquer un échafaudage de tissu soie poreux. Pour commencer, versez 30 millilitres de la solution de soie dans un moule. Ensuite, disperser uniformément le 60 grammes de chlorure de sodium tamisé sur la solution. Ensuite, laissez la soie à polymériser sans agitation à température ambiante pendant 48 heures. Ensuite, placez le moule dans un four de 60 degrés pendant 1 heure à finaliser la réticulation et évaporer tout liquide restant. Une fois polymérisé, plonger le moule dans un bécher d’eau distillée pendant 48 heures à coller comme une sangsue sur le sel. Ensuite, retirez le moule de l’échafaud et découper des petits disques avec une biopsie de 5 millimètres punch. Couper les disques jusqu'à une hauteur de 2 millimètres et enfin, enlever les centres de chaque pièce avec un poinçon de biopsie de 2 millimètres de créer un cercle. Enfin, autoclave les échafaudages dans un cycle humide pendant 20 minutes.</div><div class="chapter_text" id="script_4">Avec l’échafaud préparé, commençons la cellule ensemencement des processus. Tout d’abord, placez un échafaudage stérile / puits dans une plaque 96 puits. Ajoutez ensuite, le milieu de culture cellulaire pour immerger les échafaudages et incuber à 37 degrés Celsius dans un incubateur de culture tissulaire pour équilibrer leur pendant au moins 30 minutes. Après incubation, aspirer l’excès du milieu et puis ajoutez la suspension de cellules isolées de primaire pour les échafaudages. Ensuite, remettez la plaque dans l’incubateur et le laisser une nuit pour les cellules à fixer sur les échafaudages. Le lendemain matin, aspirer les cellules non inscrits avec précaution et remplacer par 200 microlitres de milieu de culture de cellules fraîches / puits. L’échafaud qui en résulte est une construction poreuse avec une densité cellulaire élevée prête à être utilisé.</div><div class="chapter_text" id="script_5">Maintenant que vous avez appris comment effectuer les vitroplants histotypic, regardons quelques applications pratiques de ces matériaux. Histotypic culture de tissus peut créer des micro-environnements cellulaires qui imitent les tissus natifs et sont ainsi en mesure de fournir un modèle adéquat pour l’étude du comportement cellulaire concernant un type de cellule unique. Par exemple, fibre 3D dans les échafaudages, qui avec plus de précision, imiter la niche de cellules souches trouvée in vivo, peut être ensemencée avec des cellules souches pluripotentes à dépister les indices biologiques et de déterminer leurs effets sur la différenciation des cellules souches. Ce travail peut finalement fournir une meilleure compréhension de comment les cellules souches se différencient et peuvent offrir un aperçu favorisant la différenciation cellulaire et la régénération pour applications d’ingénierie tissulaire. Comme cultures dynamiques, climatisation mécanique peut également améliorer l’échafaud de tissu 3D en la soumettant à des charges mécaniques divers auxquels peuvent être confrontés en vivo naturelle des tissus. En appliquant la compression et charges biaxiales pendant la croissance des cellules, la morphologie des cellules et la matrice extracellulaire est modifiée pour tenir compte de ces contraintes mécaniques. Il en résulte un échafaudage préconditionnés bioingénierie tissulaire avec une structure cellulaire qui ressemble à tissu natif, ce qui est idéal pour l’implantation dans des domaines auxquels peuvent être confrontés les forces mécaniques similaires. Enfin, constructions de l’ingénierie tissulaire peuvent également servir à remplacer ou réparer les défauts de tissu. Pour y parvenir, l’échafaud de tissu doit être d’abord vascularisé, permettant ainsi au sang se déplacer librement à travers la construction. Une fois que vascularisé, l’échafaudage peut être transféré et implanté dans le défaut de tissu pour lancer la réparation. Greffe réussie peut être confirmée plus tard par le biais de l’histologie, qui révèle si oui ou non le tissu construire complètement réparé la zone endommagée.</div><div class="chapter_text" id="script_6">Vous avez juste regardé introduction de Jove pour culture de tissus histotypic. Vous devez maintenant comprendre comment de simples 3D structures sont préparés, comment les cellules primaires sont isolées et ensemencées sur un échafaudage et les différentes applications de ces cultures dans le domaine de la bio-ingénierie. Merci de regarder.</div>

culture de cellules dans un environnement tridimensionnel

Bien vitroplants à deux dimensions a été commune pendant un certain temps, les cellules se comportent de façon plus réaliste dans une culture en trois dimensions et plus imite étroitement les tissus natifs. Cette vidéo présente la culture de tissus histotypic, où la croissance et la propagation d’une lignée de cellules se fait dans une matrice tridimensionnelle ingénierie pour atteindre haute densité cellulaire. Ici, nous montrons la récolte des cellules provenant de tissus de donneurs, suivi par culture cellulaire sur une construction machinée.

