Ce protocole décrit la technique chirurgicale de prélèvement d’un modèle de lambeau perforateur humain basé sur le pédicule de l’artère épigastrique inférieure profonde, destiné à la recherche expérimentale.
Un abonnement JoVE est requis pour visualiser ce contenu. Connectez-vous ou commencez votre période d'essai gratuite.
Article de méthode
Un modèle expérimental de lambeau DIEP humain pour étudier les stratégies de préservation des allograftes composites vascularisées et des lambes libres
Dans cet article
Résumé
Résumé
Récemment, des approches de préservation telles que l’injection d’agents cytoprotecteurs, la perfusion de machines ex vivo et le superrefroidissement ont émergé comme stratégies pour améliorer la préservation à long terme des organes standards et marginaux en atténuant les lésions ischémiques et hypoxiques. Bien que stimulante, son application dans le domaine de l’allotransplantation composite vascularisée (ACV) reste largement limitée à la recherche préclinique. À ce jour, la plupart des études étudiant les stratégies de perfusion VCA se sont appuyées sur des modèles animaux, en particulier des composites porcins ou rongeurs. Bien que ces modèles fournissent des perspectives mécanistiques précieuses, leurs différences anatomiques, immunologiques et physiologiques limitent la reproductibilité et la pertinence translationnelle pour des applications humaines.
Dans ce protocole, chaque étape chirurgicale requise pour l’obtention d’un lambeau perforant épigastrique inférieur profond (DIEP) humain pour les études de préservation est décrite en détail. Le perforateur est sectionné au-dessus du fascia sans dissection sous-fasciale, ce qui donne un pédicule court mais suffisant pour la cathétérisation. Ce modèle tire parti des tissus abandonnés issus des procédures standard d’abdominoplastie, sans présenter de risque supplémentaire pour le patient. Des étapes critiques sont définies pour garantir qu’un lambeau fonctionnel soit prélevé sans prolonger le temps opératoire ni compromettre la sécurité du patient. L’imagerie fonctionnelle est ensuite réalisée pour confirmer la viabilité du lambeau avant l’utilisation expérimentale, et des biopsies séquentielles peuvent être réalisées pour suivre l’intégrité tissulaire. Ce modèle est particulièrement adapté à la recherche impliquant des procédures VCA préservant les muscles — telles que la transplantation faciale partielle — et peut également avoir une pertinence pour l’étude de la conservation du lambeau libre autologue.
Introduction
L’allotransplantation composite vascularisée (ACV) représente une solution reconstructive prometteuse pour les patients présentant des défauts tissulaires complexes, en particulier du visage et des membressupérieurs 1. Cependant, l’ACV est très susceptible aux lésions ischémie-reperfusion, ce qui peut compromettre la viabilité du greffon et les résultats à longterme 2. Dans ce contexte, des approches de conservation telles que l’injection d’agents cytoprotecteurs, la perfusion machine ex vivo et le surrefroidissement ont émergé comme stratégies permettant d’allonger le temps de préservation, d’optimiser la qualité des greffons et de permettre l’évaluation de la viabilité avant latransplantation 3,4,5,6,7. Bien que la perfusion normotherme ex vivo d’organes solides ait été traduite avec succès d’une technique expérimentale de laboratoire en pratique clinique au cours de la dernièredécennie, avec des résultats prometteurs, elle reste largement confinée au cadre de recherche dans le domaine duVCA 9.
À ce jour, la plupart des études sur les protocoles de perfusion VCA se sont appuyées sur des modèles animaux, en particulier des composites porcins ourongeurs 10. Bien que ces modèles offrent des informations précieuses, ils limitent intrinsèquement la reproductibilité et la pertinence translationnelle en raison de différences anatomiques, immunologiques etphysiologiques 11,12. Les modèles de tissus humains fournissent des informations plus pertinentes, mais les tissus frais issus de donneurs en état de mort cérébrale sont extrêmement difficiles d’accès à des fins de recherche, nécessitant une logistique complexe, une approbation réglementaire stricte et soulevant des préoccupationséthiques 13,14. Une alternative idéale serait un modèle de lambeau humain, non cadavérique, éthiquement acceptable, qui ne comporte ni la complexité ni le risque d’une procédure VCA complète et qui est entièrement sûr pour le patient. Il est important de noter qu’il doit également être facilement accessible pour faciliter une recherche reproductible et évolutive.
