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Article de méthode

Caractériser la composition de moteurs moléculaires sur les moyens axonale Cargo Utilisation de l'analyse "Cargo Mapping"

9.3K vues

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DOI :

10.3791/52029

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30 octobre 2014

 ,  ,  ,  , 

* These authors contributed equally

Dans cet article

Résumé

Le transport intracellulaire des cargaisons, telles que les vésicules ou les organites, est effectué par des protéines motrices moléculaires qui suivent les microtubules polarisés. Ce protocole décrit la corrélation entre la directionnalité du transport des particules de cargaison individuelles se déplaçant à l’intérieur des neurones et la quantité relative et le type de protéines motrices associées.

Résumé

Comprendre les mécanismes par lesquels les moteurs moléculaires coordonnent leurs activités pour le transport de cargaisons vésiculaires dans les neurones nécessite l'analyse quantitative des associations moteur / de fret au niveau de la vésicule unique. Le but de ce protocole est d'utiliser la microscopie quantitative de fluorescence à corréler («carte»), la position et la directionnalité du mouvement de fret direct aux montants de composition et relatives des moteurs associés avec la même cargaison. "Cartographie Cargo» se compose de l'imagerie en direct de cargaisons marquées par fluorescence mobiles dans les axones cultivées sur des dispositifs microfluidiques, suivie par la fixation chimique lors de l'enregistrement de mouvement direct, et immunofluorescence ultérieure (IF) des mêmes régions axonales exactes avec des anticorps contre les moteurs. Colocalisation entre cargaisons et leurs moteurs est évaluée en affectant la position sous-pixel de coordonnées de canaux de moteur et de fret, par gaussiennes de montage à la diffraction-lifonctions d'étalement de point mited représentant sources ponctuelles fluorescentes individuelles. Images de fret et moteur fixe sont ensuite superposées à des parcelles de mouvement de la cargaison, à la «carte» à leurs trajectoires suivies. La force de ce protocole est la combinaison de vivre et si les données à enregistrer à la fois le transport de cargaisons vésiculaires dans des cellules vivantes et de déterminer les moteurs associés à ces mêmes vésicules exactes. Cette technique permet de surmonter les problèmes antérieurs qui utilisent des méthodes biochimiques pour déterminer la composition moyenne du moteur de populations purifiées de vésicules en vrac hétérogènes, car ces méthodes ne révèlent pas des compositions sur des cargaisons de mobiles simples. Par ailleurs, ce protocole peut être adapté à l'analyse d'autres voies de transport et / ou de traite dans d'autres types de cellules à mettre en corrélation le mouvement des structures intracellulaires individuels avec leur composition en protéines. Limitations de ce protocole sont le débit relativement faible en raison des faibles efficacités de transfection de cultureneurones primaires et un champ de vision limité disponible pour l'imagerie haute résolution. Les applications futures pourraient inclure des méthodes pour augmenter le nombre de neurones exprimant cargaisons marquées par fluorescence.

Introduction

Le transport intracellulaire est essentiel dans tous les types de cellules pour la délivrance de protéines, les membranes, les organelles et les molécules de signalisation cellulaire à divers domaines 1. Les neurones sont des cellules spécialisées avec très longues, projections polarisés qui dépendent de façon critique sur le transport intracellulaire des cargaisons essentielles pour leur livraison sur de longues distances à différents microdomaines axonales. Ce transport est médiée par kinésines et dynéines - deux grandes familles de protéines motrices moléculaires - qui se lient à des cargaisons et de suivre le long des microtubules polarisés en antérogr....

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Protocole

Toutes les expériences ont été menées selon des protocoles approuvés et selon les directives institutionnelles pour les soins sans cruauté des animaux de recherche. Souris nouveau-nés ont été euthanasiés par décapitation.

1. Préparation de dispositifs microfluidiques pour la culture cellulaire

  1. Préparer polydiméthylsiloxane (PDMS) des dispositifs microfluidiques pour la croissance des neurones de l'hippocampe comme décrit par Harris et ses collègues 17-19. Voici quelques modifications qui ont été adaptés au protocole de mise en correspondance de la cargaison.
    REMARQUE: Les dispositifs microfluidiques sont é....

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Résultats

La figure 1 montre une vue d'ensemble du dispositif microfluidique utilisé pour la culture des neurones de l'hippocampe (figure 1A, B). Les neurones sont étalées dans le réservoir 1. La taille des micro-canaux empêche la diffusion de corps cellulaires (soma) dans le compartiment axonal tandis que la longueur des canaux d'éviter les projections dendritiques de traverser tout le chemin vers le compartiment axonal. Après ~ 2-3 jours de culture, les neurones commencent à étendre leurs axone.......

