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Application combinée du colloïde soufré technétium-99m et du colorant bleu pour la détection des ganglions lymphatiques sentinelles dans le cancer du sein à un stade précoce

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DOI :

10.3791/69027

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19 décembre 2025

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1Department of Nuclear Medicine, The First Affiliated Hospital, Zhejiang University School of Medicine, 2Department of Breast Surgery, The First Affiliated Hospital, Zhejiang University School of Medicine

Dans cet article

Résumé

Cet article décrit en détail le protocole de cartographie des ganglions lymphatiques sentinelles (SLN) avec application combinée de colloïde soufré technétium-99m (99mTc-SC) et de bleu de méthylène, incluant la préparation de 99mTc-SC, l’injection de médicaments, l’acquisition et la reconstruction d’images, la cartographie bleu de méthylène et la localisation intraopératoire des SLN.

Résumé

La biopsie des ganglions sentinellaires (SLNB) est la procédure standard pour le stadification des ganglions axillaires chez les patientes atteintes d’un cancer du sein, et son application a permis d’éviter une dissection inutile des ganglions axillaires (ALND) dans le cancer du sein à un stade précoce ces dernières décennies. La localisation précise des ganglions sentinelles (SLN) aide à améliorer le taux de réussite de la SLNB. La technique à double traceur (radiocolloïde plus colorant bleu) pour la cartographie SLN améliore significativement le taux d’identification par rapport aux méthodes à traceur simple. Le radiocolloïde le plus largement adopté est le 99mTc-SC, et le bleu de méthylène est largement utilisé dans la cartographie visuelle. Cependant, des études antérieures ont montré que le taux d’identification de l’imagerie SLN varie considérablement, ce qui peut être étroitement lié au processus de préparation et à l’expérience de l’opérateur. La standardisation du protocole de cartographie SLN est cruciale pour maximiser le taux d’identification et minimiser les résultats de faux négatifs. Cet article présente un procédé détaillé utilisant 99mTc-SC combiné à du bleu de méthylène pour la cartographie SLN dans le cancer du sein à un stade précoce, incluant des procédures pour la préparation du 99mTc-SC, l’injection, l’acquisition d’images SLN, la cartographie du bleu de méthylène et la localisation intraopératoire.

Introduction

Dans le cancer du sein à un stade précoce, seule une minorité des cas présente une métastase des ganglions axillairs. Pour ces patients, la dissection des ganglions axillaires (ALND) n’apporte pas de bénéfices supplémentaires de survie et peut entraîner des complications graves telles que le lymphœdème des membressupérieurs 1,2. Le ganglion sentinelle (SLN) est défini comme le ganglion lymphatique « première station » recevant un drainage lymphatique de la tumeur dusein 3. Si le SLN ne montre pas de métastases, la probabilité de métastases dans les ganglions lymphatiques en aval est extrêmementfaible de 4. Selon les directives de 2021 intitulées Gestion de l’aisselle au cancer du sein en phase précoce : Santé Ontario (Cancer Care Ontario) et la directiveASCO 1, les patientes ayant des résultats négatifs de la biopsie du ganglion sentinelle (SLNB) peuvent être épargnées de la REAL, tandis que celles présentant 1 à 2 SLN métastatiques peuvent éviter l’ALND dans certaines conditions. Des études ont démontré que la SLNB épargne environ 70 % des patientes en début de phase de cancer du sein d’une ALNDinutile 5,6,7. Par conséquent, la détection du SLN joue un rôle crucial dans la détermination de la nécessité de la LN, améliorant significativement la qualité de viepostopératoire 1.

