Ici, nous présentons un protocole pour la perfusion cérébrale stéréotaxique directe de bêta-amyloïde. Cette méthodologie fournit un modèle murin vivo alternatif pour aborder les effets à court terme de la bêta-amyloïde sur les neurones cérébraux.
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Article de méthode
Ici, nous présentons un protocole pour la perfusion cérébrale stéréotaxique directe de bêta-amyloïde. Cette méthodologie fournit un modèle murin vivo alternatif pour aborder les effets à court terme de la bêta-amyloïde sur les neurones cérébraux.
La maladie d'Alzheimer est une maladie neurodégénérative qui affecte le vieillissement de la population. Une caractéristique clé neuropathologiques de la maladie est la sur-production de bêta-amyloïde et le dépôt de plaques amyloïdes bêta dans les régions du cerveau des personnes souffrantes. Tout au long des années, les scientifiques ont généré de nombreux modèles de souris de la maladie d'Alzheimer qui tentent de reproduire la pathologie bêta-amyloïde. Malheureusement, les modèles de souris seulement imitent de manière sélective les caractéristiques de la maladie. La mort neuronale, un effet important dans le cerveau des patients atteints de la maladie d'Alzheimer, est visiblement défaut dans ces souris. Par conséquent, nous et d'autres avons employé une méthode d'infuser directement espèces oligomères solubles de bêta-amyloïde - formes de bêta-amyloïde qui ont été prouvés pour être plus toxique pour les neurones - stéréotaxique dans le cerveau. Dans ce rapport, nous utilisons mâles C57BL / 6J pour documenter cette technique chirurgicale de l'augmentation des niveaux bêta-amyloïde dans une région du cerveau sélectionnez. Lecible de perfusion est le gyrus denté de l'hippocampe, car cette structure du cerveau, ainsi que le cerveau antérieur basai qui est connectée par le circuit cholinergique, représente l'un des domaines de dégénérescence dans la maladie. Les résultats de l'élévation de bêta-amyloïde dans le gyrus denté par l'intermédiaire d'infusion stéréotaxique révèlent une augmentation de la perte de neurones dans le gyrus denté pendant 1 semaine, alors qu'il ya une augmentation concomitante de la mort cellulaire et cholinergique perte de neurones dans la branche verticale de la bande diagonale de Broca du cerveau antérieur basal. Ces effets sont observés jusqu'à 2 semaines. Nos données suggèrent que le modèle actuel de perfusion bêta-amyloïde fournit un modèle de souris alternative à aborder la mort des neurones spécifiques de la région en une base à court terme. L'avantage de ce modèle est que les bêta-amyloïde peut être élevé d'une manière spatiale et temporelle.
les dépôts amyloïdes de plaques, qui sont composés de bêta-amyloïde (Aß 1-42), sont un élément clé de la pathologie de la maladie d'Alzheimer (MA). De nombreuses études ont montré que des niveaux élevés ou toxiques d'oligomères Aß recombinant 1-42 susciter la mort neuronale, la dystrophie synaptique, la perte et la dysfonction; ainsi que l'apprentissage et la mémoire déficits 1-4. Les régions du cerveau touchées comprennent l'hippocampe, le cortex et des structures sous-corticales telles que le cerveau antérieur basal et 5,6 de l'amygdale. À ce jour, il existe des modèles de souris transgéniques multiple....
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Remarque: Pour toute expérimentation animale, institutionnel et des lignes directrices nationales pour les soins et l'utilisation des animaux de laboratoire ont été suivies.
1. Préparer Instruments chirurgicaux et solutions pour la chirurgie
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Le présent procédé de préparation d'oligomères Aß humaine recombinante 1-42 donne espèces oligomères solubles, comprenant des monomères, des dimères, des trimères et des tétramères (figure 1A). Ce faible poids moléculaire espèces Aß 1-42, mais pas les fibrilles et les plaques, ont été présentés dans de nombreux réglages pour être plus toxique pour les neurones 1,4,9,17-19. Pour déterminer si oui ou non oligomères Aß 1-42 induit la mort des neurones dans le.......
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Pour parvenir à une injection Aß 1-42 succès l'expérimentateur ou le chirurgien doit: 1) utiliser une technique aseptique; 2) identifier correctement la région du cerveau d'intérêt avec des coordonnées précises; 3) être en mesure de sécuriser convenablement la souris dans le cadre stéréotaxique avec le cerveau nivelé dans l'axe AP et ML; 4) ont la capacité de faire fonctionner le micromanipulateur avec précision; 5) assurer des soins post-opératoire appropriée. Si ces étapes clés sont suivies, la .......
