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Article de méthode

Isolement des progéniteurs mégacarytaires de souris

7.1K vues

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DOI :

10.3791/62498

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20 mai 2021

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Dans cet article

Avis d’erratum

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Résumé

Cette méthode décrit la purification par cytométrie en flux de MEP et de MKp à partir de fémurs, de tibias et d’os pelviens de souris.

Résumé

Les mégacaryocytes de la moelle osseuse sont de grandes cellules polyploïdes qui assurent la production de plaquettes sanguines. Ils proviennent de cellules souches hématopoïétiques par le biais de la mégacaryopoïèse. Les dernières étapes de ce processus sont complexes et impliquent classiquement les progéniteurs bipotents mégacaryocytes-érythrocytaires (MEP) et les progéniteurs mégacaryocytaires unipotents (MKp). Ces populations précèdent la formation de mégacaryocytes de bonne foi et, à ce titre, leur isolement et leur caractérisation pourraient permettre une analyse robuste et impartiale de la formation de mégacaryocytes. Ce protocole présente en détail la procédure de collecte des cellules hématopoïétiques de la moelle osseuse de souris, l’enrichissement des progéniteurs hématopoïétiques par épuisement magnétique et enfin une stratégie de tri cellulaire qui donne des populations de MEP et de MKp hautement purifiées. Tout d’abord, les cellules de la moelle osseuse sont prélevées sur le fémur, le tibia et la crête iliaque, un os qui contient un grand nombre de progéniteurs hématopoïétiques. L’utilisation d’os de la crête iliaque augmente considérablement le nombre total de cellules obtenues par souris et contribue ainsi à une utilisation plus éthique des animaux. Une déplétion de la lignée magnétique a été optimisée à l’aide de billes magnétiques de 450 nm permettant un tri cellulaire très efficace par cytométrie en flux. Enfin, le protocole présente la stratégie d’étiquetage et de contrôle pour le tri des deux populations de progéniteurs mégacarytaires hautement purifiés : MEP (Lin-Sca-1-c-Kit+CD16/32-CD150+CD9dim) et MKp (Lin- Sca-1-c-Kit+CD16/32-CD150+CD9bright ). Cette technique est facile à mettre en œuvre et fournit suffisamment de matériel cellulaire pour effectuer i) la caractérisation moléculaire pour une connaissance plus approfondie de leur identité et de leur biologie, ii) les tests de différenciation in vitro, qui permettront de mieux comprendre les mécanismes de maturation des mégacaryocytes, ou iii) les modèles in vitro d’interaction avec leur microenvironnement.

Introduction

Les plaquettes sanguines sont produites par les mégacaryocytes. Ces grandes cellules polyploïdes sont situées dans la moelle osseuse et comme pour toutes les cellules sanguines, elles sont dérivées de cellules souches hématopoïétiques (CSH)1. La voie classique de production de mégacaryocytes dans la moelle osseuse provient du HSC et implique la génération de différents progéniteurs qui restreignent progressivement leur potentiel de différenciation2. Le premier progéniteur signant l’engagement envers la lignée mégacaryocytaire est le Megakaryocyte-Erythrocyte Progenitor (MEP), un progéniteur bipotent capable de produire à....

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Protocole

Les protocoles impliquant des animaux ont été réalisés conformément au Comité CREMEAS d’éthique de l’expérimentation animale de l’Université de Strasbourg (Comité Régional d’Ethique en Matière d’Expérimentation Animale Strasbourg. Numéro de permis : E67-482-10).

1. Collecte d’os de souris

  1. Sacrifier l’animal conformément aux directives institutionnelles.
    NOTE: Les données présentées dans ce manuscrit ont été obtenues à partir de souris C57Bl/6 âgées de 8 à 12 semaines. Le nombre de cellules obtenues et la fréquence des populations citées peuvent varier en fonction de l’âge et de la souche de souris.
  2. Vaporisez le corps ....

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Résultats

L’analyse phénotypique des cellules identifiées comme MEP et MKp a été réalisée par cytométrie en flux. Les cellules ont été marquées avec des anticorps conjugués par fluorescence contre CD41a et CD42c, marqueurs classiques des lignées mégacaryocytaires et plaquettaires. Les deux marqueurs ont été exprimés par les cellules de la population MKp alors que ces marqueurs ne sont pas encore détectés à la surface des cellules de la population MEP (Figure 4Ai, 4Aii). La polyploïdie.......

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Discussion

La méthode décrite dans cet article permet l’extraction et la purification de MEP et MKp de souris. Un paramètre important dans l’optimisation du protocole était d’obtenir un nombre suffisant de cellules qui seraient compatibles avec la plupart des essais moléculaires et cellulaires. La pratique générale de la collecte d’os de souris pour l’extraction de cellules hématopoïétiques consiste généralement à prélever à la fois les fémurs et les tibias de chaque souris. L’os pelvien, autre source de matériel hématopoïétique, e.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs ne déclarent aucun intérêt financier concurrent.

Remerciements

Les auteurs tiennent à remercier Monique Freund, Catherine Ziessel et Ketty pour leur assistance technique. Ce travail a été soutenu par l’ARMESA (Association de Recherche et Développement en Médecine et Santé Publique), et par Grant ANR-17-CE14-0001-01 à Henri.de la. Salle.

