Création d'abdominaux adhérences chez la souris

Résumé

Les adhérences abdominales qui se forment après la chirurgie sont une cause majeure de douleur, d’infertilité, d’hospitalisation et de réopération pour une occlusion de l’intestin grêle. Notre procédure chirurgicale de création d’adhérences abdominales chez la souris est un outil fiable pour étudier les mécanismes sous-jacents à la formation des adhérences.

Résumé

Les adhérences abdominales consistent en un tissu fibreux qui se forme dans l’espace péritonéal en réponse à une agression inflammatoire, généralement une intervention chirurgicale ou une infection intra-abdominale. Les mécanismes précis sous-jacents à la formation de l’adhésion sont mal compris. De nombreux composés et barrières physiques ont été testés pour leur capacité à prévenir les adhérences après une intervention chirurgicale avec des niveaux de succès variables. La souris et le rat sont des modèles importants pour l’étude des adhérences abdominales. Plusieurs techniques différentes pour la création d’adhérences chez la souris et le rat existent dans la littérature. Nous décrivons ici un protocole utilisant l’abrasion du caecum avec du papier de verre et des sutures placées dans la paroi latérale abdominale droite. La souris est anesthésiée et l’abdomen est préparé. Une laparotomie médiane est créée et le caecum est identifié. Le papier de verre est utilisé pour abraser doucement la surface du cæcum. Ensuite, plusieurs sutures en forme de huit sont placées dans le péritoine de la paroi latérale abdominale droite. La cavité abdominale est irriguée, une petite quantité d’amidon est appliquée et l’incision est fermée. Nous avons constaté que cette technique produit les adhésions les plus constantes avec le taux de mortalité le plus bas.

Introduction

adhérences abdominales sont une forme de tissu cicatriciel qui se forment dans l'abdomen en réponse à l'inflammation, généralement après une intervention chirurgicale ou une infection intra-abdominale. Les adhérences sont une cause majeure de douleurs abdominales chroniques et l' infertilité, et sont la cause la plus fréquente de l' intestin grêle obstruction ^1. La présence d'adhérences rend la réalisation d' une seconde opération abdominale plus difficile et augmente le risque de complications ^2.

Malgré des années de recherche, les mécanismes sous-jacents de la formation d'adhérences rest....

Protocole

Le protocole suivant a été approuvé par le Institutional soin et l'utilisation des animaux Comité Université Stanford (IACUC) et respecte toutes les directives éthiques institutionnelles relatives à l'utilisation des animaux de recherche.

1. Création d'adhérences abdominales

1. Commencez la souris sur l'antibiotique chow régime une semaine avant la procédure.
2. Autoclave les instruments chirurgicaux et préchauffer la solution d'irrigation saline.
3. Anesthetize la souris en utilisant 2% d'isoflurane inhalée.
4. En utilisant une tondeuse à cheveux suivie d'une application rapide (5 ....

Résultats

A sept jours après la chirurgie, le caecum et éventuellement le côlon ascendant, le foie et les boucles de l'intestin grêle doit être adhérente à la paroi abdominale du côté droit. (Figure 8) de tissu excisé peut être intégré et sectionné et donnera d' excellentes lames histologiques. (Figure 11, 12)

Lorsque la procédure est exécutée correctement, 100% des souris devrait avoir de.......

Discussion

Les étapes essentielles de cette procédure sont: abraser soigneusement le caecum sans provoquer la perforation, en plaçant des sutures dans la paroi latérale abdominale, et appliquer la bonne quantité d'amidon. Seulement appliquer du papier de verre pour le caecum, ou à une petite partie spécifique de l'intestin. Une large utilisation de papier de verre sur de grandes quantités de l'intestin grêle a tendance à provoquer un iléus significatif. Prenez soin d'abraser le caecum avec suffisamment de force que.......

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article

Nom	Entreprise	Numéro de catalogue	Commentaires
Sous-couches absorbantes Fisherbrand, 20 po x 24 poFisher	Scientific	14-206-62
Champ stérile polydoublé, 18 po x 24 po	Jetables pour l’hôpital Busse	696	Découper un trou rectangulaire de la taille appropriée
Isothesia isoflurane	Henry Schein  ;
Fisherbrand Tampon de gaze de coton stérile, 4 » x 4	Fisher Scientific	22-415-469
Pommade ophtalmique à la vaseline Puralube, tube de 1/8 oz	Dechra Veterinary Products	NDC 17033-211-38
Crème dépilatoire	Nair Church & Dwight Co.	22339-05
Buprenex buprénorphine  ; 0,3 mg/ml	Reckitt Benckiser Pharmaceuticals Inc.	NDC 12496-0757-5
Seringue à insuline de 1 cc, 27  ; G	Becton Dickinson	329412
Povidone Solution de préparation à l’iode	Medline	MDS093944H
Webcol Tampons de préparation à l’alcool	Covidien	6818
Ruban d’étiquetage Labarotory à usage général	VWR	89097-912
Gants chirurgicaux BioGel PI	Mö ; lnlycke Health Care	ALA42675Z
Micro Pince à dents	Roboz	RS-5150
Ciseaux fins - tranchants	Outils de science fine	14060-09
Pince dentelée droite	Outils de science fine	11050-10
Tourne-aiguille Castro-Viejo	Outils de science fine	12565-14
Grain 100 1/4 feuille de papier de verre	ACE Quincaillerie	1010446	Couper en bandes
4-0 suture en soie, 30 », aiguille SH	Ethicon	K831
7-0 PDS II suture monofilament résorbable, 30 », aiguille BV-1	Ethicon	Z135	Généralement livré à double bras. Coupez la suture à mi-chemin pour générer deux sutures utilisables.
Amidon de riz	MP Biomedicals	102955
0,9 % Chlorure de sodium Irrigation	Baxter	BHL2F7121	Chaud à 37 ° ; C avant utilisation
Seringue de 10 ml	Becton Dickinson	309604
6-0 Suture tressée résorbable Vicryl, 18 », aiguille conique RB-1 Ethicon		J212H
6-0 Ethilon monofilament de nylon, 18 », aiguille P-3, etc.	Ethicon	1698G
Tegaderm Film Transparent Dressing Frame Style, 6 cm x 7 cm	3M	1624W	Coupé en deux dans le sens de la longueur

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