Culture de cellules dans un environnement tridimensionnel

Although two-dimensional tissue culture has been common for some time, cells behave more realistically in a three-dimensional culture, and more closely ...

La culture tissulaire histotypique permet de cultiver des cellules en trois dimensions, créant ainsi des morphologies tissulaires in vitro qui imitent étroitement la fonction tissulaire réaliste, qui peuvent être utilisées comme constructions viables pour la réparation tissulaire. Ces cultures sont généralement des structures tridimensionnelles composées d’un seul type de cellule cultivé à haute densité. La structure tridimensionnelle, également connue sous le nom d’échafaudage, imite la matrice extracellulaire naturelle. Selon le type de cellule utilisé, les échafaudages peuvent être conçus pour une application spécifique et servent généralement de modèle pour les tissus biomimétiques. Cette vidéo présentera les principes fondamentaux des cultures de tissus histotypiques, une procédure d’isolement des cellules, ainsi que la fabrication et la cellularisation d’un échafaudage de tissu de soie poreux pour imiter le tissu cardiaque. Tous les tissus sont constitués de deux composants fondamentaux, la matrice extracellulaire et les cellules spécifiques aux tissus qui l’habitent. La matrice extracellulaire est un réseau de protéines structurelles qui créent un environnement tridimensionnel que les cellules peuvent occuper, et les cellules qu’elle contient sont censées récapituler les processus physiologiques natifs du tissu. Actuellement, une technique couramment utilisée pour modéliser les tissus est la culture tissulaire bidimensionnelle, où les cellules sont distribuées sur un substrat plat et laissées former un film mince. En général, cette méthode n’est pas fiable pour maintenir un phénotype in vivo, des fonctions spécifiques à un organe et des interactions contextuelles de cellule à cellule ou de cellule à substrat. La culture tissulaire histotypique atténue ces limitations en fournissant un échafaudage 3D sur lequel les cellules peuvent se développer, ce qui permet d’obtenir un réseau dense de cellules qui imite plus fidèlement les morphologies cellulaires natives et facilite le développement de réseaux intercellulaires et de voies de communication réalistes. Une variété de réseaux de polymères 3D, y compris des hydrogels et des tapis de soie électrofilés, offrent des moyens pratiques de cultiver des cellules spécifiques aux tissus en trois dimensions. Afin de peupler ces échafaudages, les cellules doivent être isolées. Les cellules primaires utilisées dans cette vidéo sont récoltées à partir de tissus vivants, qui sont hachés puis digérés dans une solution enzymatique pour séparer les cellules cibles de la matrice extracellulaire. Une fois les cellules isolées, deux techniques sont utilisées pour ensemencer les échafaudages. La technique des gouttelettes consiste à pipeter une solution de cellules sur l’échafaudage à un rythme lent et constant. La seconde, ou technique de suspension cellulaire, immerge l’échafaudage dans une suspension cellulaire. Souvent, l’échafaudage et la suspension sont secoués pour encourager la migration cellulaire dans la matrice. Les deux techniques aboutissent à des constructions bio-modifiées avec des densités cellulaires élevées. Les procédures suivantes impliqueront l’isolement des cellules cardiaques et la technique de suspension cellulaire pour créer un échafaudage spécifique aux cellules cardiaques, car il conservera la morphologie native du tissu cardiaque. Pour commencer le processus d’isolement des cellules du tissu du donneur, commencez par vous assurer que la zone de travail et les instruments de dissection sont stérilisés. Ensuite, placez un champ stérile sur le plan de travail dans l’enceinte de biosécurité. Placez les instruments chirurgicaux stériles sur le champ sans les toucher, puis ouvrez une lame de scalpel stérile numéro 20. Après avoir euthanasié l’échantillon, stérilisez la zone chirurgicale avec un tampon de gaze imbibé de bétadine. Lorsque vous êtes prêt, fixez l’échantillon et commencez l’intervention chirurgicale pour isoler le tissu d’intérêt. Dans ce cas, ce sera le cœur. Une fois excisés, placez le tissu sur de la glace dans la boîte de Pétri contenant du glucose PBS. Retirez tout résidu de sang ou de tissu conjonctif, puis transférez le tissu dans une boîte de Pétri avec du glucose PBS frais. Ensuite, à l’aide de micro-ciseaux stériles et de pinces, hachez soigneusement les échantillons de tissus en morceaux d’environ 1 millimètre cube. À l’aide d’une pipette, transférez les morceaux et le tampon dans un tube conique. Ensuite, retirez tout sauf 10 millilitres de tampon. Ajoutez 7 millilitres de solution de collagénase, puis secouez le mélange à 37 degrés