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Single-channel Analyse et Imagerie de calcium dans les podocytes des glomérules fraîchement isolés

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DOI :

10.3791/52850

27 juin 2015

Dans cet article

Résumé

Les changements dans les niveaux de calcium intracellulaire dans les podocytes sont l’un des moyens les plus importants de contrôler la fonction de filtration des glomérules. Nous expliquons ici une approche à haut débit qui permet de détecter en temps réel la manipulation du calcium et l’activité des canaux ioniques uniques dans les podocytes des glomérules fraîchement isolés.

Résumé

Les podocytes (cellules épithéliales glomérulaires rénales) sont connus pour réguler la perméabilité glomérulaire et maintenir la structure glomérulaire ; un rôle clé de ces cellules dans la pathogenèse de diverses maladies rénales a été établi puisque les lésions des podocytes entraînent une protéinurie et un effacement du processus du pied. Il a déjà été rapporté que divers agents endogènes peuvent provoquer une surcharge spectaculaire de la concentration intracellulaire de Ca2+ dans les podocytes, conduisant probablement à l’albuminurie, et cela se produit probablement via les canaux ioniques conducteurs de calcium. Par conséquent, il est apparu important d’étudier la manipulation du calcium dans les podocytes à la fois dans des conditions normales et dans divers états pathologiques. Cependant, les approches expérimentales disponibles sont restées quelque peu limitées aux cellules cultivées et transfectées. Bien qu’ils représentent un bon modèle de base pour de telles études, ils sont essentiellement extraits de l’environnement d’origine du glomérule. Nous décrivons ici la méthodologie d’étude des podocytes en tant que partie du glomérule entier fraîchement isolé. Cette préparation conserve le potentiel fonctionnel des podocytes, qui sont toujours attachés aux capillaires ; Par conséquent, les podocytes restent dans l’environnement qui conserve la majeure partie de l’appareil de filtration des glomérules. Le présent manuscrit développe deux approches expérimentales qui permettent 1) la détection en temps réel des changements de concentration en calcium à l’aide de la microscopie confocale à fluorescence ratiométrique, et 2) l’enregistrement de l’activité des canaux ioniques uniques dans les podocytes des glomérules fraîchement isolés. Ces méthodologies utilisent les avantages de l’environnement natif du glomérule qui permettent aux chercheurs de résoudre les changements aigus dans la manipulation intracellulaire du calcium en réponse à l’application de divers agents, de mesurer la concentration basale de calcium dans les cellules (par exemple, pour évaluer la progression de la maladie) et d’évaluer et de manipuler la conductance calcique au niveau des canaux ioniques uniques.

Introduction

Les reins maintiennent l'équilibre homéostatique pour diverses substances et de réguler le volume sanguin d'une manière qui détermine la pression sanguine totale. Des perturbations dans la filtration rénale, la réabsorption ou la sécrétion d'entraîner ou d'accompagner des états pathologiques, allant de l'hyper ou hypotension pour mettre fin à l'insuffisance rénale qui nécessite éventuellement une transplantation rénale. L'unité de filtration rénale (glomérule) se compose de trois couches - l'endothélium capillaire, la membrane basale et une couche mono-cellulaire des cellules épithéliales - podocytes, qui jouent un rôle majeur dans le ....

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Protocole

L'utilisation et le bien-être des animaux devraient adhérer à la NIH Guide pour le soin et l'utilisation des animaux de laboratoire suivant les protocoles examinés et approuvés par le Comité de protection des animaux et l'utilisation institutionnelle (IACUC).

1. Kidney Flush

  1. Utiliser 8 à 12 semaines vieux rat mâle (suggéré est une souche Sprague Dawley, mais d'autres souches d'âge et sexe différent peuvent être utilisés avec les modifications appropriées).
  2. Anesthésier les animaux selon le mode opératoire autorisé par le protocole IACUC; surveiller la profondeur de l'anesthésie et d'inspecte....

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Résultats

Ici, nous avons abordé le problème de la mesure des changements de courte durée dans les niveaux de calcium dans les podocytes. La figure 1 montre une représentation schématique du protocole expérimental conçu pour effectuer l'imagerie haute résolution fluorescence confocale en temps réel et des enregistrements individuels de l'activité des canaux ioniques dans les podocytes de la fraîchement glomérules isolés de rongeurs. Brièvement, après le rat est anesthésié, les reins doivent être rincés av.......