Différentes études ont exploré la biopsie des ganglions guidées par échographie pour déterminer les métastases ganglionnaires chez les patientes atteintes de cancer du sein, mais cette méthode donne un taux élevé de faux négatifs (FNR) de 6,4 % à 40,8 %. De plus, la présence d’un échographiste expérimenté lors de l’opération pose des défis importants pour une mise en œuvre clinique à grande échelle. Une variété de traceurs est disponible pour la cartographie SLN dans les cancers dusein 8, 9, 10, les colorants radiocolloïdes et/ou bleus, la fluorescéine, l’indocyanine verte (ICG) et l’injection de chlorhydrate de mitoxantrone. Tausch et al. ont rapporté un taux d’identification (IR) de 82 % avec le colorant bleu seul, 85 % avec le radiocolloïde seul, et 94 % lorsque les deux traceurs (radiocolloïde plus colorant bleu) étaientutilisés 11. Une méta-analyse de 13 études a révélé une résistance RI comparable pour les radiocolloïdes (96 %) et le colorant bleu (96 %), tandis que la combinaison a atteint 97 %. L’administration combinée de traceurs réduit significativement les taux de faux négatifs (FNR), les approches uniquement radiocolloïdes présentant des FNR de 16 % à 20,3 % contre 5,2 %-10,8 % pour les doublestraçeurs 13, 14, 15, 16, 17. La fluorescéine n’est pas inférieure à la 99mTc-SC et est plus économique. Cependant, sa faible pénétration tissulaire limite son application pour détecter des SLNplus profondes 18. L’ICG démontre une efficacité diagnostique comparable à celle de 99m de Tc-SC, ce qui le rend particulièrement adapté aux institutions disposant de ressources en médecinenucléaire 19,20. Néanmoins, son efficacité est faible chez les patients ayant un IMC > 30 ou des tumeurs situéesau centre 21. Certaines études ont confirmé que la performance diagnostique de l’injection de chlorhydrate de mitoxantrone est similaire à celle de 99mTc-SC pour la cartographieSLN 8,10. Cependant, le nombre limité d’études nécessite une validation clinique supplémentaire.

Bien qu’il existe de nombreux agents d’imagerie disponibles pour détecter les SLN ces dernières décennies, les directives recommandent toujours la combinaison de radiocolloïde et de colorant bleu pour la localisation des SLN dans le cancer du sein, en raison de sa forte efficacité diagnostique, de son soutien médical fondé sur des preuves substantielle, et de ses réactions indésirables gravesminimales 1,20,22. Les agents alternatifs sont la fluorescéine ou l’ICG sans le soutien d’un département de médecine nucléaire. 99mLe Tc-SC est le radiocolloïde le plus couramment utilisé. Comparé à d’autres colorants bleus, le bleu de méthylène est plus couramment utilisé dans la plupart des centresd’Asie 23, car il présente une efficacité de localisation SLN similaire à celle du bleu d’isosulfane ou du bleu breveté, mais il est plus rentable.

Les RI rapportées de SLN avec un seul colorant radiocolloïde ou bleu diffèrent significativement (de 69,8 % à 90,8 %) selon les études et dépendent fortement des protocoles procéduraux et de l’expérience del’opérateur 9,12,13,24. Par conséquent, des procédures opérationnelles standardisées sont cruciales pour garantir la cohérence des relations internationales. Plusieurs protocoles différents sont actuellement disponibles, ce qui complique les efforts de standardisation. Le premier est le temps de chauffage lors de la préparation de 99mTc-SC. Des études ont montré qu’un chauffage réduit en 3 minutes peut améliorer l’efficacité de synthèse de 99mTc-SC25. 99mLe Tc-SC préparé par un chauffage réduit de 3 minutes avait une pureté radiochimique (RCP) comparable au chauffage standard de 5 minutes (tous deux >92 %) à 0 h et 6h 26. De plus, un TC-SC de 99 mavec 3 minutes de réchauffement a montré une plus grande rétention ganglionnaire à 24 h27. Par conséquent, nous considérons que le protocole de chauffage de 3 minutes est supérieur. Deuxièmement, des injections périaréolaires et péritumorales sont recommandées pour l’administration de Tc-SC à 99m. Les études montrent que l’injection périaréolaire présentait une résistance systématique plus élevée pour la SLN axillaire comparée à l’injection péritumorale (99,3 % contre 91,1 %, P < 0,001)28. La technique périaréolaire est techniquement plus simple et présente des avantages particuliers pour les tumeurs ou lésions non palpables dans le quadrant supérieur externe, principalement en empêchant le phénomène de « traversée de la lumière» 29. De plus, l’injection périaréolaire couvre naturellement le drainage lymphatique de tous les quadrants mammaires, réduisant potentiellement le taux de détection ratée des SLN et s’avérant particulièrement bénéfique dans les tumeursmultifocales 30,31. Ainsi, nous considérons l’injection périaréolaire comme plus avantageuse.

Dans cet article, nous avons adopté un protocole à double traceur de 99mTc-SC (injection périaréolaire) préopératoire combiné à du bleu de méthylène intraopératoire (injection périaréolaire). 99mLe TC-SC a été préparé selon un protocole de chauffage réduit de 3 minutes.