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Aiguilles de calibre 21BD Microlance301155
7AADSigma-AldrichA9400
Anticorps Gr-1-biotineeBioscience13-5931-85Désappauvrissement magnétique
Anticorps B220-biotineeBioscience13-0452-85Désappauvrissement magnétique
Anticorps Mac-1-biotineeBioscience13-0112-85Magnétique appauvrissement
Anticorps CD3e-biotineeBioscience13-0031-85Épuisement magnétique
Anticorps CD4-biotineeBioscience13-9766-82Épuisement magnétique
Anticorps CD5-biotineeBioscience13-0051-85Épuisement magnétique
Anticorps CD8a-biotineeBioscience13-0081-85Épuisement magnétique
Anticorps TER119-biotineeBioscience13-5921-85Désappauvrissement magnétique
Anticorps CD127-biotineeBioscience13-1271-85Déplétion magnétique
Anticorps CD45-FITCeBioscience11-0451-85Tri cellulaire
Anticorps CD45-PEeBioscience12-0451-83Tri cellulaire
Anticorps TER119-APCeBioscience17-5921-83Tri cellulaire
Anticorps CD45-PECy7eBioscience25-0451-82Tri cellulaire
Anticorps CD45-biotineeBioscience13-0451-85Tri cellulaire
Anticorps CD9-FITCeBioscience11-0091-82Tri cellulaire
Anticorps  ; c-kit-APCeBioscience17-1171-83Tri cellulaire
Anticorps Sca-1-PEeBioscience12-5981-83Tri cellulaire
Anticorps CD16/32-PEeBioscience12-0161-83Tri cellulaire
Anticorps CD150-PECy7eBioscience25-1502-82Tri cellulaire
Milieu de culture StemSpan-SFEM Stemcelltechnologies#09650
Tampon de dissectionFisher Scientific10452395
DPBSLife Technologies14190-094
ÉthanolvWR Chemicals83813.360
PinceEuronexiaP-120-AS
Pipette en verre pasteurDutscher42011
Aimant :  ; DynaMag-5Thermo Fisher Scientific12303D
Perles magnétiques : Dynabeads Mouton Anti-Rat IgGThermo Fisher Scientific11035
MegacultStemcell technologies#04970
MethoCult SF M3436Stemcell technologies#03436
Sérum de veau nouveau-néDutscher50750-500
Lyse des globules rouges solutionBD Bioscience555899
ScalpelsFisher Scientific12308009
CiseauxEuronexiaC-165-ASB
Seringues stériles de 1 mLBD Bioscience303172
Tubes stériles de 15 mLSarstedt62.554.502
Tubes stériles de 5 mL en polypropylèneFalcon352063
Tubes stériles en polystyrène de 5 mlFalcon352054
Tubes stériles avec 70µ ; Capuchon de filtrem Falcon352235
Boîte de Pétri stérileFalcon353003
Streptavidin-APC-Cy7BD Biosciences554063Tri cellulaire
Rouleau tubulaireBenchmark ScientificR3005
cellulaire

Références

  1. Kaushansky, K. Historical review: megakaryopoiesis and thrombopoiesis. Blood. 111 (3), 981-986 (2008).
  2. Akashi, K., Traver, D., Miyamoto, T., Weissman, I. L. A clonogenic common myeloid progenitor that gives rise to all myeloid lineages. Nature. 404 (6774), 193-197 (....

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Réimpressions et autorisations

Erratum


Formal Correction: Erratum: Isolation of Mouse Megakaryocyte Progenitors
Posted by JoVE Editors on 7/28/2021. Citeable Link.

An erratum was issued for: Isolation of Mouse Megakaryocyte Progenitors. A figure was updated.

Figure 2 was updated from:

Hematopoietic cell separation diagram with flow cytometry result, showing Lin+ and Lin- fractions.
Figure 2: Magnetic depletion of lineage committed (Lin) cells. (A) Schematic representation of the magnetic depletion protocol. First, unsorted bone marrow cells are labeled with the biotin-conjugated rat anti-mouse antibody cocktail. Cells are then incubated with anti-rat Ig coated magnetic beads and subsequently subjected to the magnetic depletion using a strong magnet. The magnet will retain the labeled magnetic Lin+ fraction against the tube walls, while the unlabeled non-magnetic Lin- negative fraction will be collected in a new tube. (B) Lineage committed cells can be identified using fluorescent conjugated streptavidin. Typical analysis of the lineage expression in cells prior to magnetic depletion (total bone marrow) and after magnetic depletion (Lin- Fraction) N = 21. Please click here to view a larger version of this figure.

to:

Hematopoietic cell separation process diagram with antibody labeling and magnet use, flow cytometry results.
Figure 2: Magnetic depletion of lineage committed (Lin) cells. (A) Schematic representation of the magnetic depletion protocol. First, unsorted bone marrow cells are labeled with the biotin-conjugated rat anti-mouse antibody cocktail. Cells are then incubated with anti-rat Ig coated magnetic beads and subsequently subjected to the magnetic depletion using a strong magnet. The magnet will retain the labeled magnetic Lin+ fraction against the tube walls, while the unlabeled non-magnetic Lin- negative fraction will be collected in a new tube. (B) Lineage committed cells can be identified using fluorescent conjugated streptavidin. Typical analysis of the lineage expression in cells prior to magnetic depletion (total bone marrow) and after magnetic depletion (Lin- Fraction) N = 21. Please click here to view a larger version of this figure.

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