Article de méthode

Enregistrement du potentiel de champ local des deux hémisphères du cerveau de la souris

8 juillet 2025

Dans cet article

Résumé

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Source : Chen, Y., et al. Évaluation de la latéralisation de l’hémisphère avec enregistrement bilatéral du potentiel de champ local dans le cortex moteur secondaire des souris. J. Vis. Exp. (2019).

Cette vidéo démontre l’enregistrement in vivo du potentiel de champ local (LFP) à partir de zones M2 bilatérales du cerveau de la souris. Une souris anesthésiée est fixée et préparée pour la procédure. Pour enregistrer les LFP, insérez des microélectrodes dans les coordonnées cibles des zones bilatérales M2, qui sont responsables de mouvements moteurs complexes.

Protocole

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Toutes les procédures impliquant des modèles animaux ont été examinées par le comité institutionnel local de protection des animaux et le comité d’examen vétérinaire JoVE.

1. Anesthésie et chirurgie animales

  1. Pesez et anesthésiez la souris avec votre régime d’anesthésie approuvé par votre comité local de protection des animaux.
  2. Effectuez un pincement de la queue ou des orteils avec une pince pour confirmer une anesthésie profonde avant la chirurgie.
  3. Positionnez la souris dans un appareil stéréotaxique et fixez sa tête.
  4. Appliquez une pommade pour les yeux sur les deux yeux pour les garder humides. Suivez les directives locales en matière de soins aux animaux concernant l’analgésie préopératoire et postopératoire.
  5. Rasez les cheveux à l’aide d’une tondeuse chirurgicale. Faites une petite incision (12-15 mm) au milieu de la zone chirurgicale exposée avec des ciseaux. À l’aide d’une pince, éloignez doucement le cuir chevelu de la ligne médiane.
  6. Séparez doucement la peau et éliminez les tissus résiduels. Nettoyez le crâne à l’aide de cotons-tiges enduits de peroxyde d’hydrogène.
  7. Percez deux petits trous de rayons de 1,0 à 1,5 mm sur les côtés gauche et droit du crâne pour permettre l'insertion des microélectrodes d'enregistrement dans les régions M2 sous un stéréomicroscope (Figure 1A).
    note: Localisations stéréotaxiques de M2 bilatérale : 1,94 mm en avant de la bregma, 1,0 mm latéralement à la ligne médiane et 0,8-1,1 mm ventrale à la dure-mère.
  8. Retirez délicatement la dure-mère à l’aide d’une aiguille en tungstène.
  9. Tirez des micropipettes en verre borosilicate (diamètre extérieur : 1,0 mm) comme microélectrodes enregistreuses avec une résistance de 1-2 MΩ.
  10. Insérez deux microélectrodes d’enregistrement séparées remplies de NaCl 0,5 M dans les trous à l’aide de micromanipulateurs mécaniques (à 60°, Figure 1B).

2. Enregistrements LFP dans M2 bilatéral de souris

  1. Abaissez lentement les électrodes en verre gauche et droite jusqu’aux coordonnées appropriées de M2 bilatéral (Figure 1C).
  2. Pour le contrôle de la qualité, testez la résistance de chaque électrode à l’aide de l’amplificateur différentiel avant de capturer les LFP.
  3. Réglez le processus d’enregistrement sur un passe-haut de 0,1 Hz et un passe-bas de 1 000 Hz avec une amplification de 1 000x.
  4. Collectez des données LFP brutes numérisées d’au moins 60 s d’activités spontanées dans un état stable, avec des souris respirant uniformément à une fréquence respiratoire de 2 respirations par seconde sous anesthésie.
  5. Après l’enregistrement, soulevez lentement les électrodes du cerveau, puis euthanasiez les souris par luxation cervicale rapide.
  6. Enregistrez les données et analysez-les hors ligne.

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Résultats

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Graphique 1 : Schéma de la procédure d’enregistrement LFP simultané. (A) Souris stéréotaxique avec le crâne exposé et la dure-mère enlevée pour l’enregistrement bilatéral in vivo des LFP dans M2 gauche et droit. (B) Deux microélectrodes de verre en contact avec la surface corticale dans le trou percé simultanément. (C) Enregistrement des microélectrodes et des fils Ag/AgCl en tant qu’électr...

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Déclarations de divulgation

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Aucun conflit d’intérêts n’a été déclaré.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Amplificateur différentiel AC/DCSystèmes A-MModèle 3000
Convertisseur analogique numériqueCambridge Electronic Design Ltd.Micro1401
Micropipettes en verre borosilicateEntreprise d’équipement expérimental d’enseignement du printemps de NanjingRéférence 161230Diamètre extérieur : 1,0 mm
Extracteur de microélectrodesNarishigePC-10
NaClUsine de réactifs chimiques de GuangzhouRéférence 7647-14-5
Porte-microélectrode à goupilleWorld Precision Instruments, INC.MEH3SW10
Crampon2Cambridge Electronic Design Ltd.
StéréomicroscopeZeissRéférence 435064-9020-000
Appareil stéréotaxiqueRWD Sciences de la vieRéférence 68045
uréthaneSigma-AldrichRéférence 94300

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Mots-clés

Enregistrement bilat ralcadre st r otaxiqueinsertion de micro lectrodeslat ralisation h misph riquecortex moteur secondairesouris anesth si etest de r sistance des lectrodesablation de la dure m re

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