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Protocole

Cette étude a été approuvée par le Comité d’approbation de la recherche clinique du First Affiliated Hospital, Zhejiang University School of Medicine [2025B] Approbation d’éthique de l’IIT n°0125. Un consentement éclairé écrit a été obtenu de tous les sujets. L’ensemble de la procédure de synthèse doit être réalisé à l’intérieur d’une hotte à fumée. Le panneau en verre plombé de la hotte offre un blindage contre les radiations, tandis que sa conception à flux d’air à pression négative empêche la dispersion des aérosols radioactifs ou des volatils, évitant ainsi l’inhalation par le personnel. Éliminez les fioles, seringues et aiguilles dans un contenant de déchets radioactifs de 99 mde Tc conformément aux réglementations applicables. Les autres matériaux doivent être traités comme déchets médicaux ordinaires. Maintenez la protection contre les radiations et la confidentialité des patients tout au long du processus.

1. Sélection des patients

REMARQUE : Selon les directives de 2021 intitulées Gestion de l’aisselle au cancer du sein en phase précoce : Santé Ontario (Cancer Care Ontario) et les directives ASCO, les patientes atteintes de cancer du sein à un stade précoce nécessitant une localisation du NSA sont identifiées par lechirurgien 1. La cartographie SLN de 99mTc-SC a été réalisée 3 à 18 heures avant l’opération.

  1. Fixez les critères d’inclusion suivants : (1) Cancer du sein à un stade précoce avec ganglions lymphatiques axillaires (ALN) cliniquement négatifs (cN0). cN0 est défini comme des résultats négatifs lors de l’examen clinique et de l’imagerie, ou l’ALN a été pathologiquement négatif par biopsie à aiguille guidée par échographie. (2) ALN négatif après une thérapie néoadjuvante chez les patients cN0. (3) Métastases ALN confirmées par biopsie chez des patients cN1, et cliniquement négatives après un traitement néoadjuvant.
  2. Fixez les critères d’exclusion suivants : (1) Cancer inflammatoire du sein. (2) Patients atteints de NAA métastatique confirmés par biopsie sans traitement néoadjuvant. (3) Patients avec une métastase ALN positive et toujours positifs après un traitement néoadjuvant.

2. Préparation du 99mTc-SC

  1. Préparatifs nécessaires avant l’étiquetage du 99mTc-SC
    1. Précommandez le kit du promédicament comprenant trois fioles : Fiole A contenant 2,0 mL d’acide chlorhydrique (HCl) à 0,15 mol/L ; Fiole B contenant 2,0 mL d’une solution tampon composée de 49,2 mg de phosphate de dihydrogène de sodium (NaH 2PO4) et 15,8 mg d’hydroxyde de sodium (NaOH) ; Fiole C, un produit lyophilisé contenant une poudre blanche soluble dans l’eau composée de 2,0 mg de thiosulfate de sodium (Na2S2O3), 2,3 mg d’édétate disodique (Na2EDTA) et 18,1 mg de gélatine. Conservez le kit dans un réfrigérateur à 4 °C.
    2. Décongélation du kit : Retirez-le 1 h avant la préparation du médicament pour atteindre la température ambiante.
    3. Commande du technétium-99m le jour de l’imagerie : Assurez-vous que l’injection de technétium-99m est éluée par un générateur Mo-Tc dans les 24 heures et qu’elle est exempte d’agents oxydants.
    4. Préparation du bain-marie : Remplissez le bain-marie avec suffisamment d’eau et chauffez-le à 100 °C, en maintenant un état d’ébullition.
      REMARQUE : Le pertéchnetate de sodium ordonné [99mTc] nécessite une activité suffisante pour compenser la perte de synthèse, et une activité de 185 MBq par patient est recommandée pour la prescription, avec un volume total de 0,5 à 1 mL. Lors de la préparation pour plusieurs patients, la dose totale de 99 mde Tc doit être augmentée en fonction du nombre de patients, avec un volume total ne dépassant pas 1 mL et une concentration radioactive ne dépassant pas 18,5 GBq/mL.
  2. Processus d’étiquetage
    1. Préparez l’injection de Tc-SC à 99 msous protection contre les radiations, généralement dans une hotte à fumée. En conditions aseptiques, injectez l’injection de pertechnetate de sodium [99mTc] dans le flacon C. Secouez soigneusement pour dissoudre la poudre lyophilisée et laissez-la reposer pendant 5 minutes.
      REMARQUE : Effectuez toutes les opérations dans des conditions aseptiques et désinfectez avant chaque retrait de la solution. Si les écouvillons désinfectants sont contaminés par des radionucléides, jetez-les sous forme de déchets radioactifs. Assurez-vous que l’air est strictement expulsé lors de l’injection de 99 mde Tc dans les fioles du kit. Maintenir une pression négative dans les fioles jusqu’à la dernière étape du retrait de la solution.
    2. Prélever 1,5 mL de solution dans la fiole A et l’injecter dans le flacon de réaction. Mélangez bien et laissez reposer encore 5 minutes pour obtenir le mélange D.
    3. Bain marie bouillant : Placez le flacon contenant le mélange D dans le bain-marie et chauffez pendant 3 minutes (Figure 1A).
      REMARQUE : Le temps de chauffage ne doit pas dépasser 3 minutes, car un chauffage prolongé peut réduire significativement le pourcentage de particules < 0,2 μm 99mTc-SC 25,26,27. Utilisez des pinces pour manipuler les fioles après ébullition afin d’éviter les brûlures.
    4. Préparez le mélange E : Retirez le flacon contenant le mélange D et laissez-le refroidir pendant 2 à 5 minutes. Ensuite, prélevez 1,5 mL de solution dans le flacon B et injectez-le dans le flacon contenant le mélange D. Mélangez soigneusement pour obtenir le mélange E. Utilisez une seringue de 5 mL pour extraire tout le mélange E.
    5. Filtration : Fixez un filtre dédié à la seringue. Remettez l’aiguille et insérez-la dans une bouteille sous vide. Filtrez lentement le mélange E sans exercer de pression pour obtenir la solution Tc-SC de 99m (Figure 1B).
  3. Préparation de l’injection finale :
    1. Utilisez une seringue de 2 mL pour extraire la solution Tc-SC 99m. Assurez-vous que chaque patient reçoit entre 37 et 55,5 MBq sur un volume total de 0,4 à 1,0 mL, de préférence proche de 0,1 mL par site afin de minimiser l’inconfort lié à l’injection. Après avoir prélevé la solution, remplacez l’aiguille par une aiguille de calibre 4,5 (26 G) pour l’administration.
      REMARQUE : Une dose totale injectée de 37 MBq est généralement considérée commesuffisante à 32.