Celsius pendant 7 minutes. Ensuite, pipetez doucement 10 fois pour briser les morceaux de tissu. Laissez les morceaux se déposer, puis aspirez le liquide et jetez-le. Ensuite, répétez la digestion et pipetez doucement la solution pour briser les morceaux de tissu. Une fois que les morceaux se sont déposés, prélevez le surnageant et rassemblez-le dans un tube conique séparé de 50 millilitres. Ensuite, ajoutez 10 millilitres de solution STOP à chaque tube conique contenant du surnageant pour arrêter la digestion. Maintenant que les cellules primaires ont été isolées, fabriquons un échafaudage de tissu de soie poreux. Pour commencer, versez 30 millilitres de la solution de soie dans un moule. Ensuite, répartissez uniformément 60 grammes de chlorure de sodium tamisé sur la solution. Ensuite, laissez la soie polymériser sans être dérangée à température ambiante pendant 48 heures. Ensuite, placez le moule dans un four à 60 degrés pendant 1 heure pour finaliser la réticulation et évaporer tout liquide restant. Une fois polymérisé, plongez le moule dans un bécher d’eau distillée pendant 48 heures pour extraire le sel. Ensuite, retirez l’échafaudage du moule et coupez de petits disques avec un poinçon de biopsie de 5 millimètres. Coupez les disques à une hauteur de 2 millimètres, et enfin, retirez le centre de chaque pièce avec un poinçon de biopsie de 2 millimètres pour créer un anneau. Enfin, autoclavez les échafaudages dans un cycle humide pendant 20 minutes. Une fois l’échafaudage préparé, commençons le processus d’ensemencement cellulaire. Tout d’abord, placez un échafaudage stérile par puits dans une plaque à 96 puits. Ensuite, ajoutez un milieu de culture cellulaire pour immerger les échafaudages et incubez à 37 degrés Celsius dans un incubateur de culture tissulaire pour les équilibrer pendant au moins 30 minutes. Après l’incubation, aspirez l’excès de milieu, puis ajoutez la suspension de cellules primaires isolée aux échafaudages. Ensuite, remettez la plaque dans l’incubateur et laissez les cellules se fixer aux échafaudages pendant la nuit. Le lendemain matin, aspirez soigneusement les cellules non attachées et remplacez-les par 200 microlitres de milieu de culture cellulaire frais par puits. L’échafaudage qui en résulte est une construction poreuse avec une densité cellulaire élevée prête à l’emploi. Maintenant que vous avez appris à effectuer une culture tissulaire histotypique, examinons quelques applications pratiques de ces matériaux. La culture tissulaire histotypique peut créer des micro-environnements cellulaires qui imitent les tissus natifs et, par conséquent, sont en mesure de fournir un modèle approprié pour l’étude du comportement cellulaire concernant un seul type de cellule. Par exemple, les fibres 3D dans les échafaudages, qui imitent plus précisément la niche des cellules souches trouvées in vivo, peuvent être ensemencées avec des cellules souches pluripotentes pour dépister les signaux biologiques et déterminer leurs effets sur la différenciation des cellules souches. Ces travaux pourraient finalement permettre de mieux comprendre comment les cellules souches se différencient et d’améliorer la différenciation et la régénération cellulaires pour des applications d’ingénierie tissulaire. À l’instar des cultures dynamiques, le conditionnement mécanique peut également améliorer l’échafaudage tissulaire 3D en le soumettant à diverses charges mécaniques que les tissus naturels peuvent subir in vivo. En appliquant des charges de compression et biaxiales pendant la croissance cellulaire, la morphologie cellulaire et la matrice extracellulaire sont modifiées pour refléter ces charges mécaniques. Il en résulte un échafaudage tissulaire bio-modifié préconditionné avec une structure cellulaire ressemblant à du tissu natif, ce qui le rend idéal pour l’implantation dans des zones qui peuvent subir des forces mécaniques similaires. Enfin, les constructions tissulaires modifiées peuvent également être utilisées pour remplacer ou réparer les défauts tissulaires. Pour y parvenir, l’échafaudage tissulaire doit d’abord être vascularisé, permettant ainsi au sang de circuler librement à travers la construction. Une fois vascularisé, l’échafaudage peut être transféré et implanté dans le défaut tissulaire pour initier la réparation. La réussite de la greffe peut être confirmée plus tard par l’histologie, qui révèle si la construction tissulaire a complètement réparé la zone endommagée. Vous venez de regarder l’introduction de Jupiter à la culture tissulaire histotypique. Vous devez maintenant comprendre comment des structures 3D simples sont préparées, comment les cellules primaires sont isolées et ensemences sur un échafaudage, et les diverses applications de ces cultures dans le domaine de la bio-ingénierie. Merci d’avoir regardé.

