Nous décrivons un protocole pour l’isolement des cellules souches mésenchymateuses du tissu du cordon ombilical humain et leur différenciation dans la lignée musculaire squelettique.
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Article de méthode
Nous décrivons un protocole pour l’isolement des cellules souches mésenchymateuses du tissu du cordon ombilical humain et leur différenciation dans la lignée musculaire squelettique.
L’exploration du potentiel thérapeutique des cellules souches mésenchymateuses dépend de la facilité d’isolement, de la puissance vers la différenciation, ainsi que de la fiabilité et de la robustesse de la source. Nous décrivons ici un protocole par étapes pour l’isolement des cellules souches mésenchymateuses du tissu du cordon ombilical humain (cSM), leur immunophénotypage et la propagation de telles cultures sur plusieurs passages. Dans cette procédure, la viabilité des uMSC est élevée car il n’y a pas de digestion enzymatique. De plus, l’ablation des vaisseaux sanguins, y compris les artères du cordon ombilical et la veine, garantit qu’il n’y a pas de contamination des cellules d’origine endothéliale. En utilisant la cytométrie en flux, les cSEm lors de l’isolement sont CD45−CD34−, ce qui indique une absence de cellules de la lignée hématopoïétique. Il est important de noter qu’ils expriment les marqueurs de surface clés, CD105, CD90 et CD73. Lors de l’établissement des cultures, cet article décrit une méthode efficace pour induire la différenciation de ces uMSC dans la lignée musculaire squelettique. Une analyse détaillée de la progression myogénique dans les uMSC différenciés révèle que les uMSC expriment Pax7, un marqueur des progéniteurs myogéniques dans les premiers stades de différenciation, suivis de l’expression de MyoD et Myf5, et, enfin, d’un marqueur de différenciation terminal, la chaîne lourde de myosine (MyHC).
Le cordon ombilical humain a été crédité de posséder un réservoir robuste de cellules souches mésenchymateuses, qui sont actuellement explorées pour les thérapies régénératives en raison de leurs taux de prolifération et de différenciation robustes, de leurs propriétés immunomodulatrices et de leur capacité à générer des cellules à partir des trois couches germinales1. Le tissu du cordon ombilical se compose de plusieurs compartiments tels que le sang de cordon ombilical, le sous-endothélium de la veine ombilicale et la gelée de Wharton (WJ), qui englobe en soi trois régions indistinctes: la zone périvasculaire, la zone intervasculaire et le so....
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L’utilisation du tissu de cordon ombilical dans cette étude a été approuvée par le Comité institutionnel pour la recherche sur les cellules souches (IC-SCR), le Comité d’éthique institutionnelle, l’Institut translationnel des sciences et de la technologie de la santé (IEC-THSTI), le Comité d’éthique institutionnelle de l’hôpital civil de Gurugram, Haryana, et le Comité institutionnel de biosécurité, THSTI. Des échantillons de tissu de cordon humain ont été prélevés lors d’accouchements à terme au moment de la naissance. Le consentement écrit éclairé a été obtenu des sujets. Toutes les méthodes ont été mises en œuvre conformément aux directives et réglementations perti....
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Le succès de l’isolement des cSUm du tissu du cordon ombilical est >95%, contrairement aux faibles taux de réussite du sang de cordon entier. Une fois l’isolement réussi des cSEm, l’analyse FACS révèle que toutes les cellules sont CD34−CD45−CD105+CD90+. Cependant, dans l’analyse comparative, les cSEm isolés du sang de cordon présentent des populations hétérogènes, dans lesquelles une proportion de cellules présentent CD34 + CD45 + CD105+ (~ 1.......
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Étapes critiques
Une étape critique de ce protocole est la collecte de tissus dans des conditions aseptiques, du moment de l’accouchement au maintien des cultures stériles, pendant toute la durée de la propagation. Lors de la collecte du cordon, il est essentiel que le cordon ne touche aucune surface non stérilisée et soit tamponné à l’extérieur avec de l’éthanol à 70% avant d’être collecté dans des tubes contenant du PBS complété par des antibiotiques. Il est important de limiter le temps entre la co.......
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Les auteurs ne déclarent aucun intérêt concurrent.