3. Contrôle qualité du 99mTc-SC

REMARQUE : Une petite aliquote du radiopharmaceutique est aspirée dans une seringue pour des tests de contrôle qualité avant utilisation.

  1. Propriétés physicochimiques
    1. Confirmez que l’injecté préparé est une suspension colloïdale stabilisée à la gélatine, stérile et sans pyrogènes, adaptée à une administration intraveineuse. Selon les exigences de la Pharmacopée des États-Unis (USP)33, assurez-vous que le pH varie entre 4,5 et 7,5.
      REMARQUE : La valeur de pH de 99mTc-SC synthétisée dans cette étude était de ~6,0.
  2. Pureté radiochimique (RCP)
    1. Effectuer la détermination de la pureté radiochimique (RCP) des échantillons de 0 h et 6 h à partir des protocoles de chauffage de 3 min et 5 min conformément aux exigences de l’USP33.
      1. Prélèvez 0,1 mL d’injection Tc-SC 99mde 3 min de chauffage et 5 min de chauffage à 0 h et 6 h après la préparation, puis diluez de manière appropriée (environ 1:10).
      2. Repérez les injections diluées à l’aide d’un tube capillaire de 10 μL sur une bande de papier chromatographique (25 mm × 300 mm), à un point d’environ 20 mm d’une extrémité, puis laissez sécher.
      3. En utilisant 85 % de méthanol comme phase mobile, développer le chromatogramme par la technique de chromatographie ascendante sur une période appropriée et le faire sécher.
      4. Déterminez la distribution radioactive sur le chromatogramme en effectuant un scan avec un scanner radioactif. Calculez le RCP à l’aide de la formule : RCP = 100 % - ( % de pertechnetate libre).
        REMARQUE : Une valeur RCP supérieure à 92 % était considérée comme acceptable (Figure 2). Si le RCP est inférieur à 92 % ou si tout autre paramètre de contrôle qualité ne respecte pas les normes, l’injection doit être repréparée sans condition et soumise à des tests de requalification jusqu’à ce que toutes les spécifications soient remplies.

