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Article de méthode

Coloration immunohistochimique fluorescente multiplexée de quatre types de cellules immunitaires de l’endomètre lors d’une fausse couche récurrente

3.4K vues

DOI :

10.3791/62931

4 août 2021

Dans cet article

Résumé

Malgré les progrès de l’immunohistochimie multiplexe et de l’imagerie multispectrale, caractériser la densité et le regroupement simultané des principales cellules immunitaires dans l’endomètre reste un défi. Cet article décrit un protocole de coloration multiplex détaillé et une imagerie pour la localisation simultanée de quatre types de cellules immunitaires dans l’endomètre.

Résumé

L’immunohistochimie est la méthode la plus couramment utilisée pour l’identification et la visualisation des antigènes tissulaires dans la recherche biologique et le diagnostic clinique. Il peut être utilisé pour caractériser divers processus biologiques ou pathologies, tels que la cicatrisation des plaies, la réponse immunitaire, le rejet tissulaire et les interactions tissu-biomatériau. Cependant, la visualisation et la quantification de plusieurs antigènes (en particulier pour les cellules immunitaires) dans une seule section de tissu à l’aide d’une coloration immunohistochimique conventionnelle (IHC) restent insatisfaisantes. Par conséquent, des technologies multiplexées ont été introduites ces dernières années pour identifier plusieurs marqueurs biologiques dans un seul échantillon de tissu ou un ensemble d’échantillons de tissus différents.

Ces technologies peuvent être particulièrement utiles pour différencier les changements dans les interactions cellules-à-cellule immunitaires dans l’endomètre entre les femmes fertiles et les femmes ayant des fausses couches récurrentes pendant l’implantation. Cet article décrit un protocole détaillé pour la coloration IHC par fluorescence multiplexée afin d’étudier la densité et le regroupement simultanément de quatre principaux types de cellules immunitaires dans des échantillons d’endomètre chronométrés avec précision lors de l’implantation d’embryons. La méthode comprend la préparation des échantillons, l’optimisation du multiplexe avec des marqueurs pour les sous-types de cellules immunitaires et le balayage des lames, suivi de l’analyse des données, avec une référence spécifique à la détection des cellules immunitaires de l’endomètre.

En utilisant cette méthode, la densité et le regroupement de quatre principaux types de cellules immunitaires dans l’endomètre peuvent être analysés simultanément dans une seule section de tissu. En outre, cet article traitera des facteurs critiques et du dépannage pour surmonter les interférences possibles de fluorophores entre les sondes fluorescentes appliquées. Il est important de noter que les résultats de cette technique de coloration multiplex peuvent aider à fournir une compréhension approfondie de l’interaction immunologique et de la régulation lors de l’implantation embryonnaire.

Introduction

Une fausse couche récurrente (RM) peut être définie comme la perte de deux grossesses ou plus avant 24 semaines de gestation1. Cette condition de reproduction fréquente affecte jusqu’à 1% des couples dans le monde2,3. La physiopathologie est multifactorielle et peut être divisée en causes embryologiques (principalement dues à un caryotype embryonnaire anormal) et causes maternelles qui affectent l’endomètre et / ou le développement placentaire. Cette manifestation peut résulter d’anomalies génétiques parentales, d’anomalies utérines, de conditions prothrombotiques, de facteurs endocrino....

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Protocole

L’étude a été approuvée par le Comité d’éthique de la recherche clinique du cluster Co chinese University of Hong Kong-New Territories East Cluster. Le consentement éclairé des participants a été obtenu avant de prélever les biopsies de l’endomètre. Reportez-vous à la section d’introduction pour connaître les critères d’inclusion des groupes témoin et RM.

1. Préparation de l’échantillon

  1. Assurez-vous que toutes les femmes de cette étude subissent un test quotidien de jauge d’urine à partir du jour 9 du cycle menstruel pour identifier la poussée d’hormone lutéinisante (LH) afin de détecter l’ovulation et chronométrer les biopsies de....

