Multiple-Cible Le traçage est un algorithme maison développé pour le suivi individuel au sein de molécules marquées de la membrane plasmique des cellules vivantes. Efficacement détecter, évaluer et le traçage des molécules au cours du temps à haute densité de fournir un outil convivial, outil exhaustif visant à étudier la dynamique des membranes nanométriques.
Notre objectif est d'obtenir une description complète des processus moléculaires survenant au niveau des membranes cellulaires dans différentes fonctions biologiques. Nous visons à caractériser l'organisation complexe et dynamique de la membrane plasmique au niveau d'une seule molécule, en développant des outils d'analyse dédiés à une particule de suivi (SPT) à haute densité: Multiple-Cible Tracing (MTT) 1. Simple-molécule vidéomicroscopie, offrant milliseconde et nanométrique résolution 1-11, permet une représentation détaillée de 12-14 organisation de la membrane par cartographier de façon précise des descripteurs tels que la localisation cellulaire des récepteurs, la mobilité, l'accouchement ou des interactions.
Nous avons revisité SPT, à la fois expérimentalement et algorithmiquement. Les aspects expérimentaux, dont l'optimisation de configuration et d'étiquetage des cellules, avec un accent particulier sur la densité pour atteindre l'étiquetage le plus élevé possible, afin de donner un aperçu dynamique de la dynamique moléculaires de las il se produit dans la membrane. Questions algorithmiques concernés chaque étape utilisée pour la reconstruction de trajectoires: la détection des pics, l'estimation et la reconnexion, abordés par des outils spécifiques de 15,16 analyse d'image. La mise en œuvre de déflation après la détection permet pics sauvetage initialement masqué par des pics voisins, plus forts. Fait à noter, l'amélioration de la détection influe directement sur la reconnexion, en réduisant les écarts dans les trajectoires. Les performances ont été évaluées à l'aide de Monte-Carlo pour la densité de l'étiquetage différents et des valeurs de bruit, qui représentent généralement les deux limitations majeures pour les mesures parallèles à haute résolution spatiotemporelle.
La précision nanométrique 17 obtenues pour des molécules simples, en utilisant soit successives marche / arrêt optique photocommutation ou non linéaire, peut fournir des observations exhaustifs. C'est la base de méthodes nanoscopie 17 de telle sorte que TEMPÊTE 18, PALM 19,20, 21 ou RESOLFT STED 22,23, which peut souvent exiger des échantillons d'imagerie fixes. La tâche essentielle est la détection et l'estimation de la diffraction limitée pics émanant de simples-molécules. Par conséquent, fournir des hypothèses adéquates telles que la manipulation une précision constante de position au lieu du mouvement brownien, le MTT est carrément adapté pour des analyses nanoscopiques. En outre, le MTT peut fondamentalement être utilisé à n'importe quelle échelle: non seulement pour les molécules, mais aussi pour les cellules ou les animaux, par exemple. Par conséquent, le MTT est un algorithme de suivi puissante qui trouve des applications à l'échelle moléculaire et cellulaire.
Dans cette vidéo, nous présentons une pleine expérience unique de suivi des particules, en utilisant quantiques points destinés à un récepteur membranaire spécifique. L'objectif principal de cette expérience consiste à discriminer les différents types de comportements de diffusion moléculaire mesurées au sein de la membrane plasmique des cellules vivantes. En effet, les mouvements moléculaires qui se posent sur la membrane peut généralement s'écarter de la diffusion brownienne en étant linéairement ordonné ou confiné à l'intérieur nanodomaines 26-29, par exemple. Nous visons à la fois à la suite que de nombreux récepteurs que techniquement possible, de d....
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Dans une particule de suivi, à côté des éléments de cellules et la microscopie, l'analyse représente une partie substantielle de l'ouvrage. Cela répond à l'algorithme utilisé pour effectuer les trois tâches principales: la détection, l'estimation et la reconnexion des pics sur chaque trame. Mais l'aspect conséquente de ce travail réside dans l'élaboration de l'algorithme lui-même, qui peut être adapté pour toute nouvelle enquête dédiée, essentiellement pour les dernières, les étapes supplémen.......
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Nous remercions les membres de notre équipe, en particulier Blache MC pour l'assistance technique, ainsi que M et B Irla Imhof, pour leur soutien et des discussions fructueuses. Les chiffres de la déflation et le confinement reproduit avec la permission de Nature Methods. Ce projet est soutenu par des subventions institutionnelles du CNRS, l'INSERM et l'Université de Marseille, et par des subventions spécifiques de la Région Provence-Alpes-Côte-d'Azur, l'Institut National du Cancer, l'Agence Nationale de la Recherche (ANR-08-CPV- 0034-02, l'ANR 2010 BLAN 1214 01) et la Fondation pour la Recherche Médicale (FRM Equipe labélisée-2009). VR es....