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Histotypic Tissue Culture

3d cell growth on engineered matrices

Histotypic tissue culture uses an engineered three-dimensional matrix to grow and propagate cells. Compared with common two-dimensional tissue culture, cells in a 3D setting behave more realistically and better mimic native tissue. The method is useful when high cell density is needed.

The process begins by harvesting cells from donor tissue. Those cells are then placed onto an engineered construct for culture. This setup supports growth in a three-dimensional space instead of a flat surface.

3D Cell Growth on Engineered Matrices

overview of biomaterials

Biomaterials in Medicine and Engineering

Biomaterials are materials designed to interact well with biological organisms or molecules. They may come from an organism, be produced by an organism, or be made as a synthetic polymer. Because of these properties, engineers use biomaterials in medicine and other biological applications. These materials are used in tissue engineering, biosensing, and drug delivery. Tissue engineering uses materials to support the growth or repair of tissues. Biosensing uses materials to detect biological...

collagen hydrogels

Porcine Collagen for Tissue Engineering

Collagen is a useful biomaterial with uses that go beyond the lab. It has also found commercial use in photography. In tissue engineering, collagen can be turned into hydrogels that give engineered tissue support and structure. This page follows the path from porcine skin to a collagen hydrogel. Porcine skin is used as the source of collagen. The material is then prepared for use in tissue engineering applications. The video also shows several applications of collagen and the methods used to...

electrospinning of silk biomaterials

Silk Cocoon Processing for Fiber Mats

Silk cocoons can be processed into a soluble material that is useful for making biomaterials. Silk fibers have been used for fabrics and threads for centuries, but turning them into a versatile pre-polymer solution is a newer technique. That solution can then be shaped into materials with controllable mechanical properties. The process begins with silk worm cocoons. The silk is solubilized, or dissolved, so it can be handled as a liquid-like solution. The video then shows how that silk...

overview of biomem devices

BioMEMs in Diagnostics and Miniaturization

Bio-microelectromechanical systems, or BioMEMs, are microscale devices used in diagnostic settings. They work with very small sample and reagent volumes in vivo and in vitro, which means inside a living body or outside it in a lab. These compact systems support bioengineering research and help make diagnostic tools more efficient. BioMEMs can carry out functions such as filtration, sensing, and synthesis on a tiny scale. Using less material can lower costs and improve sensitivity. The...

microfabrication via photolithography

Photolithography for Silicon Wafer Patterning

Photolithography is a common microfabrication method used to pattern a silicon wafer. It uses light to transfer a design onto the wafer surface. This process helps form the basis for many BioMEM devices. The page also shows how photolithography is carried out in a cleanroom. Cleanroom steps are important because they support careful fabrication of small, detailed features. The video ends by introducing applications of this process in BioMEM device production.

soft lithography

Photolithography for Microfluidic Device Making

Photolithography and soft lithography are used to make BioMEM devices such as microfluidic channels. A microscale pattern is copied by curing an elastomeric polymer over a 3D structure. The result is a polymer piece that can serve as part of a biological device. These polymer structures are then used to build a range of tools. Some are microfluidic channels for biosensing applications. Others are microscale bioreactors that let scientists visualize micro-colonies. The process also shows how...

