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Article de méthode

Immunoprécipitation de la chromatine (ChIP) à l'aide Drosophila Tissus

24.9K vues

DOI :

10.3791/3745

23 mars 2012

Dans cet article

Résumé

Récemment la technologie de séquençage à haut débit a considérablement augmenté la sensibilité de la chromatine immunoprécipitation (ChIP) expérience et son invité application à l'aide des cellules purifiées ou de tissus disséqués. Ici, nous délimiter une méthode pour utiliser la technique ChIP avec Drosophila, qui peut traiter de l'état chromatine endogène dans un système bien caractérisé biologique.

Résumé

L'épigénétique reste un domaine en développement rapide qui étudie la façon dont l'Etat contribue à la chromatine expression différentielle des gènes dans des types cellulaires distincts à différents stades de développement. Régulation épigénétique contribue à un large éventail de processus biologiques, y compris la différenciation cellulaire au cours du développement embryonnaire et de l'homéostasie à l'âge adulte. Une stratégie essentielle dans les études épigénétiques est d'examiner comment diverses modifications des histones et des facteurs de la chromatine réguler l'expression génique. Pour résoudre ce problème, immunoprécipitation de la chromatine (ChIP) est largement utilisé pour obtenir un instantané de l'association de facteurs particuliers avec de l'ADN dans les cellules d'intérêt.

Technique de ChIP utilise couramment des cellules en culture comme matériau de départ, qui peut être obtenu en abondance et d'homogénéité pour générer des données reproductibles. Cependant, il ya plusieurs mises en garde: Tout d'abord, l'environnement de cultiver des cellules dans les boîtes de Pétri est différente de celle in vivo, ce qui peutreflète pas l'état chromatine endogène des cellules dans un organisme vivant. Deuxièmement, tous les types de cellules peuvent être cultivées ex vivo. Il ya seulement un nombre limité de lignées cellulaires, à partir de laquelle les gens peuvent obtenir suffisamment de matériel pour le dosage ChIP.

Nous décrivons ici une méthode pour faire l'expérience en utilisant des tissus de Drosophila ChIP. Le matériau de départ est disséqué les tissus d'un animal vivant, ce qui peut refléter l'état chromatine endogène. L'adaptabilité de cette méthode avec beaucoup de différents types de tissus permettra aux chercheurs de répondre beaucoup plus biologiquement questions pertinentes relatives à la régulation épigénétique in vivo 1, 2. En combinant cette méthode avec séquençage à haut débit (ChIP-seq) sera en outre permettre aux chercheurs d'obtenir un paysage épigénomique.

Protocole

(La procédure puce entière prend environ deux jours. Préparation des bibliothèques de puces pour séquençage à haut débit prend un autre 2-3 jours.)

1. Disséquer et préparer les tissus pour l'expérience ChIP (~ 1 million de cellules)

  1. Disséquer les tissus d'intérêt (par exemple 200 paires de Drosophila testicules) dans du PBS froid + inhibiteur de la protéase 1x (dissoudre 1 pastille de cocktail d'inhibiteurs de protéase dans 1,5 ml de PBS 1x pour obtenir une solution stock de 7x) + PMSF (concentration finale 100 pg / mL). Rincer le tissu deux fois et remettre en suspension des tissus dans 20....

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Discussion

La polyvalence des analyses ChIP abordés dans le présent protocole peut être utilisé sur différents tissus, qui prévoit la possibilité d'étudier l'état de la chromatine dans un système biologiquement pertinentes. Expériences utilisant des cellules de ChIP systèmes de culture sont commodes à réaliser parce que grande quantité de cellules peut être facilement obtenu. Cependant, les cellules cultivées ne reflètent pas nécessairement les cellules dans un environnement multi-cellulaire. En développant cette technique.......

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Déclarations de divulgation

Nous n'avons rien à communiquer.

Remerciements

Les auteurs tiennent à remercier le laboratoire du Dr Keji Zhao (NIH / NHLBI) pour leur aide dans la fourniture de résultats de séquençage. Nous aimerions également remercier le projet du génome UCSC pour l'utilisation de Genome Browser pour visualiser séquençage cartographié lit.

Ce travail a été soutenu par le Sentier de la R00HD055052 NIH pour Independence Award et R01HD065816 du NICHD, l'Lucile Parkard Fondation, et l'Université Johns Hopkins des fonds de démarrage pour XC

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Nom du réactif Entreprise Numéro de catalogue Commentaires
Complete cocktail Mini inhibiteur de la protéase Roche 11836153001
Le formaldéhyde (37%) Supelco 47083-U
PMSF Sigma 78830
Kontes culot pilon Fischer Scientific K749521-1590
Kit de purification PCR Qiagen 28104
Polyacrylamide linéaire Sigma 56575-1ML
Le glycogène Qiagen 158930
SYBR green / ROX qPCR Master Mix Fermentas K0223
Mini plaque de spinner Labnet Z723533
PCR en temps réel du système Applied Biosystem 4351101
Processeur petit volume à ultrasons Misonix HS-XL2000 Modèle interrompu
Dynabeads, la protéine A Invitrogen 100-01D
Dynamag aimant Invitrogen 123-21D
Phénol: Chlorofrom: IAA Invitrogen 15593-049
Epicentre d'ADN FIN-kit de réparation Biotechnologies Epicentre ER0720
MinElute reactioKit de nettoyage n Qiagen 28204
Fragment de Klenow (3 '→ 5' exo-) New England Biolabs M0212S
ADN ligase de T4 Promega Corporation M1794
Adaptateur oligonucléotides Illumina PE-400-1001
Primer Paired-End 1,0 et 2,0 Illumina 1001783
1001 784
Système Electorphoresis E-Gel Invitrogen G6512ST
2X Phusion HF Mastermix Finnzymes F-531

Références

  1. Kharchenko, P. V., Alekseyenko, A. A., Schwartz, Y. B., Minoda, A., Riddle, N. C., Ernst, J., Sabo, P. J., Larschan, E., Gorchakov, A. A., Gu, T. Comprehensive analysis of the chromatin landscape in Drosophila melanogaster. Nature. 471, 480-485 (2011).
  2. Filion, G. J., van Bemmel, J. G., Braunschweig, U., Talhout, W., Kind, J., Ward, L. D., Brugman, W., de Castro, I. J., Kerkhoven, R. M., Bussemaker, H. J., van Steensel, B.

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