4. Préparation et administration du patient de 99m Tc-SC

  1. Confirmez l’identité du patient, le numéro du dossier médical, le diagnostic et la localisation préopératoire de la tumeur mammaire (généralement indiquée par le chirurgien).
  2. Informez le patient de la procédure de cartographie du ganglion sentinelle (SLN), y compris la douleur potentielle par injection, les sites d’injection et le calendrier d’imagerie.
  3. Mesurez la dose radioactive de 99 mde Tc-SC avant l’injection à chaque patient (Figure 3A) afin d’assurer une dose raisonnable, afin d’obtenir une excellente imagerie et le moins de dommages possibles par radiation. Assurez-vous que chaque patient reçoive une dose totale injectée de 37 MBq sur un volume total de 0,4 mL32. Désinfectez la peau avec des prélusoires iodés, puis administrez 99m de Tc-SC par injection sous-cutanée à la région périaréolaire (positions 3, 6, 9 et 12 heures) du sein affecté (Figure 3B).
  4. Appliquez une pression sur le site d’injection avec un coton tige-coton stérile pendant 5 minutes. Après l’hémostasie, demandez à la patiente de pratiquer un massage mammaire doux pour améliorer le drainage lymphatique et d’attendre dans la zone d’attente pour la prochaineimagerie 32.
    REMARQUE : Lors de l’injection de 99m de Tc-SC, utilisez des boucliers en plomb pour réduire l’exposition aux radiations.

5. Acquisition et reconstruction d’images

  1. Pour l’acquisitiond’image 32, initiez l’imagerie ~30 minutes après l’injection (généralement entre 20 et 40 min) avec SPECT/CT.
    1. Demandez au patient d’adopter une position couchée et latérale (côté injecté adjacent au détecteur), avec les bras enlevés et les mains près de la tête.
    2. Utilisez les paramètres d’imagerie planaire suivants : mode H, collimateur à haute résolution (LEHR) à faible énergie, photopic à 140 keV avec fenêtre ±10 %, matrice 256 × 256, ZOOM 1.0, comptage de 300K, champ de vision allant de la région supraclaviculaire au diaphragme.
    3. Effectuez immédiatement l’imagerie par fusion Tomo si les SLN sont visualisés sur l’imagerie planaire. Sinon, effectuez une imagerie différée à 1 h après injection en utilisant les paramètres d’imagerie de fusion Tomo suivants : collimateur LEHR, photopic 140 keV, fenêtre ±10 %, matrice 128 × 128, ZOOM 1.0, 60 projections (intervalles de 6°, 16 s/image). Paramètres CT : 120 kV, 150 mA, épaisseur de tranche de 2,5 mm.
  2. Pour la reconstruction d’images, traiter des images sur une station de travail afin de générer des ensembles de données SPECT/CT planaires et fusionnés. Localiser les SLN sur des images fusionnées et mesurer les dimensions nodales à long axe.
  3. Si les SLN ne sont pas visualisées sur l’imagerie TC-SC à 99 m, il faut d’abord exclure les facteurscorrigables 32.
    1. Reconfirmez avec le personnel infirmier que l’injection a été administrée par voie sous-cutanée dans la région périaréolaire plutôt que profondément dans le tissu glandulaire (si c’est incorrect, injectez à nouveau 99mTc-SC).
    2. Vérifiez la présence d’une compression locale au site d’injection, qui pourrait altuer le drainage lymphatique. Si elle est présente, relâchez immédiatement la compression et demandez aux patientes de masser doucement le sein pour favoriser le flux lymphatique.
    3. Chez certains patients présentant un drainage lymphatique lent, prolongez le temps d’imagerie à 2 h, et si le résultat est négatif, effectuez une imagerie préopératoire supplémentaire 2 h avant l’opération, dans les 24 heures suivantl’injection 34,35. Si le SLN reste négatif après ces étapes, utilisez le méthylènebleu 36.

6. Cartographie intraopératoire du bleu de méthylène et identification SLN

  1. Le jour de l’opération (dans les 24 heures suivant l’administration des radiomédicaments) : injectez 1 mL de bleu de méthylène dans les tissus sous-cutanés à la position périaréolaire20, 29 heures à 3 heures et 12 heures.
  2. Après 10-15 minutes, tracez les canaux lymphatiques colorés en bleu pour localiser les SLN.
  3. Confirmez les SNL à l’aide d’un système de détection gamma (signal positif : le nœud le plus chaud et tout autre nœud chaud ayant plus de 10 % du nombre de nœuds le plus chaud).
  4. Extraire les SLN pour l’analyse des coupes congelées et veiller à ce que la prise en charge chirurgicale finale soit guidée par les résultats pathologiques du SLN.
    REMARQUE : Si la méthode du double-traceur ne peut pas localiser les SLN, un troisième traçeur, tel que l’ICG, peut être tenté. Cependant, dans la plupart des cas, la cause d’une défaillance d’imagerie peut être des facteurs tels que la métastase ganglionnaire, une obstruction lymphatique ou une perturbation du drainage lymphatique due à une chirurgie antérieure14,37. Par conséquent, d’autres méthodes de traçage SLN peuvent encore échouer. Par conséquent, dans la plupart des cas, les recommandations actuelles recommandent de procéder à un ALND20,38, la responsabilité ultime de cette décision chirurgicale incombe au chirurgien opérant.

