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Article de méthode

Isolement des hépatocytes régénérants après hépatectomie partielle chez la souris

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DOI :

10.3791/64493

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2 décembre 2022

 , 

Dans cet article

Résumé

Les hépatocytes chargés de lipides sont inhérents à la régénération du foie, mais sont généralement perdus lors de la centrifugation par gradient de densité. Ici, nous présentons un protocole d’isolement cellulaire optimisé qui conserve les hépatocytes stéatotiques, produisant des populations représentatives d’hépatocytes en régénération après hépatectomie partielle chez la souris.

Résumé

L’hépatectomie partielle a été largement utilisée pour étudier la régénération du foie chez la souris, mais l’isolement des rendements élevés d’hépatocytes viables pour des applications unicellulaires en aval est difficile. Une accumulation marquée de lipides au sein des hépatocytes en régénération est observée pendant les 2 premiers jours de régénération hépatique normale chez la souris. Cette stéatose associée à la régénération transitoire (TRAS) est temporaire mais chevauche partiellement la phase proliférative majeure. La purification par gradient de densité est l’épine dorsale de la plupart des protocoles existants pour l’isolement des hépatocytes primaires. Comme la purification par gradient repose sur la densité et la taille des cellules, elle sépare les populations d’hépatocytes non stéatotiques des populations d’hépatocytes stéatotiques. Par conséquent, les hépatocytes gras sont souvent perdus, produisant des fractions hépatocytes non représentatives.

Le protocole présenté décrit une méthode simple et fiable pour l’isolement in vivo des hépatocytes en régénération, quelle que soit leur teneur en lipides. Les hépatocytes de souris mâles C57BL/6 sont isolés 24 à 48 h après l’hépatectomie par une approche classique de perfusion de collagénase en deux étapes. Une pompe péristaltique standard conduit les solutions chauffées via la veine cave inférieure cathétérisée dans le reste, en utilisant une technique de perfusion rétrograde avec écoulement par la veine porte. Les hépatocytes sont dissociés par la collagénase pour leur libération de la capsule de Glisson. Après un lavage et une centrifugation soigneuse, les hépatocytes peuvent être utilisés pour toutes les analyses en aval. En conclusion, cet article décrit une technique simple et reproductible pour l’isolement d’une population représentative d’hépatocytes en régénération après hépatectomie partielle chez la souris. La méthode peut également aider à l’étude de la stéatose hépatique.

Introduction

Le foie peut se régénérer même après une perte tissulaire importante. Cette capacité de régénération unique est explicitement illustrée par le modèle expérimental d’hépatectomie partielle (70%), décrit pour la première fois chez le rat par Higgins et Anderson en 19311. Dans ce modèle, 70% du foie est enlevé chirurgicalement des animaux en coupant les lobes hépatiques plus gros. Les lobes restants se développent ensuite par hypertrophie compensatoire pour restaurer la masse hépatique d’origine dans environ 1 semaine après la chirurgie, mais sans restauration de l’architecture hépatique d’origine 2,3

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Protocole

Toutes les expérimentations sur les animaux étaient conformes à la réglementation fédérale sur les animaux et approuvées par l’Office vétérinaire de Zurich (n° 007/2017, 156/2019) garantissant les soins aux humains. Les souris C57BL/6 mâles âgées de 10 à 12 semaines ont été maintenues sur un cycle jour/nuit de 12 h avec un accès gratuit à la nourriture et à l’eau. Chaque groupe expérimental était composé de six à huit animaux. Voir le tableau des matériaux pour plus de détails sur tous les matériaux, équipements et réactifs utilisés dans ce protocole.

1. Hépatectomie partielle chez la souris

  1. Pour ....

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Résultats

Le TRAS culmine à 16 heures après l’hépatectomie et disparaît progressivement 32 à 48 heures après l’hépatectomie standard, mais persiste au-delà de 48 heures après une hépatectomie étendue. Macroscopiquement, TRAS est facilement visible comme un teint pâle du reste du foie (Figure 1F) et peut être observé chez les souris hépatectomisées entre 16 h et 48 h après la chirurgie.

Le rendement final estimé est de 10-15 × 10 6 hépatocytes après une hépatectomie à 70% et.......

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Discussion

Le protocole publié fournit une méthode fiable et simple pour isoler un rendement élevé d’hépatocytes murins normaux et stéatotiques pour des analyses en aval de cellules uniques ou une analyse en vrac de cellules après tri FACS. L’avantage distinct par rapport à la purification par gradient de densité est que la teneur en lipides cellulaires n’a essentiellement aucun impact sur le rendement effectif des hépatocytes. Ainsi, la fraction des hépatocytes stéatotiques sera retenue et incluse dans les analyses en aval. Ceci e.......

