Cette méthode décrit la purification par cytométrie en flux de MEP et de MKp à partir de fémurs, de tibias et d’os pelviens de souris.
Un abonnement JoVE est requis pour visualiser ce contenu. Connectez-vous ou commencez votre période d'essai gratuite.
Article de méthode
Cette méthode décrit la purification par cytométrie en flux de MEP et de MKp à partir de fémurs, de tibias et d’os pelviens de souris.
Les mégacaryocytes de la moelle osseuse sont de grandes cellules polyploïdes qui assurent la production de plaquettes sanguines. Ils proviennent de cellules souches hématopoïétiques par le biais de la mégacaryopoïèse. Les dernières étapes de ce processus sont complexes et impliquent classiquement les progéniteurs bipotents mégacaryocytes-érythrocytaires (MEP) et les progéniteurs mégacaryocytaires unipotents (MKp). Ces populations précèdent la formation de mégacaryocytes de bonne foi et, à ce titre, leur isolement et leur caractérisation pourraient permettre une analyse robuste et impartiale de la formation de mégacaryocytes. Ce protocole présente en détail la procédure de collecte des cellules hématopoïétiques de la moelle osseuse de souris, l’enrichissement des progéniteurs hématopoïétiques par épuisement magnétique et enfin une stratégie de tri cellulaire qui donne des populations de MEP et de MKp hautement purifiées. Tout d’abord, les cellules de la moelle osseuse sont prélevées sur le fémur, le tibia et la crête iliaque, un os qui contient un grand nombre de progéniteurs hématopoïétiques. L’utilisation d’os de la crête iliaque augmente considérablement le nombre total de cellules obtenues par souris et contribue ainsi à une utilisation plus éthique des animaux. Une déplétion de la lignée magnétique a été optimisée à l’aide de billes magnétiques de 450 nm permettant un tri cellulaire très efficace par cytométrie en flux. Enfin, le protocole présente la stratégie d’étiquetage et de contrôle pour le tri des deux populations de progéniteurs mégacarytaires hautement purifiés : MEP (Lin-Sca-1-c-Kit+CD16/32-CD150+CD9dim) et MKp (Lin- Sca-1-c-Kit+CD16/32-CD150+CD9bright ). Cette technique est facile à mettre en œuvre et fournit suffisamment de matériel cellulaire pour effectuer i) la caractérisation moléculaire pour une connaissance plus approfondie de leur identité et de leur biologie, ii) les tests de différenciation in vitro, qui permettront de mieux comprendre les mécanismes de maturation des mégacaryocytes, ou iii) les modèles in vitro d’interaction avec leur microenvironnement.
Les plaquettes sanguines sont produites par les mégacaryocytes. Ces grandes cellules polyploïdes sont situées dans la moelle osseuse et comme pour toutes les cellules sanguines, elles sont dérivées de cellules souches hématopoïétiques (CSH)1. La voie classique de production de mégacaryocytes dans la moelle osseuse provient du HSC et implique la génération de différents progéniteurs qui restreignent progressivement leur potentiel de différenciation2. Le premier progéniteur signant l’engagement envers la lignée mégacaryocytaire est le Megakaryocyte-Erythrocyte Progenitor (MEP), un progéniteur bipotent capable de produire à....
Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.
Les protocoles impliquant des animaux ont été réalisés conformément au Comité CREMEAS d’éthique de l’expérimentation animale de l’Université de Strasbourg (Comité Régional d’Ethique en Matière d’Expérimentation Animale Strasbourg. Numéro de permis : E67-482-10).
1. Collecte d’os de souris
Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.
L’analyse phénotypique des cellules identifiées comme MEP et MKp a été réalisée par cytométrie en flux. Les cellules ont été marquées avec des anticorps conjugués par fluorescence contre CD41a et CD42c, marqueurs classiques des lignées mégacaryocytaires et plaquettaires. Les deux marqueurs ont été exprimés par les cellules de la population MKp alors que ces marqueurs ne sont pas encore détectés à la surface des cellules de la population MEP (Figure 4Ai, 4Aii). La polyploïdie.......
Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.
La méthode décrite dans cet article permet l’extraction et la purification de MEP et MKp de souris. Un paramètre important dans l’optimisation du protocole était d’obtenir un nombre suffisant de cellules qui seraient compatibles avec la plupart des essais moléculaires et cellulaires. La pratique générale de la collecte d’os de souris pour l’extraction de cellules hématopoïétiques consiste généralement à prélever à la fois les fémurs et les tibias de chaque souris. L’os pelvien, autre source de matériel hématopoïétique, e.......
Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.
Les auteurs ne déclarent aucun intérêt financier concurrent.
Les auteurs tiennent à remercier Monique Freund, Catherine Ziessel et Ketty pour leur assistance technique. Ce travail a été soutenu par l’ARMESA (Association de Recherche et Développement en Médecine et Santé Publique), et par Grant ANR-17-CE14-0001-01 à Henri.de la. Salle.
....Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.
| Nom | Entreprise | Numéro de catalogue | Commentaires |
|---|---|---|---|
| Aiguilles de calibre 21 | BD Microlance | 301155 | |
| 7AAD | Sigma-Aldrich | A9400 | |
| Anticorps Gr-1-biotine | eBioscience | 13-5931-85 | Désappauvrissement magnétique |
| Anticorps B220-biotine | eBioscience | 13-0452-85 | Désappauvrissement magnétique |
| Anticorps Mac-1-biotine | eBioscience | 13-0112-85 | Magnétique appauvrissement |
| Anticorps CD3e-biotine | eBioscience | 13-0031-85 | Épuisement magnétique |
| Anticorps CD4-biotine | eBioscience | 13-9766-82 | Épuisement magnétique |
| Anticorps CD5-biotine | eBioscience | 13-0051-85 | Épuisement magnétique |
| Anticorps CD8a-biotine | eBioscience | 13-0081-85 | Épuisement magnétique |
| Anticorps TER119-biotine | eBioscience | 13-5921-85 | Désappauvrissement magnétique |
| Anticorps CD127-biotine | eBioscience | 13-1271-85 | Déplétion magnétique |
| Anticorps CD45-FITC | eBioscience | 11-0451-85 | Tri cellulaire |
| Anticorps CD45-PE | eBioscience | 12-0451-83 | Tri cellulaire |
| Anticorps TER119-APC | eBioscience | 17-5921-83 | Tri cellulaire |
| Anticorps CD45-PECy7 | eBioscience | 25-0451-82 | Tri cellulaire |
| Anticorps CD45-biotine | eBioscience | 13-0451-85 | Tri cellulaire |
| Anticorps CD9-FITC | eBioscience | 11-0091-82 | Tri cellulaire |
| Anticorps ; c-kit-APC | eBioscience | 17-1171-83 | Tri cellulaire |
| Anticorps Sca-1-PE | eBioscience | 12-5981-83 | Tri cellulaire |
| Anticorps CD16/32-PE | eBioscience | 12-0161-83 | Tri cellulaire |
| Anticorps CD150-PECy7 | eBioscience | 25-1502-82 | Tri cellulaire |
| Milieu de culture StemSpan-SFEM Stemcell | technologies | #09650 | |
| Tampon de dissection | Fisher Scientific | 10452395 | |
| DPBS | Life Technologies | 14190-094 | |
| Éthanol | vWR Chemicals | 83813.360 | |
| Pince | Euronexia | P-120-AS | |
| Pipette en verre pasteur | Dutscher | 42011 | |
| Aimant : ; DynaMag-5 | Thermo Fisher Scientific | 12303D | |
| Perles magnétiques : Dynabeads Mouton Anti-Rat IgG | Thermo Fisher Scientific | 11035 | |
| Megacult | Stemcell technologies | #04970 | |
| MethoCult SF M3436 | Stemcell technologies | #03436 | |
| Sérum de veau nouveau-né | Dutscher | 50750-500 | |
| Lyse des globules rouges solution | BD Bioscience | 555899 | |
| Scalpels | Fisher Scientific | 12308009 | |
| Ciseaux | Euronexia | C-165-ASB | |
| Seringues stériles de 1 mL | BD Bioscience | 303172 | |
| Tubes stériles de 15 mL | Sarstedt | 62.554.502 | |
| Tubes stériles de 5 mL en polypropylène | Falcon | 352063 | |
| Tubes stériles en polystyrène de 5 ml | Falcon | 352054 | |
| Tubes stériles avec 70µ ; Capuchon de filtre | m Falcon | 352235 | |
| Boîte de Pétri stérile | Falcon | 353003 | |
| Streptavidin-APC-Cy7 | BD Biosciences | 554063 | Tri cellulaire |
| Rouleau tubulaire | Benchmark Scientific | R3005 |
Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.
An erratum was issued for: Isolation of Mouse Megakaryocyte Progenitors. A figure was updated.
Figure 2 was updated from:

Figure 2: Magnetic depletion of lineage committed (Lin) cells. (A) Schematic representation of the magnetic depletion protocol. First, unsorted bone marrow cells are labeled with the biotin-conjugated rat anti-mouse antibody cocktail. Cells are then incubated with anti-rat Ig coated magnetic beads and subsequently subjected to the magnetic depletion using a strong magnet. The magnet will retain the labeled magnetic Lin+ fraction against the tube walls, while the unlabeled non-magnetic Lin- negative fraction will be collected in a new tube. (B) Lineage committed cells can be identified using fluorescent conjugated streptavidin. Typical analysis of the lineage expression in cells prior to magnetic depletion (total bone marrow) and after magnetic depletion (Lin- Fraction) N = 21. Please click here to view a larger version of this figure.
to:

Figure 2: Magnetic depletion of lineage committed (Lin) cells. (A) Schematic representation of the magnetic depletion protocol. First, unsorted bone marrow cells are labeled with the biotin-conjugated rat anti-mouse antibody cocktail. Cells are then incubated with anti-rat Ig coated magnetic beads and subsequently subjected to the magnetic depletion using a strong magnet. The magnet will retain the labeled magnetic Lin+ fraction against the tube walls, while the unlabeled non-magnetic Lin- negative fraction will be collected in a new tube. (B) Lineage committed cells can be identified using fluorescent conjugated streptavidin. Typical analysis of the lineage expression in cells prior to magnetic depletion (total bone marrow) and after magnetic depletion (Lin- Fraction) N = 21. Please click here to view a larger version of this figure.