Un protocole pour produire une grande surface de substrat nanopatterned à partir de petits moules nanopatterned pour l’étude de la modulation nanotopographique du comportement cellulaire est présenté.
Article de méthode
Un protocole pour produire une grande surface de substrat nanopatterned à partir de petits moules nanopatterned pour l’étude de la modulation nanotopographique du comportement cellulaire est présenté.
La nanotopographie du substrat s’est avérée être un puissant modulateur du phénotype et de la fonction cellulaires. Pour disséquer la modulation du comportement cellulaire par nanotopographie, une grande surface de substrat nanopatterned est souhaitable afin que suffisamment de cellules puissent être cultivées sur la nanotopographie pour des analyses biochimiques et de biologie moléculaire ultérieures. Cependant, les techniques actuelles de nanofabrication ont des limites pour générer des nanomotifs hautement définis sur une grande surface. Ici, nous présentons une méthode pour étendre des substrats nanopatterned d’un petit nanomotif hautement défini à une grande surface en utilisant la technique du point. La méthode combine plusieurs techniques, impliquant la lithographie douce pour reproduire des moules en poly(diméthylsiloxane) (PDMS) à partir d’un moule bien défini, la technique de couture pour assembler plusieurs moules PDMS en un seul grand moule et la nano-impression pour générer un moule maître sur des substrats en polystyrène (PS). Avec le moule maître PS, nous produisons des substrats de travail PDMS et démontrons la modulation nanotopographique de l’étalement cellulaire. Cette méthode offre une voie simple, abordable mais polyvalente pour générer des nanomotifs bien définis sur de grandes surfaces, et est potentiellement étendue pour créer des dispositifs à l’échelle micro/nanométrique avec des composants hybrides.
Un certain nombre de découvertes récentes révèlent que la nanotopographie du substrat a une influence prononcée sur le comportement cellulaire, de l’adhésion, de l’étalement et de la migration cellulaires, à la prolifération et à la différenciation1-6. Par exemple, une taille cellulaire plus petite et un taux de prolifération plus faible ont été observés dans les cellules cultivées sur des nanoréseaux profonds, conduisant même à l’apoptose, bien que l’alignement, l’élongation et la migration cellulaires aient été améliorés, par rapport aux témoins plats2,7-10. De plus, il a été démontré que la nanotopographie facilite la différenciation des cellules souches en certaines lignées telles que le neurone2,11,12, le muscle13 et l’os3,4. De plus, en raison des préoccupations croissantes concernant la toxicité des nanomatériaux manufacturés14,15, il est nécessaire d’intégrer la nanotopographie dans des modèles in vitro physiologiquement pertinents pour une évaluation précise des risques des nanomatériaux. Pour réaliser les analyses biochimiques et de biologie moléculaire, il faut suffisamment de cellules pour être cultivées sur une grande surface de substrat nanopattern. Cependant, les techniques de nanofabrication conventionnelles ont des limites pour générer des nanomotifs hautement définis sur une grande surface.
L’auto-assemblage, y compris la lithographie colloïdale16 et le démélange des polymères17, peut facilement générer des nanostructures de grande surface à faible coût. Parce que l’auto-assemblage repose sur les interactions entre les éléments d’assemblage tels que les particules colloïdales et les macromolécules, et les interactions possibles entre ces éléments et le substrat, il ne peut pas s’agir d’une méthode autonome de production de nanostructures avec un positionnement spatial précis et des formes arbitraires18. La forte densité de défauts qui l’accompagne est également un inconvénient. Un contrôle spatial précis des nanomotifs peut être obtenu en utilisant l’auto-assemblage de modèles, qui utilise des approches lithographiques descendantes pour fournir le modèle topographique et/ou chimique pour guider l’assemblage ascendant des éléments d’assemblage19-21. D’autres techniques de nanofabrication, telles que la lithographie par étapes et flash22 et la lithographie par nanoimpression rouleau à rouleau23, ont été mises au point, mais leur utilisation est limitée en raison de leur processus sophistiqué ou de la nécessité d’un équipement spécialisé. Néanmoins, un modèle ou un moule maître avec des motifs à l’échelle nanométrique définis est nécessaire pour les techniques de nanofabrication modélisées ou alternatives.
De tels modèles et moules maîtres sont générés conventionnellement en utilisant la lithographie focalisée par faisceau d’électrons, d’ions ou de photons. Par exemple, la lithographie par faisceau d’électrons (EBL)24 et la lithographie par faisceau d’ionsfocalisés25 peuvent générer des motifs définis avec une résolution inférieure à 5 nm. La lithographie à deux photons a démontré une taille de caractéristique aussi petite que 30 nm26. Bien que les techniques de lithographie par faisceau focalisé permettent de générer des structures bien définies à l’échelle nanométrique, l’investissement en capital et le processus long et coûteux limitent leur utilisation généralisée dans la recherche universitaire27. Par conséquent, il est hautement souhaitable de développer des techniques permettant mais abordables de produire une grande surface de surfaces nanostructurées avec une haute fidélité.