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Déclarations de divulgation

Les auteurs déclarent qu’ils n’ont pas d’intérêts concurrents.

Remerciements

Cette étude a été soutenue par le Fonds national suisse (subvention de projet 310030_189262).

....

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
réactifs
Alexa Fluor 488 Vert zombieBioLegend423111amines
Attane Isoflurane ad us. vet. 99.9 %Provet AGQN01AB06ATTENTION : nécessite une
ventilation Solution EDTASigma-AldrichE8008-100ML-Ethanol
Sigma-AldrichV001229Diluer avec de l’eau à 70 %
sérum de veau fœtal (SCF)GibcoA5256701-Hanks
(HBSS), Ca2+, Mg2+, rouge de phénolSigma-AldrichH9269-6x600MLPour la digestion/conservation
solution de sel équilibré de Hanks (HBSS), sans Ca2+, sans Mg2+, sans rouge de phénolSigma-AldrichH6648-6x500MLPour tampon de perfusion
HEPES solution, 1 MSigma-Aldrich83264-100ML-F-Adhésif
tissulaire histoacryle (butyl-2-cyanoacrylate)B. Braun1050052Pour la stabilisation du site de canulation
Hoechst 33258 Colorant de coloration SolutionAbcamab228550-
Liberase Research GradeRoche5401119001Collagénases lyophilisées I/II
NaCl 0,9 % 500 mL EcotainerB. Braun123-Paralube
Vet OintmentDechra17033-211-38-Saline
tamponnée au phosphate (PBS)GibcoA1286301-Sudan
IV &ndash ; Coloration lipidiqueSigma-AldrichV001423-Temgesic
(chlorhydrate de buprénorphine), solution injectable 0,3 mg/mLIndivior Europe Ltd.345928Stupéfiants. Stockez en toute sécurité.
Bleu trypan, 0,4 %, filtre stérileSigma-AldrichT8154Pour le comptage cellulaire
Williams' Medium ESigma-AldrichW4128-500ML-
Materials
25 mL pipette sérologique, Greiner CellstarMerckP7865-50
mL Falcon tubesTPP--
BD Neoflon, Pro IV Catheter 26 GGrattoir BD Falcon391349-Cell
, largeur de la lame rotative 25 mmTPP99004-Falcon
Cell Strainer 100 & micro ; m NylonBD Falcon352360-Champ
chirurgical stérile fenestré--Matériau en tissu réutilisable
Buse de remplissage pour tube de taille 16# (ID 3,1 mm)DriftonFILLINGNOZZLE#16Pour entrer dans les tubes
Tubes de cytométrie en flux, 5 mLBD Falcon352008-Male
Luer to Barb, Tube ID 3,2 mmDriftonLM41Tube de raccordement à seringue
Boîtes de Pétri, 96 x 21 mmTPP93100-Prolene
5-0Ethicon8614HPour rétracter le sternum
Prolene 6-0Ethicon8695HPour la suture cutanée
Prolene 8-0EthiconEH7470ELigature vésicule biliaire
Tube 16#, WT 1.6 mm, ID 3.2 mm, OD 6.4 mmDriftonSC0374TTube de perfusion
Equipment
BD LSRFortessa Cell Analyzer Cytomètre en fluxBD--
Isis rasoir pour rongeursAesculapGT421-Isofluran
stationProvet--
Centrifugeuse à basse vitesse &ndash ; Scanspeed 416Labogene--
Chambre de comptage améliorée par NeubauerMarienfeld--
Concentrateur d’oxygène &ndash ; EverFloPhilips  ;10200070 &ndash ; 5 L/min
Pipetboy &ndash ; Pipette Turbo-FixTPP94700-Shenchen
pompe à perfusion &ndash ; YZ1515xShenchenYZ1515x-Microscope
chirurgical &ndash ; SZX9Olympus--Matelas
chauffant ThermoLuxThermo Lux--
Vortex Genie 2, 2700 UpMNeoLab7-0092-Bain-marie
&ndash ; Precision GP 02Thermoscientific-Ajusterà 42 ° ; L
colorant de viabilité réactive aux de Solution saline équilibrée de La ,

Références

  1. Higgins, G., Anderson, R. Experimental pathology of liver. I. Restoration of liver of white rat following partial surgical removal. Archives of Pathology & Laboratory Medicine. 12, 186-202 (1931).
  2. Taub, R. Liver....

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Réimpressions et autorisations

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