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Résultats

Nous avons synthétisé avec succès 99mTc-SC avec RCP > 92 %, la courbe de RCP est illustrée à la Figure 2. Nous avons obtenu une cartographie SLN de haute qualité de 99mTc-SC pour détecter les SLN chez des patientes en phase précoce de cancer du sein (Figure 4). La cartographie du bleu de méthylène a été utile pour la localisation rapide des SLN pendant le fonctionnement (Figure 5

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Discussion

Dans cette étude, l’utilisation combinée de Tc-SC 99mpréopératoire et de bleu de méthylène intraopératoire a permis d’identifier la SLN de 99,8 %, tandis que les radiocolloïdes seuls ont montré un taux tout aussi élevé de 99,1 %. Ainsi, les chirurgiens peuvent atteindre un taux de détection de SLN quasi optimal en utilisant uniquement des radiocolloïdes. Cependant, dans les cas où la cartographie radiocolloïde a échoué, le bleu de méthylène a aidé à la détection des SLN, ce qu...

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Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont aucun conflit d’intérêts à divulguer.

Remerciements

Ce travail a été financé par la Fondation des sciences naturelles du Zhejiang (subvention n° LTGY23H180014) ; Programme de médecine et de sciences et technologies de la santé du Zhejiang (subvention n° 2023KY694).

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Matériaux

Liste des matériaux utilisés dans cet article
NomEntrepriseNuméro de catalogueCommentaires
0,9 % de solution salineChina Otsuka Pharmaceutical Co., Ltd.24a75B3Solution diluée
Filtre à seringue AcrodiscPALLPN46120,2 & mu ; m Membrane Supor
Article sur la chromatographieCytiva09927854Pour l’analyse de pureté radiochimique
HotteQingdao Qingdun Medical Technology Co., Ltd.20150710Protection contre les radiations dans la synthèse de médicaments
Capillaire à tache de verreSinopharm Chemical Reagent Co., LtD20250510Échantillonner l’injection pour une analyse de pureté radiochimique
Bouclier en plombSuzhou Hengkang Medical Devices Co., Ltd5mm PbProtection contre les radiations par injection
Gants médicaux jetables en caoutchouc en caoutchouc jetableSri Trang Gloves (Thaïlande) Société Publique Limitée & nbsp ;F840Protège les mains de la contamination.
MéthanolHuzhou Shuanglin Chemical Technology Co., LtD20251021Pour l’analyse de pureté radiochimique
Bleu de méthylèneJumpcan Pharmaceutical Co., Ltd.240812Cartographie intraopératoire du bleu de méthylène et identification SLN
Scanner à couches fines MiniGita radioactif TLCSepate Technology Co., LtDTLC pour la pureté radiochimique
  ; aiguilleJiangsu Kangbao Medical Equipment Co., Ltd.20240722Calibre 4,5 (26 G)
Système de détection gamma Neoprobe (GDS)Mammotome2331609Détection intraopératoire des ganglions lymphatiques sentinelles   ;
Examen de test PHSinopharm Chemical Régent & nbsp ; Co., LtD72002361Portée : 1-14
SPECT/CTGE Soins de santéDécouverte NM/CT 670Acquisition d’images
  ; SeringueZhejiang Longde Pharmaceutical Co., Ltd.  ;202404004, 2024120141 mL, 5 mL
Technétium-99MBeijing Atom High-Tech Co., Ltd.241020-111  ; Il doit être élué d’un générateur Mo-Tc dans les 24 heures, et il doit être exempt d’agents oxydants.
Fiole ABeijing Shihong Pharmaceutical Co., Ltd.2410202,0 mL d’acide chlorhydrique (HCl) à 0,15 mol/L
Fiole BBeijing Shihong Pharmaceutical Co., Ltd.2410202,0 mL d’une solution tampon composée de 49,2 mg de phosphate de dihydrogène de sodium (NaH2PO4) et 15,8 mg d’hydroxyde de sodium (NaOH).
Fiole CBeijing Shihong Pharmaceutical Co., Ltd.241020produit lyophilisé contenant une poudre blanche soluble dans l’eau composée de 2,0 mg de thiosulfate de sodium (Na2S2O3), 2,3 mg d’édétate disodique (Na2EDTA) et 18,1 mg de gélatine
Station de travail XelerisGE Soins de santéLogiciels d’imagerieImages de procédé pour générer des ensembles de données SPECT/CT planaires et fusionnés, localiser SLNs & nbsp ;