overview of bioprocess engineering

Bioreactors and Protein Production in Bioprocessing

Bioprocessing uses living organisms to make a desired target product. In many cases, that product is a protein made in a bioreactor, which is a controlled vessel for growing cells. This process often relies on genetically engineered organisms. Engineers design the system so the cells can produce proteins at large scale. That approach is central to making biotherapeutics, which are drugs made from biological materials. Biotherapeutics are important medicines for complex diseases such as...

synthetic biology

Engineering Cells to Produce Proteins

Synthetic biology is a bioengineering method for programming cells to make useful products. In many cases, the goal is to genetically modify an organism so it can produce large amounts of a protein. That protein may already be made by the cell, or it may come from a newly inserted DNA sequence. The process depends on changing an organism’s genetic material. This is done with transformation or transfection, two common ways to introduce DNA into cells. The video also shows how this work is...

batch and continuous bioreactors

Growing Cells in Bioreactors

Bioreactors are used to grow organisms in large volumes. This makes it possible to produce large amounts of a target product. In laboratory and bioengineering settings, they provide a controlled place for cell growth and product formation. The two main reactor types are batch reactors and continuous reactors. A batch reactor contains all of the materials needed for cell growth at the start. A continuous reactor has inlet and outlet ports, so fresh growth media can be added while cell waste is...

overview of biosensing

How Biosensors Detect Molecules

Biosensors detect biological molecules and chemical contaminants by combining biology with physical measurement. They can identify targets such as proteins or cells, as well as non-biological molecules like chemicals or contaminants. This makes biosensing a useful field for studying and monitoring many kinds of samples. These devices rely on different signal types to find the target molecule. Some biosensors use electrical signals, while others depend on optical, electrochemical, or mechanical...

electrochemical biosensing

Glucose Sensors and Cancer Detection

Electrochemical biosensors detect target molecules by measuring an oxidation-reduction event. That signal changes when a molecule binds to the sensor surface. These sensors helped shape modern biosensing after the first glucose biosensor was invented. The glucose biosensor is a key example of this technology. It shows how electrochemical sensing can track a biological target through a measurable electrical change. The same basic idea also helps explain how electrochemical biosensors can be...

optical biosensing

Detecting Molecules with Light

Optical biosensors detect target molecules with light. They monitor binding by reading an optical signal from the sample. This makes them useful for seeing when a target molecule is present. Some optical biosensors use a label molecule. The label creates a measurable signal, such as fluorescence. Other optical biosensors are label-free and track changes in optical properties, such as refractive index, as binding occurs. This page introduces both label and label-free optical biosensors. It...

overview of tissue engineering

Building Artificial Tissue with Biomaterials

Tissue engineering uses biomaterials, specific cells, and growth factors to build artificial tissue. These engineered tissue constructs are designed for tissue repair and, in some cases, organ replacement. The field focuses on how to make tissue work like natural tissue. It begins with a scaffold, which is a structure that supports cell growth. Cells are then added to the scaffold, and growth factors help encourage proliferation, or cell multiplication. The video also outlines common methods...

histotypic tissue culture

Histotypic tissue culture uses an engineered three-dimensional matrix to grow and propagate cells. Compared with common two-dimensional tissue culture, cells in a 3D setting behave more realistically and better mimic native tissue. The method is useful when high cell density is needed. The process begins by harvesting cells from donor tissue. Those cells are then placed onto an engineered construct for culture. This setup supports growth in a three-dimensional space instead of a flat surface.

whole organ tissue culture

Lung Decellularization and Recellularization

Whole organs can be cultured ex vivo using specialized bioreactors to support repair or replacement of entire organs. In this approach, a donor organ is first stripped of all cells. What remains is the three-dimensional structure of the organ, which can then be repopulated with new cells. The lung is the example shown here. The method uses a dynamic culture system that provides mechanical stimulation, similar to what the organ experiences in the body. This type of culture helps induce native...

bioengineering

Cette collection couvre les concepts fondamentaux de la bio-ingénierie, comprenant la production de biomatériaux, la culture en 3 dimensions et la culture d'organes, les techniques de biotraitement et les domaines des systèmes complexes que sont les bioMEM et la biodétection.

Explore histotypic tissue culture, where cells are harvested from donor tissue and grown on an engineered 3D matrix to better mimic native tissue.

3D Cell Growth on Engineered Matrices

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