Toutes les procédures impliquant des modèles animaux ont été examinées par le comité institutionnel local de protection des animaux et le comité d’examen vétérinaire JoVE.
1. Animaux utilisés pour l’administration intranasale sous anesthésie par inhalation
- Hébergez les souris expérimentales dans des cages en acier inoxydable sous un cycle lumière/obscurité de 12 heures (lumière de 8h00 à 20h00), avec une température contrôlée maintenue à 23 ± 1°C, une humidité de 50 % ± 10 % et un accès ad libitum à la nourriture et à l’eau.
- Avant l’expérimentation, anesthésier les souris par inhalation d’isoflurane à 2 %, après l’initiation à une concentration de 4 %. Confirmez le niveau d’anesthésie requis en vérifiant la disparition du redressement de surface.
2. Préparation de la solution d’administration
- Préparez une solution d’administration de [14C]-inuline (50 μM, 0,5 μCi/mL par souris) en la diluant dans une solution saline tamponnée au phosphate, et conservez-la à 4 °C jusqu’à ce qu’elle soit utilisée.
3. Administration intranasale pour souris
- Méthode de micropipette à l’aide d’un masque d’inhalation temporairement ouvrable (Figure 1)
- Fixez les souris en position couchée sur un tableau de liaison en collant leurs membres sous anesthésie par inhalation avec de l’isoflurane à 2 % (Figure 1A).
- Administrer un volume total de solution d’administration de 25 μL à chaque souris à intervalles de 30 secondes, par le biais de doses de 1 à 2 μL administrées alternativement dans les narines gauche et droite pendant que les souris sont fixées sous anesthésie par inhalation (figures 1B et C).
- Remarque : Les gaz anesthésiques résiduels sont récupérés par des moyens actifs (hotte, enceinte de biosécurité à conduit rigide, aspirateur, etc.) lorsque le masque est ouvert et par des moyens passifs (bidon de gaz anesthésique résiduaire) lorsqu’il est fermé.
- Méthode de canulation inverse du côté des voies respiratoires à travers l’œsophage (Figure 2)
- Fixez les souris en position couchée sur un tableau en liège en collant leurs membres sous anesthésie par inhalation avec 2 % d’isoflurane.
- Les poils du cou sont rasés et préparés par une application de bétadine ou de chlorhexidine, suivie d’un rinçage à l’alcool.
- Exposez la trachée et l’œsophage en élargissant la peau sous la gorge à l’aide d’une pince après avoir fait une petite incision (1,5 cm) avec des ciseaux.
- Faites une incision (1 mm) dans la trachée à l’aide de ciseaux.
- Insérez une canule (diamètre intérieur : 0,58 mm, diamètre extérieur : 0,965 mm) sur une longueur de 1,2 cm et fixez l’extrémité opposée de la canule à l’intérieur du masque d’inhalation.
- Faites une incision (1 mm) dans l’œsophage à l’aide de ciseaux, insérez une canule (diamètre intérieur : 0,28 mm, diamètre extérieur : 0,61 mm) sur une longueur de 1,4 cm vers la partie postérieure de la cavité nasale, et ligaturez-la (Figure 2A et B). Remarque : Les procédures 3.2.2 à 3.2.4 ont été exécutées au microscope stéréoscopique à un grossissement de ×10.
- Fixez une aiguille (27G × 1/2) à une seringue de 1 mL remplie d’une solution d’administration et connectez-la à un micro-pousse-seringue programmable.
- Connectez l’aiguille ci-dessus à la canule qui a été insérée dans l’œsophage en 3.2.5 (Figure 2C).
- Administrer un volume total de 25 μL [14C]-solution d’inuline à un débit constant (5 μL/min) (figures 2C et 2D).