Les gliomes infiltrant de manière diffuse sont associés à une morbidité et une mortalité élevées en raison de la nature infiltrante de la propagation tumorale. Ce sont des tumeurs morphologiquement complexes, avec un degré élevé de variabilité protéomique à la fois dans la tumeur elle-même et dans son microenvironnement hétérogène. Le potentiel malin de ces tumeurs est renforcé par la dérégulation des protéines impliquées dans plusieurs voies clés, y compris les processus qui maintiennent la stabilité cellulaire et préservent l’intégrité structurelle du microenvironnement. Bien qu’il y ait eu de nombreuses analyses de gliome en vrac et unicellulaire, il y a une relative rareté de stratification spatiale de ces données protéomiques. Comprendre les différences dans la distribution spatiale des facteurs tumorigènes et des populations de cellules immunitaires entre la tumeur intrinsèque, la bordure invasive et le microenvironnement offre des informations précieuses sur les mécanismes sous-jacents à la prolifération et à la propagation des tumeurs. Le profilage spatial numérique (DSP) représente une technologie puissante qui peut constituer la base de ces importantes analyses multicouches.
DSP est une méthode qui quantifie efficacement l’expression des protéines dans les régions spatiales spécifiées par l’utilisateur dans un échantillon de tissu. DSP est idéal pour étudier l’expression différentielle de plusieurs protéines dans et entre les régions de distinction, permettant plusieurs niveaux d’analyse quantitative et qualitative. Le protocole DSP est systématique et convivial, permettant une analyse spatiale personnalisée des données protéomiques. Dans cette expérience, des puces à ADN tissulaires sont construites à partir de biopsies de forage de glioblastome archivées. Ensuite, un panel d’anticorps est sélectionné, ciblant les protéines d’intérêt dans l’échantillon. Les anticorps, qui sont préconjugués aux oligonucléotides d’ADN photoclivables par UV, sont ensuite incubés avec l’échantillon de tissu pendant une nuit. Dans le cadre de la visualisation par microscopie à fluorescence des anticorps, les régions d’intérêt (ROI) dans lesquelles quantifier l’expression des protéines sont définies avec les échantillons. La lumière UV est ensuite dirigée vers chaque ROI, clivant les oligonucléotides d’ADN. Les oligonucléotides sont microaspirés et comptés dans chaque ROI, quantifiant la protéine correspondante sur une base spatiale.