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Discussion

L'approche décrite ici permet l'analyse de manipulation de calcium par les podocytes des glomérules chez les rongeurs. Cette technique permet l'application de patch-clamp électrophysiologie à canal unique et imagerie confocale à fluorescence ratiométrique. Cependant, les deux approches peuvent être utilisés séparément, sur leur propre. Le protocole proposé comporte plusieurs étapes relativement simples, y compris 1) Kidney Flush; 2) l'isolement des glomérules par tamisage différentiel; 3) exécuter des pa.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs ont rien à révéler.

Remerciements

Les auteurs tiennent à remercier Glen Slocum (Medical College of Wisconsin) et Colleen A. Lavin (Nikon Instruments, Inc.) pour une excellente assistance technique avec des expériences de microscopie. Gregory Blass est reconnu pour la relecture critique du manuscrit. Cette recherche a été financée par les Instituts nationaux de la santé HL108880 de subvention et American Diabetes Association accorder 1-15-BS-172 (AS), et Ben J. Lipps bourse de recherche de l'American Society of Nephrology (DVI).

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Fluo4 AMLife TechnologiesF14217500 µl dans du DMSO
FuraRed AMLife TechnologiesF-3020
Poly-ʟ-lysineSigma-AldrichP4707
Acide PluronicSigma-AldrichF-68solution
IonomycineSigma-AldrichI3909-1ML
Rotateur de tubesMiltenyi Biotec GmbH130-090-753Allemagne
Microscope confocal Nikon (inversé)NikonNikon A1RExcitation laser à 488 nm. Filtres d'émission 500-550 nm et 570-620 nm
ObjectifNikonPlan Apo 60x/NA 1.4 Oil
Couvercle en verreThermo Scientific6661B52
Graisse à vide élevéDow CorningComposé au silicone
LogicielNikonNikon NIS-Elements
Chambre d'enregistrement/perfusionWarner InstrumentsRC-26
Amplificateur de patch-clampMolecular DevicesMultiClamp 700B
Système d'acquisition de donnéesMolecular DevicesDigidata 1440ASystème Axon Digidata®
Filtre passe-basWarner InstrumentsLPF-8Bessel à 8 pôles
Capillaires en verre borosilicatéWorld Precision Instruments1B150F-4
Tireuse de micropipettesSutter Instrument CoP-97Tireuse de micropipettes de type Flaming/Brown
MicroforgeNarishigeMF-830Japon
Micro-manipulateur motoriséSutter Instrument CoMP-225
Microscope inverséNikonEclipse Ti
Table d'isolation des microvibrationsTMCéquipée d'une cage de Faraday
Système de perfusion multivoies à valveAutoMake ScientificValve Bank II
Chambre d'enregistrement/perfusionWarner InstrumentsRC-26
LogicielMolecular DevicespClamp 10.2
NicardipineSigma-AldrichN7510
Ibério-toxineSigmaI5904-5UG
Acide niflumiqueSigma-AldrichN0630
DIDSSigma-AldrichD3514-25MG
Chlorure de TEATocrisT2265
RPMI 1640Life Technologies11835030sans antibiotiques
BSASigma-AldrichA8327solution d'albumine à 30 %
Table chirurgicale contrôlée en températureMCW corepour rongeurs
Tamis en acier :#100 (150 μm), 140 (106 μm)
Gilson, Inc SIEVE 3 SS FH NO200Fisher Sci50-871-316
Gilson, Inc SIEVE 3 SS FH NO270Fisher Sci50-871-318
Gilson, Inc SIEVE 3 SS FH NO400Fisher Sci50-871-320
Maille 200Sigma-Aldrichs4145écran pour CD-1
Microscope binoculaireNikonEclipse TS100
Microscope binoculaireNikonSMZ745
Système de perfusion basé sur une pompe à seringueHarvard Apparatus
Tuyau en polyéthylèneSigma-AldrichPE50
Anesthésie à l'isofluranefigure-materials-1 VetEquip, Inc.911103
Autres réactifs de baseSigma-Aldrich

Références

  1. Machuca, E., Benoit, G., Antignac, C. Genetics of nephrotic syndrome: connecting molecular genetics to podocyte physiology. Hum. Mol. Genet. 18, R185-R194 (2009).
  2. Haraldsson, B., Nystrom, J., Deen, W. M. Properties of the glomerular barrier and mechanisms of pro....

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Mots-clés

Imagerie calcique des podocytesIsolation des glom rulesMicroscopie confocalelectrophysiologie par patch clampChargement de colorants fluorescentsMesure de la concentration calciqueActivit des canaux ioniquesCellules pith liales r nales

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