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Discussion

Le protocole présenté ici permet la corrélation de la directionnalité du mouvement des particules fluorescentes individuelles en mouvement sur ​​la base de cargaison microtubules avec le type et la quantité de protéines motrices associées par rapport à des neurones vivants. Auparavant, la composition totale du moteur de cargaisons vésiculaires axonales a été dosée sur des populations hétérogènes de vésicules et des organites 9,15 biochimiquement purifiée. Cependant, la composition de moteur .......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Nous remercions Ge Yang, Gaudenz Danuser, Khuloud Jaqaman et Daniel Whisler pour leur aide dans l’adaptation et le développement du logiciel de quantification des analyses de cartographie du fret, et Emily Niederst pour son aide dans la fabrication des dispositifs microfluidiques. Ce travail a été soutenu en partie par une subvention NIH-NIA AG032180 à L.S.B.G. et à l’Institut médical Howard Hughes. L.S. a été soutenu en partie par une subvention de formation en bioinformatique des NIH T32 GM008806, S.E.E. a été soutenu par une bourse de la Fondation Damon Runyon pour la recherche sur le cancer, une subvention de formation en neuroplasticité des NIH AG000216, et par u....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
poly-L-lysineSigmaP5899-20mg
D-MEM (Dulbecco' s Eagle Medium modifié) Glycémie élevée, avec L-Glutamine, sans Pyruvate de sodium (1x)Life Technologies11965092
FBS (Sérum de Bovin Fœtal)Life Technologies10082147
Neurobasal-A Medium (1x)Life Technologies10888022
B-27 Supplément Sans Sérum Life Technologies10888022
GlutaMAX I Supplement (100x)Life Technologies35050061
HBSS (1x) (Hank' Life Technologies24020117
DPBS (Dulbecco' s Solution saline tamponnée au phosphate, sans magnésium, sans calcium (1x)Life Technologies14190250
Pénicilline/Streptomycine (100x)Life Technologies15140122
Corning cellgro Eau pour la culture cellulaire  ;Fisher ScientificMT46000CM
PapainUSB Corporation19925
DL-cystéine HClSigma-AldrichC9768
BSA (albumine sérique bovine)Sigma-AldrichA7906
D-glucoseSigma-AldrichG6152
DNAse I grade IIRoche Applied Sciences10104159001
Lipofectamine 2000Life Technologies  ;
Solution de formaldéhyde 16 % EM GradeFisher Scientific50980487Attention : Nocif par inhalation, par contact avec la peau et par ingestion. Irritant pour les yeux, le système respiratoire et la peau. Éliminez conformément aux réglementations officielles.
SaccharoseFisher ScientificS5-500
HEPESSigmaH-3375
Sérum d’âne normalJackson Immuno Research017-000-0121
BSA sans acides gras et IgG JacksonImmuno Research001-000-162
AcétoneFisher ScientificBP2403-4
ÉthanolFisher ScientificBP2818-100
Réactif anti-décoloration ProLong GoldLife TechnologiesP36934
Verre de couverture 1 1/2. 24 x 40 mmCorning2980-244
Dispositif microfluidique d’axe, 450 µ ; mMilliporeAX450
Adobe PhotoshopAdobe
Nikon Eclipse TE2000-U  ;Appareil photo Nikon
Coolsnap HQ  ;Roper Scientific
60 mmFisher Scientific12-565-95
Antenne de culture cellulaire Fisher Scientific 150 mmFisher Scientific12-565-100
Anticorps utilisés :
Chaîne légère anti-kinésine, V-17Santa Cruz  ;Spécificité sc-13362vérifiée à l’aide de neurones KLC1-/- (Réf. 16), dilution recommandée 1:100.
Chaîne lourde anti-dynéine 1, R-325Santa Cruz  ;spécificité sc-9115vérifiée à l’aide de shRNA contre DYN1HC1 (Réf. 16), dilution recommandée 1:100
Alexa Fluor 568 Donkey Anti-Rabbit IgG AntibodyLife TechnologiesA10042  ; dilution recommandée 1:200.
Alexa Fluor 647 Donkey Anti-Rabbit IgG (H+L) AntibodyLife TechnologiesA31573  ; dilution recommandée 1:200.
Alexa Fluor 568 Donkey Anti-Goat IgG (H+L) Anticorps IgG Anticorps LifeTechnologiesA11057  ; dilution recommandée 1:200.
Alexa Fluor 647 Donkey Anti-Goat IgG (H+L) AntibodyLife TechnologiesA21447  ; dilution recommandée 1:200.
Plugins et Macros
ImageJ  ; http://imagej.nih.gov/ij/index.html.  ;
ImageJ Kymograph Pluginhttp://www.embl.de/eamnet/html/body_kymograph.html.
11668027Antenne de culture cellulaire

Références

  1. Goldstein, A. Y. N., Wang, X., Schwarz, T. L. Axonal transport and the delivery of pre-synaptic components. Curr. Opin. Neurobiol. 18, 495-503 (2008).
  2. Hirokawa, N. Kinesin and dynein superfamily proteins and the mechanism of organelle transport. Science.

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Réimpressions et autorisations

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