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Les auteurs déclarent qu'ils ont aucun intérêt financier concurrentes.
Ce travail a été soutenu par l'Institut national des troubles neurologiques et des maladies accorder NS081333 (à CMT), subvention Association des NIRG-10-171721 d'Alzheimer et de l'Institut national de santé mentale subvention MH096702 (UH), et l'Institut national sur le vieillissement, la recherche financée par la maladie d'Alzheimer Centre à l'Université Columbia subvention pilote AG008702 (à YYJ et JB).
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| Nom | Entreprise | Numéro de catalogue | Commentaires |
|---|---|---|---|
| Kétamine HCl (100 mg/ml) | Henry Schein Medical | 1049007 | 100 mg de kétamine pour 1 kg |
| d’animal Xylazine (20 mg/ml) | Henry Schein Medical | non disponible | 10 mg de xylazine pour 1 kg d’animal |
| Buprenex (0,3 mg/ml) | Henry Schein Medical | 1217793 | 0,1 mg de buprenex pour 1 kg d’animal |
| A&beta ; 1-42 | David Teplow/UCLA | non disponible | 100 &mu ; M; Cette amyloïde a été utilisée dans l’article |
| A&beta ; 1-42 | Bachem | H-1368 | Peut être utilisé à la place de l’amyloïde du laboratoire Teplow |
| A&beta ; 1-42 | American Peptide | 62-0-80B | Peut être utilisé à la place de l’amyloïde du laboratoire Teplow |
| Scrambled A&beta ; 1-42 | American Peptide | 62-0-46B | Peut être utilisé comme peptide de contrôle pour comparer A&beta ; 1-42 |
| NU4 Antibody (anticorps amyloïde oligomère) | Don de William Klein/Northwestern U. | non disponible | Dilution 1:2 000 |
| Anticorps anti-oligomère amyloïde ; (Lapin polyclonal) | EMD Millipore | AB9234 | Peut être utilisé à la place de Nu4 ; doit être testé par l’utilisateur final |
| 6E10 Anticorps (souris monoclonale) (anticorps amyloïde) | Biolegend | sig-39320 | Dilution 1:1 000 |
| Anticorps ChAT (chèvre polyclonale) | Millipore | AB144P | dilution 1:100 |
| DeadEnd Système TUNEL fluorométrique | Promega | G3250 | les instructions du fabricant pour utiliser |
| le réactif anti-décoloration Prolong Gold avec DAPI | Invitrogen | P36935 | À utiliser lors de lames de lamelles |
| Fluorogold | Fluorochrome, LLC | non disponible | solution à 2 % |
| d’éthanol absolu (200 proof) | Fisher Scientific | BP2818-4 | Pour la fabrication d’éthanol à 70 % pour l’assainissement et la désinfection |
| Novex 10-20 % Tricine gel | Life Technologies | EC6625BOX | Pour séparer A&beta ; 1-42 |
| Novex Tricine SDS Running Buffer (10X) | Life Technologies | LC1675 | Pour faire fonctionner les gels de tricine 10-20 % |
| Novex Tris-Glycine Transfer Buffer (25X) | Life Technologies | LC3675 | Pour le transfert de gels de tricine 10-20 % |
| SuperSignal Western Blot Enhancer | Thermo Scientific | 46640 | Pour améliorer A&beta ; Signal 1-42 ; suivre le protocole du fabricant |
| Protran BA79 Membrane buvard en nitrocellulose, 0,1 &mu ; m | GE Healthcare Life Sciences | 10402088 | Pour le transfert de gels de tricine à 10-20 % |
| Xcell SureLock Mini-Cell | Life Technologies | EI0001 | Électrophorèse aparatus pour l’utilisation de gels à 10-20 % de tricine |
| GenTeal Lubricant Eye Gel | Novartis | non disponible | Pour garder les yeux de la souris humides pendant la chirurgie ; peut être trouvé dans les pharmacies locales ; |
| [en-tête] | |||
| Refresh Optive Lubricant Eye Drops | Allergan | non disponible | Pour garder les yeux de souris humides pendant la chirurgie ; peut être trouvé dans les pharmacies locales ; Peut être utilisé à la place de GenTeal |
