Les modèles microphysiologiques cardiaques in vitro sont très fiables pour la recherche scientifique, le développement de médicaments et les applications médicales. Bien que largement acceptés par la communauté scientifique, ces systèmes sont encore limités en longévité en raison de l’absence de techniques de stimulation non invasives. Les phototransducteurs fournissent une méthode de stimulation efficace, offrant une approche sans fil avec une résolution temporelle et spatiale élevée tout en minimisant l’invasivité dans les processus de stimulation. Dans ce manuscrit, nous présentons une méthode entièrement optique pour stimuler et détecter l’activité d’un modèle microphysiologique cardiaque in vitro. Plus précisément, nous avons fabriqué des tissus anisotropes laminaires modifiés en ensemenceant des cardiomyocytes dérivés de cellules souches pluripotentes induites par l’homme (hiPSC-CM) générés dans une culture en suspension de bioréacteur 3D. Nous avons utilisé un phototransducteur, un dérivé amphiphile d’azobenzène, nommé Ziapin2, pour la stimulation et un colorant Ca2+ (X-Rhod 1) pour surveiller la réponse du système. Les résultats démontrent que Ziapin2 peut photomoduler les réponses Ca2+ dans le système utilisé sans compromettre l’intégrité, la viabilité ou le comportement des tissus. De plus, nous avons montré que l’approche de stimulation basée sur la lumière offre une résolution similaire à celle de la stimulation électrique, la référence actuelle. Dans l’ensemble, ce protocole ouvre des perspectives prometteuses pour l’application de Ziapin2 et de la photostimulation à base de matériaux dans la recherche cardiaque.