Nous remercions M. Ojas Tikoo pour son aide pour le tournage et la production vidéo. Nous reconnaissons également l’aide reçue du personnel du GARBH-Ini (Groupe interdisciplinaire sur la recherche avancée et l’issue de la naissance -DBT India), des infirmières et des agents de recherche principaux de l’hôpital civil gurugram et du Dr Pallavi Kshetrapal pour l’aide à la logistique. Ce travail a été soutenu par des subventions accordées à Suchitra Gopinath par le Département de biotechnologie de l’Inde (BT/09/IYBA/2015; BT/PR29599/PFN/20/1393/2018).
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| Nom | Entreprise | Numéro de catalogue | Commentaires |
|---|---|---|---|
| 4',6-diamidino-2-phénylindole (DAPI) | Thermo Fisher Scientific | D1306 | |
| Amphotéricine B | Sigma Aldrich | A2411 | |
| Solution antibiotique 100x Liquide, testé pour les endotoxines (10 000 U de pénicilline et 10 mg de streptomycine/mL dans une solution saline normale à 0,9 %) | HiMedia | A001A-50mL | |
| Anticorps anti-GAPDH | Sigma Aldrich | G8795 | |
| Anticorps anti-MyHC (My32) | Novus Biologicals | NBP2-50401AF647 | |
| Anticorps anti-MyoD (5.8A) | Novus Biologicals | NB100-56511 | |
| Anticorps anti-myogénine (clone F5D) | Novus Biologicals | NBP2-34616AF594 | |
| Anticorps anti-Pax7 | DSHB | DSHB-C1-576 | |
| APC Clone CD90 anti-humain 5E10 | BD Biosciences | 559869 | |
| Collagène de type 1 | Merck | C8919 | |
| D (+) Glucose | Sigma Aldrich | G7021 | |
| Dexaméthasone | SIGMA | D4902 | |
| FACSCanto II ou FACSAria III | BD Biosciences | ||
| Sérum fœtal bovin, qualifié Brésil | GIBCO | 10270106 | ne pas être inactivé thermiquement |
| FITC Souris anti-humaine Clone CD106 51-10C9 | BD Biosciences | 551146 | |
| FITC Souris anti-humain CD14 clone M5E2 | BD Biosciences | 557153 | |
| FITC Souris anti-humain clone CD31 WM59 | BD Biosciences | 557508 | |
| FITC Souris anti-humain CD34 clone 581 | BD Biosciences | 555821 | |
| FITC Souris anti-humain CD45 clone HI30 | BD Biosciences | 555482 | |
| FITC Souris anti-humain CD49D clone 9F10 | BD Biosciences | 560840 | |
| FITC Souris anti-humaine CD90 clone 5E10 | BD Biosciences | 555595 | |
| FITC Souris anti-humaine HLA-A,B,C clone G46-2.6 | BD Biosciences | 557348 | |
| FITC Souris anti-humain IgG clone G18-145 | BD Biosciences | 555786 | |
| FlowJo software | BD Biosciences | ||
| Gentamicine | Sigma Aldrich | G1264 | |
| Sérum de cheval | HiMedia | RM1239 | |
| Hydrocortisone | Merck | H4001 | |
| Laminine | Merck | L2020 | |
| MEM Alpha Modification sans L-glutamine, ribo- et désoxyribonucléosides | Hyclone | SH30568. FS | Milieu basal pour uMSCs |
| PE Souris clone CD105 anti-humain 266 | BD Biosciences | 560839 | |
| PE Souris clone CD44 anti-humain 515 | BD Biosciences | 550989 | |
| PE Souris anti-humain CD49E clone llA1 | BD Biosciences | 555617 | |
| PE Souris clone IgG anti-humain G18-145 | BD Biosciences | 555787 | |
| PE-Cy7 Souris anti-humaine CD73 CLONE AD2 | BD Biosciences | 561258 | |
| Solution saline tamponnée au phosphate (PBS), pH = 7,4 | HiMedia | M1866 | |
| Solution de trypsine/EDTA (1x 0,25 % de trypsine et 0,02 % d’EDTA dans une solution saline équilibrée Hanks (HBSS) | HiMedia | TCL049-100mL |
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