Ce protocole détaille l’induction d’un programme hémogénique dans les fibroblastes embryonnaires de souris (MEF) via la surexpression de facteurs de transcription (TFs). Nous avons d’abord conçu un crible rapporteur à l’aide de MEF de souris doubles transgéniques humaines CD34-tTA/TetO-H2BGFP (34/H2BGFP). Les cellules CD34+ de ces souris marquent les histones H2B avec la GFP et cessent le marquage lors de l’ajout de doxycycline (DOX). Les MEFS ont été transduits avec des TF candidats, puis observés pour l’émergence de cellules GFP+ qui indiqueraient l’acquisition d’un destin de cellules hématopoïétiques ou endothéliales. En partant de 18 TF candidats, et grâce à un processus d’élimination combinatoire, nous avons obtenu un ensemble minimal de facteurs qui induiraient le pourcentage le plus élevé de cellules GFP+. Nous avons constaté que Gata2, Gfi1b et cFos étaient nécessaires et que l’ajout d’Etv6 fournissait l’induction optimale. Une série d’analyses de l’expression génique effectuées à différents moments du processus de reprogrammation a révélé que ces cellules semblaient passer par une cellule précurseur qui subissait une transition endothéliale à hématopoïétique (EHT). En tant que tel, ce processus de reprogrammation imite l’hématopoïèse développementale « dans une boîte », ce qui permet d’étudier l’hématopoïèse in vitro et de disposer d’une plate-forme pour identifier les mécanismes qui sous-tendent cette spécification. Cette méthodologie fournit également un cadre pour l’application de ce travail au système humain dans l’espoir de générer une source alternative de cellules souches hématopoïétiques (CSH) spécifiques au patient pour un certain nombre d’applications dans le traitement et l’étude des maladies hématologiques.