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Article de méthode

Injection virale intracérébro du cerveau de souris nouveau-né pour la transduction neuronale persistante et généralisée

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DOI :

10.3791/51863

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15 septembre 2014

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* These authors contributed equally

Dans cet article

Résumé

Ici, nous démontrons une technique de transduction neuronale généralisée par injection intraventriculaire d’un virus adéno-associé dans le cerveau de souris néonatale. Cette méthode offre un moyen rapide et facile d’obtenir l’expression à vie des transgènes délivrés par le virus.

Résumé

Avec le rythme des progrès scientifiques accélérer rapidement, de nouvelles méthodes sont nécessaires pour neurosciences expérimentales de manipuler rapidement et facilement l'expression des gènes dans le cerveau de la souris. Nous décrivons ici une technique introduite par Passini et Wolfe pour la livraison intracrânienne directe des transgènes d'origine virale codée dans le cerveau de souris nouveau-né. Dans sa forme la plus simple, la procédure exige seulement un seau à glace et une seringue microlitre. Toutefois, le protocole peut également être adapté pour une utilisation avec des cadres stéréotaxiques d'améliorer la cohérence de nouveaux chercheurs de la technique. Le procédé repose sur la capacité des virus adéno-associé (AAV) de se déplacer librement dans les ventricules cérébraux dans le parenchyme du cerveau tandis que le revêtement épendymaire est encore immature au cours de la première de 12 à 24 heures après la naissance. Injection intraventriculaire de l'AAV à cet âge, les résultats dans la transduction généralisée des neurones dans le cerveau. Expression commence dans les jours suivant l'injection et persiste pendant la lifetime de l'animal. Titre viral peut être réglé pour contrôler la densité de neurones transduites, tandis que la co-expression d'une protéine fluorescente fournit une étiquette vital de cellules transduites. Avec la disponibilité croissante des installations de base virales pour fournir des réactifs à la fois hors-the-shelf, pré-emballés et préparation virale coutume, cette approche offre une méthode opportune pour la manipulation de l'expression des gènes dans le cerveau de la souris qui est rapide, facile et beaucoup moins coûteux d'ingénierie traditionnel de la lignée germinale.

Introduction

Les méthodes traditionnelles pour modifier l'expression des gènes de neurones ont besoin de temps et les manipulations de la lignée germinale coûteux. Alternative de novo approches comme dans l'électroporation in utero ou injection stéréotaxique lentiviral donner des résultats plus rapides et moins coûteuses mais présentent l'inconvénient de nécessiter une intervention chirurgicale complexe 1-3. En outre, l'expression du transgène a une portée spatiale limitée avec ces méthodes. Ici, nous décrivons une méthode rapide, simple et économique pour la manipulation neuronale généralisée par injection intraventriculaire ....

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Protocole

Effectuer toutes les procédures et protocoles impliquant des animaux conformément aux National Institutes of Health Guide pour le soin et l'utilisation des animaux de laboratoire. Les procédures décrites ici ont été examinés et approuvés par le Baylor College of Medicine institutionnel de protection des animaux et l'utilisation Comité.

virus adéno-associé (AAV) vecteurs de réplication incompétent pour la livraison du transgène dans le cerveau de rongeurs sont approuvés pour le niveau de biosécurité 1 utilisation. Consultez le site Web CDC pour la publication du gouvernement américain "prévention des risques biotechnologiques en mi....

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Résultats

Le succès d'injection intraventriculaire rendement viral d'expression généralisée et robuste neuronale. Ici, nous avons évalué la transduction virale utilisant YFP ou tdTomato gènes fluorescents sous le contrôle du promoteur de la bêta de poulet de l'actine (promoteur de l'ABC). Ces constructions ont été emballés dans AAV8 et injecté dans les ventricules latéraux de souris (P0) ICR néonatales. Titres viraux élevés (10 à 10 particules par hémisphère) ont donné lieu à l'étiquetage dense du bulbe olfactif, le st.......

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Discussion

Nous avons décrit un procédé polyvalent pour la manipulation de l'expression génique en utilisant des neurones AAV comme vecteur de livraison répandu dans le cerveau de souris nouveau-nés. Comparé à d'autres méthodes de transgénèse neuronale tels que électroporation in utero ou une injection intracrânienne stéréotaxique 2,3, injection virale néonatale est relativement facile et simple. La procédure de base peut être réalisé en quelques minutes seulement avec un seau à glace et une seringue .......

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Déclarations de divulgation

Auteurs déclarent qu'ils n'ont aucun intérêt financier concurrents.

Remerciements

Cette recherche a été soutenue par la Fondation de la famille Robert A. et René E. Belfer, le AG038856 R21 du NIA (JLJ), la subvention de recherche sur la maladie d’Alzheimer A2010097 de la Fondation BrightFocus (JLJ) et la subvention de formation T32 du AG000183 de la biologie du vieillissement du NIA (soutien aux ODD).

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Souris consanguines ICRHarlanHsd :ICR (CD-1)Cette souche est également connue sous le nom de souris consanguines CD-1
FVBThe Jackson Laboratory18005-6 semaines
NestletsLab SupplyNESTLETS
Shepherd shacksSupplySS-mouse
Chow de rongeurs à haute teneur en grasPurina MillsPicoLab Régime pour souris 20, #5058Il s’agit de notre nourriture d’élevage standard
Chow pour rongeurs riches en matières grasses (alternative)Harlan LaboratoriesTeklad Global 19 % protéines rongeurs régime #2019SSi faible en phytoestrogènes, un régime autoclavable est nécessaire
Seringue d’injectionHamilton7653-01Seringue de 10 ml
Aiguilles d’injectionHamilton7803-04, RN 6PK PT4, 0,375"32 G, pour injections standard P0
Plaque métallique pour cryoanesthésieMcMaster Carr8975K439Plaque en aluminium brut, 6 » x 12 », 0,25 » d’épaisseur, devra être coupée en 3 morceaux égaux et les bords poncés par un atelier d’usinage local
Appareil stéréotaxique pour petits animaux avec affichage numériqueDavid Kopf InstrumentsModèle 940
Porte-seringue universel avec pied de support d’aiguilleDavid Kopf InstrumentsModèle 1772-F1
Cadre néonatalStoelting51625Officiellement appelé adaptateur souris et rat nouveau-né
Sacs d’élimination des risques biologiques avec indicateur stérileVWR14220-030Important ! &ndash ; Renseignez-vous auprès du personnel vétérinaire et de sécurité environnementale local pour connaître votre institut. s pour l’élimination des déchets à risque biologique
Lab

Références

  1. De Vry, J., et al. In vivo electroporation of the central nervous system: a non-viral approach for targeted gene delivery. Progress in neurobiology. 92, 227-244 (2010).
  2. Sun, B., Gan, L. Manipulation of g....

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Réimpressions et autorisations

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