Références

  1. Brackstone, M., et al. Management of the axilla in early-stage breast cancer: Ontario Health (Cancer Care Ontario) and ASCO guideline. J Clin Oncol. 39 (27), 3056-3082 (2021).
  2. Donker, M., et al. Radiotherapy or surgery of the axilla after a positive sentinel node in breast cancer (EORTC 10981-22023 AMAROS): a randomised, multicentre, open-label, phase 3 non-inferiority trial. Lancet Oncol. 15 (12), 1303-1310 (2014).
  3. Jansen, L., et al. Clinical relevance of sentinel lymph nodes outside the axilla in patients with breast cancer. Br J Surg. 87 (7), 920-925 (2000).
  4. Amin, M. B., et al. The eighth edition AJCC cancer staging manual: continuing to build a bridge from a population-based to a more "personalized" approach to cancer staging. CA Cancer J Clin. 67 (2), 93-99 (2017).
  5. Krag, D. N., et al. Technical outcomes of sentinel-lymph-node resection and conventional axillary-lymph-node dissection in patients with clinically node-negative breast cancer: results from the NSABP B-32 randomised phase III trial. Lancet Oncol. 8 (10), 881-888 (2007).
  6. Krag, D. N., et al. Sentinel-lymph-node resection compared with conventional axillary-lymph-node dissection in clinically node-negative patients with breast cancer: overall survival findings from the NSABP B-32 randomised phase 3 trial. Lancet Oncol. 11 (10), 927-933 (2010).
  7. Veronesi, U., et al. A randomized comparison of sentinel-node biopsy with routine axillary dissection in breast cancer. N Engl J Med. 349 (6), 546-553 (2003).
  8. Yang, B., et al. A single-center, self-controlled, phase I clinical trial of mitoxantrone hydrochloride injection for lymph tracing for sentinel lymph node identification of breast cancer. Gland Surg. 10 (3), 992-1001 (2021).
  9. Swerdlow, M., et al. Determining accurate dye combinations for sentinel lymph node detection: a systematic review. Plast Reconstr Surg Glob Open. 12 (2), e5598(2024).
  10. Jiao, D., et al. Efficacy and safety of mitoxantrone hydrochloride injection for tracing axillary sentinel nodes in breast cancer: a self-controlled clinical trial. Front Oncol. 12 (1), 914057(2022).
  11. Tausch, C., et al. Sentinel node biopsy after primary chemotherapy in breast cancer: a note of caution from results of ABCSG-14. Breast J. 17 (3), 230-238 (2011).
  12. Geng, C., Chen, X., Pan, X., Li, J. The feasibility and accuracy of sentinel lymph node biopsy in initially clinically node-negative breast cancer after neoadjuvant chemotherapy: a systematic review and meta-analysis. PLoS One. 11 (9), e0162605(2016).
  13. Nathanson, S. D., Grogan, J. K., Debruyn, D., Kapke, A., Karvelis, K. Breast cancer sentinel lymph node identification rates: the influence of radiocolloid mapping, case volume, and the place of the procedure. Ann Surg Oncol. 14 (5), 1629-1637 (2007).
  14. Boughey, J. C., et al. Sentinel lymph node surgery after neoadjuvant chemotherapy in patients with node-positive breast cancer: the ACOSOG Z1071 (Alliance) clinical trial. JAMA. 310 (14), 1455-1461 (2013).
  15. Hunt, K. K., et al. Sentinel lymph node surgery after neoadjuvant chemotherapy is accurate and reduces the need for axillary dissection in breast cancer patients. Ann Surg. 250 (4), 558-566 (2009).
  16. Berrocal, J., et al. Intraoperative injection of technetium-99m sulfur colloid for sentinel lymph node biopsy in breast cancer patients: a single institution experience. Surg Res Pract. 2017 (1), 5924802(2017).
  17. Boileau, J. F., et al. Sentinel node biopsy after neoadjuvant chemotherapy in biopsy-proven node-positive breast cancer the SN FNAC study. J Clin Oncol. 33 (3), 258-264 (2015).
  18. Valiveru, R. C., et al. Low-cost fluorescein as an alternative to radiocolloid for sentinel lymph node biopsy-a prospective validation study in early breast cancer. World J Surg. 44 (10), 3417-3422 (2020).
  19. Zhang, X., et al. Diagnostic performance of indocyanine green-guided sentinel lymph node biopsy in breast cancer: a meta-analysis. PLoS One. 11 (6), e0155597(2016).
