Un abonnement JoVE est requis pour visualiser ce contenu. Connectez-vous ou commencez votre période d'essai gratuite.

Article de méthode

Utilisation de CRISPR/Cas9 pour éliminer gm-CSF dans les cellules CAR-T

10.5K vues

⸱

DOI :

10.3791/59629

⸱

22 juillet 2019

 ,  ,  , 

Dans cet article

Résumé

Ici, nous présentons un protocole pour modifier génétiquement les cellules CAR-T via un système CRISPR/Cas9.

Résumé

La thérapie cellulaire du récepteur d'antigène chimérique T (CAR-T) est une nouvelle option de traitement de pointe et potentiellement révolutionnaire pour le cancer. Cependant, il y a des limites significatives à son utilisation répandue dans le traitement du cancer. Ces limitations incluent le développement des toxicités uniques telles que le syndrome de dégagement de cytokine (CRS) et la neurotoxicité (NT) et l'expansion limitée, les fonctions d'effecteur, et l'activité antitumorale dans les tumeurs pleines. Une stratégie visant à améliorer l'efficacité du CAR-T et/ou à contrôler les toxicités des cellules CAR-T consiste à modifier le génome des cellules CAR-T elles-mêmes lors de la fabrication des cellules CAR-T. Ici, nous décrivons l'utilisation de l'édition de gène CRISPR/Cas9 dans les cellules DE CAR-T par transduction avec une construction lentivirale contenant un ARN de guide au facteur de stimulation de colonie de macrophage de granulocyte (GM-CSF) et cas9. À titre d'exemple, nous décrivons CRISPR/Cas9 pare-t-il de GM-CSF. Nous avons montré que ces cellules GM-CSFk/o CAR-T produisent effectivement moins de GM-CSF tout en maintenant la fonction critique des lymphocytes T et entraînent une activité antitumorale accrue in vivo par rapport aux cellules carturiennes de type sauvage.

Introduction

La thérapie cellulaire du récepteur d'antigène chimérique T (CAR-T) est très prometteuse dans le traitement du cancer. 1 Fois , 2 Deux thérapies cellulaires CAR-T ciblant le CD19 (CART19) ont récemment été approuvées aux États-Unis et en Europe pour l'utilisation dans les malignités des cellules B après avoir démontré des résultats frappants dans des essais cliniques multicentriques. 3 (en) , 4 ( en plus) , 5 Les obstacles à une utilisation plus répandue des cellules CAR-T sont une activité limitée dans les tumeurs so....

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Protocole

Ce protocole suit les lignes directrices du Conseil d'examen institutionnel (CISR) de la clinique Mayo et du Comité de biosécurité institutionnelle (BAC).

1. Production de cellules CART19

  1. Isolement cellulaire, stimulation et culture ex-vivo
    1. Effectuer tous les travaux de culture cellulaire dans une hotte de culture cellulaire en utilisant l'équipement de protection individuelle approprié. Récoltez les cellules mononucléaires périphériques de sang (PBMC) des cônes normaux de sang de donneur de de--identifié recueillis pendant l'apheresis car ceux-ci sont connus pour être une source viable de PBMCs.13 ....

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Résultats

La figure 1 montre la réduction de GM-CSF dans les cellules GM-CSFk/o CART19. Pour vérifier que le génome des lymphocytes T a été modifié pour koiller GM-CSF, le séquençage TIDE a été utilisé dans les cellules GM-CSFk/o CART19 (figure 1A). La coloration de la surface des cellules CAR-T vérifie que les lymphocytes T expriment avec succès le récepteur de surface de la RCA in vitro en gating sur des cellules CD.......

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Discussion

Dans ce rapport, nous décrivons une méthodologie pour employer la technologie DE CRISPR/Cas9 pour induire des modifications secondaires dans les cellules de CAR-T. Plus précisément, cela est démontré à l'aide de la transduction lentivirale avec un vecteur viral qui contient du gRNA ciblant le gène d'intérêt et Cas9 pour générer des cellules GM-CSFk/o CART19. Nous avions précédemment montré que la neutralisation de GM-CSF améliore CRS et NT dans un modèle de xénogreffe. 12 Comme nous l'a.......

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Déclarations de divulgation

SSK est un inventeur de brevets dans le domaine de la thérapie à cellule T CAR qui sont sous licence à Novartis (en vertu d'un accord entre Mayo Clinic, Université de Pennsylvanie, et Novartis). Ces études ont été financées en partie par une subvention de Humanigen (SSK). RMS, MJC, RS et SSK sont des inventeurs de brevets liés à ce travail. Le laboratoire (SSK) reçoit des fonds de Tolero, Humanigen, Kite, Lentigen, Morphosys et Actinium.