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Materials
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Name
Company
Catalog Number
Comments
Réactif
Entreprise
Numéro de catalogue
Quantité
Cos-7 lignée cellulaire
ATCC
CRL-1651
5000 cellules par puits
HBSS sans Ca 2 +
GIBCO
14175
1 ml
0,05% d'EDTA trypsine
GIBCO
25300
1 ml
8-même Lab-tek
NUNC
155441
1
Qdot-605 streptavidine
Invitrogen
Q10101MP
20 mM
Fab biotinylé (pour la synthèse de Fab, voir référence 21)
Fab de mAb 108
ATCC
HB-9764
200 pg
NHS-biotine
Thermo Scientific
21435
18,5 pg
Remplissez moyennes
DMEM
GIBCO
41965
500 ml
Sérum fœtal bovin
SIGMA
F7524
50 ml
L-glutamine
GIBCO
25030
5 ml
HEPES
GIBCO
15630
5 ml
Pyruvate de sodium
GIBCO
11360
5 ml
Imagerie moyennes
HBSS avec Ca 2 +
GIBCO
14025
25 ml
HEPES
GIBCO
15630
250 pi
1 "> ÉquipementEntrepriseRéférence Microscope inversé Nikon Eclipse TE2000U Lampe fluorescente Nikon Intensilight C-HGFIE 1,3 NA 100x objectif Nikon Plan Fluor 1,30 1,49 NA 100x objectif Nikon APO FRBR 1,49 Appareil photo Roper Scientific Cascade 512 B Caisson thermostaté Services d'imagerie de la vie La Boîte
Annexe: exemple de script de l'analyse complémentaire MTT
fonction MTT_example (file_name) Exemples%%% de base montrant la façon de récupérer les résultats de sortie MTT %%% Pour tracer chaque trace et de construire l'histogramme %%% D'intensités de fluorescence
si nargin <1% ne file_name fourni? fichiers = dir ('* stk.'); si isempty (fichiers), disp ('pas de données dans le répertoire en cours »), retour à la fin . file_name = fichiers (1) le nom; par défaut%: le premier fichier stk disp (['aide' nom_fichier 'par défaut']) fin
file_param = [file_name '_tab_param.dat']; fichier de sortie%
Les données%% de charge cd («output23 ')% ou (« output22'), selon l'une version utilisée % Avertissement: la version 2.2 génère seulement 7 paramètres, % Un paramètre supplémentaire, le bruit, a été ajouté dans la version 2.3
% Pour lire tous les paramètres à la fois, dans un seul tableau Tab_param% = fread_all_param (file_param); Ta%b_i = tab_param (2:8: fin, :); tab_j = ...
% Pour lire tous les paramètres (à l'exception frame_number) dans des tableaux distincts % [Tab_i, tab_j, tab_alpha, tab_radius, tab_offset, tab_blk, tab_noise] = fread_all_data_spt (file_param);
tab_i = fread_data_spt (file_param, 3); indice est de 3%, car le nombre de traces et le numéro de châssis, non informative, sont jetés! tab_j = fread_data_spt (file_param, 4); tab_alpha = fread_data_spt (file_param, 5); tab_blk = fread_data_spt (file_param, 8);
Boucle%% par rapport à des traces N_traces size = (tab_i, 1); Tableaux% sont des lignes N_traces par colonnes N_frames
pour ITRC = 1: N_traces No_blk_index = tab_blk (ITRC, :)> 0;% non seulement les étapes clignotantes parcelle (tab_i (ITRC, No_blk_index), tab_j (ITRC, No_blk_index)) & Nbsp; xlabel ('i (pixel)'), ylabel ('j (pixel)') Titre ([num2str «trace # '(ITRC)]) disp ('S'il vous plaît trouver n'importe quelle touche pour trace prochain), faire une pause fin
%% Fluo histogramme N_datapoints = somme (tab_blk (:)> 0);% non seulement les étapes clignotantes hist (tab_alpha (tab_blk> 0), 2 * sqrt (N_datapoints))% (en utilisant 2sqrt N) bacs xlabel ('intensité (au)'), ylabel («occurrence») title ('histogramme de l'intensité de fluorescence des particules »)