| Bétadine | Stoelting | 50998 | Pour assainir et désinfecter |
| Spatule ronde/effilée ; | VWR | 82027-490 | Pour l’ouverture de la bouche |
| de l’animal Bulldog Serrefines Pinces (Dims. de la mâchoire 9X1,6 mm ; Longueur 28 mm) | Outils scientifiques fins | 18050-28 | En option ; Pour maintenir la peau du cuir chevelu séparée pendant l’injection |
| Ciseaux fins droits (tranchant 25 mm ; Longueur 11,5 cm) | Outils de science fine | 14060-11 | Pour couper le cuir chevelu |
| 3 Manche de scalpel | Outils de science fine | 10003-12 | |
| #11 Lame chirurgicale | Outils de science fine | 10011-00 | Pour faire une incision du cuir chevelu |
| Pince à motif standard d’étudiant (Dims. de pointe 2,5 x 1,5 mm ; Longueur 11,5 cm) | Fine Science Tools | 91100-12 | Pour maintenir le cuir chevelu fermé pendant la suture |
| Trimmer Combo Kit | Kent Scientific | CL9990-1201 | Pour raser les cheveux |
| T/Pump Recirculateur d’eau chaude ; | Kent Scientific ; | TP-700 | Pour réchauffer l’animal pendant la chirurgie |
| Coussin de mine de guerre réutilisable (5 » x 10 ») | Kent Scientific ; | TPZ-0510FEA | Pour le fixer au recirculateur d’eau chaude T/Pump afin de réchauffer l’animal pendant l’opération |
| Micro foret sans fil | Stoelting | 58610 | Utilisez des meules en acier de 0,8 mm pour percer des trous dans le crâne |
| Instrument stéréotaxique standard de laboratoire avec souris et Adaptateur pour rat néonatal | Stoelting | 51615 | |
| Juste pour souris Instrument stéréotaxique | Stoelting | 51730 | Peut l’utiliser à la place de Stoelting Cat. #51615 |
| Injecteur stéréotaxique Quintessential | Stoelting | 53311 | |
| Stérilisateur à billes de verre sec | Stoelting | 50287 | Pour stériliser les instruments en acier inoxydable |
| Champ chirurgical stérile (18" x 26") | Stoelting | 50981 | |
| Hamilton Seringue 50 ml, Modèle 705 RN SYR, NDL | Hamilton Company | 7637-01 | Pour l’injection cérébrale ; utiliser différentes seringues pour différentes solutions |
| 29 G Aiguille, petit moyeu RN NDL | Hamilton Company | 7803-06 | Pour fixer à la seringue Hamilton pour l’injection cérébrale |
| 1 ml BD Tuberculin Seringues | VWR | BD309659 | Pour l’administration d’anesthésie et de solution saline |
| Aiguille 30 G (0,5") | VWR | BD305106 | Pour l’administration d’anesthésie et de solution saline |
| Balance électronique portable de la série CS (Ohaus) | VWR | 65500-202 | Pour peser les animaux afin de déterminer la dose d’anesthésie |
| Plaque chauffante (Plaque supérieure Dims. 7.25x7.25 in) | VWR | 47751-148 | Pour réchauffer les animaux après la chirurgie |
| Suture en soie Sofsilk C-1 Coupe 3/8, 12 mm | Covidien | S1173 | Pour fermer la plaie |
| Adhésif tissulaire Vetbond (3M) | Santa Cruz Biotechnology | sc-361931 | En option : pour aider à la fermeture de la plaie ; À utiliser avec une suture. |
| Applicateurs stériles à tige en bois à pointe de coton | Fisher scientific | 22-029-488 | Pour le nettoyage et le séchage des plaies chirurgicales |
| Fisherbrand Superfrost Plus Lames de microscope | Fisher Scientific ; | 12-550-15 | Pour le prélèvement de coupes cérébrales |
| VWR Micro Cover Glass 24 X 50 mm | VWR | 48393241 | Pour le montage de lames de microscope |
| Thermo Scientific Nalgene Seringue Filter 0.2 &mu ; m | Fisher Scientific | 194-2520 | Pour la stérilisation d’une solution saline |
| Marqueurs cutanés stériles à double pointe de Viscot Medical | Medline | VIS1422SRL91 | Pour le marquage des coordonnées sur le crâne |
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