Remerciements

Ce travail a été soutenu par des subventions de K12CA090628 (SSK), du National Comprehensive Cancer Network (SSK), du Mayo Clinic Center for Individualized Medicine (SSK), de la Predolin Foundation (SSK), du Mayo Clinic Office of Translation to Practice (SSK) et le Mayo Clinic Medical Scientist Training Program Robert L. Howell Physician-Scientist Scholarship (RMS).

....

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Anticorps monoclonal CD3 (OKT3), PE, eBioscienceInvitrogen12-0037-42
Anticorps monoclonal CD3 (UCHT1), APC, eBioscienceInvitrogen17-0038-42
Choice Taq Blue MastermixDenville ScientificC775Y51
CTS (Cell Therapy Systems) Dynabeads CD3/CD28Gibco40203D
CytoFLEX System B4-R2-V2Beckman CoulterC10343cytomètre
en flux diméthylsulfoxydeMillipore SigmaD2650-100ML
Dulbecco’s Phosphate-Buffered SalineGibco14190-144  ;
Dynabeads MPC-S (concentrateur de particules magnétiques)Applied BiosystemsA13346
Easy 50 EasySep MagnetSTEMCELL Technologies18002
EasySep Kit d’isolement de cellules T humaines  ;STEMCELL Technologies17951sélection négative billes magnétiques ; 17951RF comprend pointes et tampon
Sérum fœtal bovinMillipore SigmaF8067
FITC Souris Anti-Humain CD107a  ;BD Pharmingen555800
Milieu de fixation (Medium A)InvitrogenGAS001S100
GenCRISPR gRNA Construction : Nom : CSF2
CRISPR guide RNA 1 ; Espèce : Humain, Vecteur :
pLentiCRISPR v2 ; Résistance : Ampicilline ; Numéro d’exemplaire :
High ; Préparation du plasmide : Livraison standard : 4 &mu ; g (Gratuit
de frais)
GenScriptN/Acommande personnalisée
Chèvre anti-souris IgG (H+L) Anticorps secondaire à adsorption croisée, Alexa Fluor 647InvitrogenA-21235
https://tide.nki.nl.Desktop Genetics
 ; Donneurs masculins ; type AB ; USCorning35-060-CI
IFN gamma Anticorps monoclonal (4S. B3), APC-eFluor 780, eBioscienceInvitrogen47-7319-42
Lipofectamine 3000 Réactif de transfectionInvitrogenL3000075
LIVE/DEAD Kit de coloration à cellules mortes Aqua fixable, pour excitation 405 nmInvitrogenL34966
LymphoprepSTEMCELL Technologies07851
Solution Monensin, 1000XBioLegend420701
Souris Anti-Humain CD28 Clone CD28.2BD Pharmingen559770
Souris Anti-Humain CD49d Clone 9F10BD Pharmingen561892
Souris Anti-Humain MIP-1&beta ; PE-Cy7BD Pharmingen560687
Mr. Frosty Conteneur de congélationThermo Scientific5100-0001
NALM6, clone G5  ;ATCCCRL-3273lignée cellulaire de leucémie lymphoblastique aiguë
Eau libre NucléasePromegaP119C
Systèmes de filtration sous vide Olympus, 500 mL, membrane PES, 0,22 uM, stérileGenesee Scientific25-227
Unités de filtre stériles jetables à débit rapide Nalgene avec membrane CN 0,45 uMThermo Scientific Nalgene450-0045
Opti-MEM I Sérum réduit Milieu (1X), LiquideGibco31985-070
PE-CF594 Souris Anti-Humain IL-2BD Horizon562384
Pénicilline-Streptomycine-Glutamine (100X), LiquideGibco10378-016
Milieu de perméabilisation (Medium B)InvitrogenGAS002S100
Mini Kit d’ADN génomique PureLinkInvitrogenK182001
Chlorhydrate de puromycineMP Biomedicals, Inc.
QIAquick Gel Extraction Kit QIAGEN28704
Rat Anti-Humain GM-CSF BV421BD Horizon562930
RoboSep-SSTEMCELL Technologies21000Séparateur de cellules entièrement automatisé
SepMate-50 (IVD)STEMCELL Technologies85450
Azoture de sodium, 5 % (p/v)Ricca Chemical7144.8-16
X-VIVO 15 Milieu cellulaire hématopoïétique sans sérumLonza04-418Q
Sérum AB humain de 0210055210

Références

  1. Kenderian, S. S., Ruella, M., Gill, S., Kalos, M. Chimeric antigen receptor T-cell therapy to target hematologic malignancies. Cancer Research. 74 (22), 6383-6389 (2014).
  2. Lim, W. A., June, C. H. The Principles of Engineering Immune Cells to Treat Cancer. Cell. 168

Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.

Réimpressions et autorisations

Explorer plus d’articles

Édition génomique CRISPR/Cas9inactivation du GM-CSFthérapie par cellules CAR-Ttransduction lentiviraleanalyse par cytométrie en fluxisolement des lymphocytes Tsélection à la puromycineconcentration virale par ultracentrifugationsyndrome de libération de cytokinesactivité antitumorale