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Résultats

Le processus schématique global d’exécution d’un test multiplex à 4 couleurs pour la détection de 4 types de cellules immunitaires de l’endomètre est illustré à la figure 1. En bref, le protocole pour cette coloration par immunofluorescence multiplex nécessitait 8 étapes clés: 1. Préparation des lames, 2. Récupération de l’épitope, 3. Blocage, 4. Application d’anticorps primaires, 5. Application d’anticorps secondaires, 6. Amplification du signal, 7. Retrait de l’anticorps et 8. Contre-tache.......

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Discussion

Étapes critiques du protocole
Il est important de noter que la coloration multiplex nécessite une optimisation diligente. La récupération d’antigènes, à l’aide de la technologie du tampon de citrate et des micro-ondes, nécessite une optimisation pour assurer un décapage complet des anticorps et maintenir la viabilité des tissus. Comme les réactifs de la TSA se lient de manière covalente aux sites entourant l’antigène, ils peuvent potentiellement inhiber la liaison d’un anticorps primaire ultérieur par.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs déclarent qu’ils n’ont aucun conflit d’intérêts à divulguer.

Remerciements

Cette étude a été soutenue par le Hong Kong Obstetrical and Gynecological Trust Fund en 2018 et le Hong Kong Health and Medical Research Fund (06170186, 07180226).

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
Diluant d’amplificationPerkin ElmerFP1498Tampon de diluant fluorophore
Diluant d’anticorpsPerkin ElmerARD1001EADiluation de l’anticorps
CD3Spring BioscienceM3072Anticorps primaire
CD20Biocare MedicalCM004BAnticorps primaire
CD56LeicaNCL-CD56-504Primaire anticorps
CD68Spring BioscienceM5510Anticorps primaires
Citrate Buffer Solution, pH 6,0 (10x)AbcamAB64214Solution de récupération d’antigène
EMSURE Xylène (mélange isomère)Merck108297Déparaffinage
Éthanol absoluMerck107017Alcool éthylique pour la réhydratation
HistoCore BIOCUT Manuel Rotatif Leica MicrotomeLeicaRM2125RTSSection de tissus inclus en paraffine
inForm Logiciel avancé d’analyse d’imagesPerkin ElmerinForm® ; Tissue Finder Software 2.2.1 (version 14.0)Logiciel d’analyse de données
Mantra® ; Poste de travailAkoya BiosciencesCLS140089Imagerie spectrale
Micro-ondesPanasonicInverterDécapant micro-ondes
Opal 520Perkin ElmerFP1487ARéactif fluorescent approprié à base de tyramide
Opal 620Perkin ElmerFP1495ARéactif fluorescent approprié à base de tyramide
Opale 650Perkin ElmerFP1496ARéactif fluorescent approprié à base de tyramide
Opal 690Perkin ElmerFP1497ARéactif fluorescent approprié à base de tyramide
FourMemmertU10Solution de blocage de la
peroxydaseDAKOS2023Élimination des activités de peroxydase tissulaire
Lame revêtue de poly-L-lysineFISHER SCIENTIFIC120-550-15Lame pour utilisation histologique de routine
PolyHRP Broad SpectrumPerkin ElmerARH1001EAAnticorps secondaire
ProLong&trade ; Gold Antifade MountantThemoFisher ScientificP36930Montage
Spatstat/Version 2.1-0Analyse de la forme des points spatiaux
DAPI spectralPerkinElmer FP1490AColoration des acides nucléiques
Processeur de tissusThermo FischerExcelsior ESTraitement des tissus pour la déshydratation et la paraffination
Tris Buffer Saline (TBS), 10xCell Signaling Technology12498SSolution de lavage
Tween 20Sigma-AldrichP1370-1LDétergent non ionique
de déparaffinage

Références

  1. ESHRE Guideline Group on RPL et al. ESHRE guideline: recurrent pregnancy loss. Human Reproduction Open. 2018 (2), 004(2018).
  2. Stirrat, G. M. Recurrent miscarriage. Lancet. 336 (8716), 673-675 (1990).
  3. Rai, R., Regan, L.

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Réimpressions et autorisations

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