  20. Zaveri, S., et al. Operative standards for sentinel lymph node biopsy and axillary lymphadenectomy for breast cancer: review of the American College of Surgeons Commission on Cancer Standards 5.3 and 5.4. Surgery. 174 (3), 717-721 (2023).
  21. Kolbow, M., et al. The use of indocyanine green and technetium-99 for dual-tracer sentinel lymph node biopsy in breast cancer. Breast Cancer Res Treat. 213 (1), 151-159 (2025).
  22. Schmidt, M., et al. [Nuclear medicine procedure guideline for sentinel lymph node localization]. Nuklearmedizin. 63 (4), 233-246 (2024).
  23. Khadka, S., et al. Sentinel node mapping in early breast cancer: a randomized comparison of fluorescein-guided All India Institute of Medical Sciences, Anurag's technique with technetium-99m sulfur colloid plus methylene blue. Indian J Nucl Med. 37 (3), 236-244 (2022).
  24. Clarke, D., Newcombe, R. G., Mansel, R. E., Group, A. T. The learning curve in sentinel node biopsy: the ALMANAC experience. Ann Surg Oncol. 11 (3 Suppl), 211S-215S (2004).
  25. Eshima, D., et al. Technetium-99m-sulfur colloid for lymphoscintigraphy: effects of preparation parameters. J Nucl Med. 37 (9), 1575-1578 (1996).
  26. Michenfelder, M. M., Bartlett, L. J., Mahoney, D. W., Herold, T. J., Hung, J. C. Particle-size and radiochemical purity evaluations of filtered 99mTc-sulfur colloid prepared with different heating times. J Nucl Med Technol. 42 (4), 283-288 (2014).
  27. Phillips, W. T., et al. Evaluation of [(99m)Tc] liposomes as lymphoscintigraphic agents: comparison with [(99m)Tc] sulfur colloid and [(99m)Tc] human serum albumin. Nucl Med Biol. 28 (4), 435-444 (2001).
  28. Chagpar, A., et al. Validation of subareolar and periareolar injection techniques for breast sentinel lymph node biopsy. Arch Surg. 139 (6), 614-618 (2004).
  29. Malhotra, C., et al. Efficacy of periareolar versus peritumoral injection of Tc99-labelled sulphur colloid and methylene blue dye for detection of sentinel lymph node in patients with early breast cancer: a comparative study. Indian J Surg Oncol. 12 (1), 119-123 (2021).
  30. Mertz, L., et al. [Subareolar injection of 99m-Tc sulfur colloid for sentinel nodes identification in multifocal invasive breast cancer]. Bull Cancer. 86 (11), 939-945 (1999).
  31. Blanco Saiz, I., et al. [Sentinel node biopsy in patients with multifocal and multicentric breast cancer: a 5-year follow-up]. Rev Esp Med Nucl Imagen Mol. 33 (4), 199-204 (2014).
  32. Giammarile, F., et al. The EANM and SNMMI practice guideline for lymphoscintigraphy and sentinel node localization in breast cancer. Eur J Nucl Med Mol Imaging. 40 (12), 1932-1947 (2013).
  33. United States Pharmacopeia-National Formulary (USP 29-NF 24). , United States Pharmacopeial Convention. (2005).
  34. Yeung, H. W., et al. Lymphoscintigraphy and sentinel node localization in breast cancer patients: a comparison between 1-day and 2-day protocols. J Nucl Med. 42 (3), 420-423 (2001).
  35. Wang, H. Y., Tsai, C. C., Hung, G. U., Lin, W. Y. Effectiveness of delayed 2-day lymphoscintigraphy on sentinel lymph node detection in patients with breast cancer with negative early lymphoscintigraphy. Clin Nucl Med. 31 (9), 523-526 (2006).
  36. Park, K. U., et al. Sentinel lymph node biopsy in early-stage breast cancer: ASCO guideline update. J Clin Oncol. 43 (14), 1720-1741 (2025).
  37. Kohl Schwartz, A. S., et al. Does increased tumor burden of sentinel nodes in breast cancer affect detection procedure. Eur J Surg Oncol. 39 (3), 266-272 (2013).
  38. Lyman, G. H., et al. Sentinel lymph node biopsy for patients with early-stage breast cancer: American Society of Clinical Oncology clinical practice guideline update. J Clin Oncol. 35 (5), 561-564 (2017).
  39. Ratnagiri, R., et al. Performing sentinel lymph node biopsy without a hand-held gamma probe-overcoming hurdles through teamwork: an analysis of our learning curve over five years. World J Surg Oncol. 23 (1), 285(2025).

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Technique du double traceurcartographie au colorant bleubiopsie du ganglion sentinellestadification des ganglions lymphatiques axillairesbleu de m thyl nelocalisation des ganglions lymphatiques

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