Nous avons signalé une technique de couture simple et rentable pour générer une grande surface de surface nanostructurée à partir d’un petit moule bien défini28. Ce protocole fournit une procédure étape par étape, de la réplication de moules en poly(diméthylsiloxane) (PDMS) à l’aide d’un modèle écrit par EBL, à l’assemblage de plusieurs moules PDMS en un seul grand moule, à la génération d’un moule maître sur des substrats polymères tels que le polystyrène (PS), à la production de substrats de travail. Avec les substrats nanopatterned expansés, nous avons démontré la modulation nanotopographique de l’étalement cellulaire.
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1. La réplication de PDMS Moisissures à partir d'un moule EBL
2. Brochage de PDMS Moisissures dans un Grand, Mold Simple
3. Génération d'un moule maître sur PS Substrats
Remarque: Le moule PDMS cousu immobilisé sur une lame de verre peut être utilisé pour générer un moule maître sur une plaque de PS ou un film mince PS, à partir de laquelle travaillent des substrats nanostructurés peuvent être produits.
4. Nanotopographical Modulation of Cell Comportement
Remarque: les cellules épithéliales humaines sont cultivées sur les nanotopographies représentatives pour démontrer la modulation nanotopographical de la cellule d'étalement.
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La technique de point peut générer une grande surface de substrats nanostructurés avec une grande fidélité. Figure 1a et 1b afficher la grande surface de nanoschémas transférés du moule PDMS cousu à la plaque PS et PS film mince sur un substrat Si, respectivement. La comparaison entre le moule original EBL-écrite (Figure 1c) et les PDMS finaux travaillant substrat (Figure 1d) confirme que les nanoschémas EBL-écrites peuv...
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Nous présentons une méthode simple, abordable et polyvalent pour générer une grande surface du substrat nanostructuré. Pour développer fidèlement nanoschémas hautement définis, une grande attention doit être accordée à plusieurs étapes critiques. La première est de couper les PDMS moules multiples. les zones sans motif du moule PDMS doivent être enlevés. En outre, les parois latérales des moules doivent être coupés à la verticale aussi parfaite que possible afin de minimiser les écarts entre les moules. Collectivement, ...
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Les auteurs n’ont rien à divulguer.
Ce travail a été en partie soutenu par NSF CBET 1227766, NSF CBET 1511759 et Byars-Tarnay Endowment. Nous reconnaissons avec gratitude l’utilisation des installations de recherche partagées de l’Université de Virginie-Occidentale qui sont soutenues, en partie, par NSF EPS-1003907.
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| Nom | Entreprise | Numéro de catalogue | Commentaires |
|---|---|---|---|
| Émission de champ JEOL SEM | JEOL | JSM-7600F | EBL |
| E-BEAM E-évaporateur | Kurt J. Lesker | Modèle : LAB 18 e-beam e-vaporator | nickel deposition |
| Trion Minilock III ICP/RIE | Trion | technology Modèle : Minilock-phantom III | |
| Presse | PHI Presse hydraulique Molde | : SQ-230H | |
| Spin coater | Laurell Technologies | Modèle : WS-400A-6NPP-LITE | |
| CO2 séchoir critique | Tousimis | Modèle : Autosamdri-815 | |
| Plaquette de silicium | University Wafer | 1080 | |
| Plaques d’aluminium | McMaster-carr | 9057K123 | |
| Feuilles de téflon | McMaster-carr | 8711K92 | |
| 100 mm Boîte de Pétri | FALCON | ||
| Boîte de Pétri 60 mm | FALCON | 353004 | |
| Lamelle en verre | Fisher Scientific | 12-542-B | |
| Lame en verre | Fisher Scientific | 12-550-34 | |
| Bateaux de pesée jetables | Fisher Scientific | 13-735-743 | |
| Dessiccateur en verre | Fisher Scientific | 02-913-360 | |
| Dessiccateur en plastique | Bel-Art Products | F42025-000 | |
| Plaque chauffante | Fisher Scientific | 1110049SH | |
| Pince à épiler | Ted Pella, inc. | 5726 | |
| Blade | Fisher Scientific | S17302 | |
| Blocs métalliques | McMaster-carr | ||
| Punch | Brettuns Village Leather Craft Supplies | Arch punch | |
| Poly(méthacrylate de méthyle) | MicroChem | 495 PMMA A4 | |
| PDMS | Dow Corning | Sylgard 184 kit | |
| Polystyrène | Dow Chemical | Styron 685D | |
| 1H,1H,2H,2H-perfluorooctylméthyldichlorosilane | Oakwood Chemical | 7142 | |
| Développeur | MicroChem | MIBK/IPA à rapport | |
| Décapant | MicroChem | Remover PG | |
| Éthanol | Fisher Scientific | BP2818500 | |
| Toluène | Fisher Scientific | T324-500 | |
| Saline tamponnée au phosphate | Sigma Aldrich | D8537 | |
| Dulbecco' s aigle modifié moyen | Sigma Aldrich | D5796 | |
| Sérum fœtal bovin | Atlanta Biologicals | S11550 | |
| Paraformaldéhyde | Microsopie électronique Science | 15712-S | |
| Glutaraldéhyde ; | Fisher Chemical | G151-1 | |
| Fibronectine | Corning | 356008 | |
| cellules A549 | ATCC | ATCC CCL-185 |
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