Ici, un modèle de lambeau perforant épigastrique inférieur profond (DIEP) humain pour la recherche sur la préservation des ACV est décrit, utilisant des tissus abandonnés issus de procédures d’abdominoplastie sans risque supplémentaire pour le patient.
Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.
Protocole
Tous les patients recevaient des soins humains standards conformément à la Déclaration d’Helsinki, et le protocole a été approuvé par le comité d’éthique institutionnel (projet n° IRB00014528_2025_32). Le patient a donné son consentement éclairé pour l’utilisation des tissus jetés à des fins de recherche.
1. Soins préopératoires
REMARQUE : Ces lambeaux perforants cutanés, à l’exclusion du fascia et du muscle, proviennent de déchets chirurgicaux chez les patients, le plus souvent post-bariatrique, et ne peuvent être prélevés que dans les cas de dermolipectomie antérieure avec transposition ombilicale prévisible (c’est-à-dire un pannus abdominal important). La liposuccion programmée pendant la procédure est un critère d’exclusion. La réparation concomitante de la diastasie n’est pas une contre-indication, car cette procédure a lieu après le prélèvement du lambeau. Le pannus abdominal offre généralement une couverture au moins partielle de la zone pubienne. Les patients ne doivent avoir aucun antécédent d’événements thromboemboliques, et l’indice de masse corporelle (IMC) doit être inférieur à 30 kg/m², car des valeurs plus élevées sont associées à l’obésité et à un rapport risque-bénéfice défavorable pour les interventions non vitales électives sous anesthésie générale. Les chirurgies abdominales antérieures, à l’exception de la liposuccion, ne constituent généralement pas une contre-indication, à condition qu’un perforant soit identifié par un examen Doppler ou visualisé directement en peropératoire. Cette procédure de recherche doit également être évitée dans les véritables reconstructions unilatérales DIEP à lambeau libre, qui sont déjà des opérations longues et complexes où des étapes préopératoires supplémentaires seraient irrationnelles et augmenteraient le risque procédural.
- Effectuer le marquage préopératoire de dermolipectomie avec le patient debout à l’aide d’un stylo dermographique. Identifier la ligne médiane de la symphyse pubienne au processus xiphoïde, et tracer une ligne transversale à environ 7 cm au-dessus de la commissure vulveuse. Prolongez cette ligne latéralement d’environ 7 cm de chaque côté, en la courbant doucement vers le haut pour rejoindre juste sous les épines iliaques antérieuro-supérieures.
- Identifier les perforateurs autour de l’ombilic à l’aide d’une sonde Doppler acoustique portative (8-10 MHz) avec le patient en position couchée.
REMARQUE : Appliquez une petite quantité de gel ultrasonique stérile sur la peau pour assurer un bon accouplement acoustique. Maintenez la sonde à un angle de 45° avec une légère pression de contact pour éviter d’amortir le signal. Un son pulsatile triphasique fort indique un perforateur artériel. Marquez chaque perforateur sur la peau avec un marqueur stérile pour établir la carte perforante, comme c’est souvent le cas avant le prélèvement du lambeau DIEP. - À l’aide d’un stylo dermographique, dessinez une palette cutanée de forme elliptique des dimensions souhaitées, incluant le perforateur le long de sa bordure médiale et s’étendant de chaque côté de l’ombilic (Figure 1).
- Préparez et drapez le champ chirurgical depuis le processus xiphoïde jusqu’au tiers supérieur des cuisses, y compris la région pubienne, à l’aide de rideaux chirurgicaux stériles comme c’est généralement pratiqué en chirurgie abdominale standard.
Figure 1 : Évaluation préopératoire avant dermolipectomie abdominale post-bariatrique avec prélèvement de lambeau DIEP. (A) Marquage préopératoire effectué à l’aide d’un Doppler acoustique et d’un stylo dermographique pour identifier et délimiter les perforateurs paraumbilicaux de chaque côté de la ligne médiane. (B) Le chirurgien démontre la laxité de la peau abdominale et des tissus sous-cutanés à réséquer, en mettant en évidence le panniculus adipocutané avant l’incision le long de la ligne horizontale de marquage. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figurine.
2. Acquisition de rabats
- Détacher l’ombilic de la paroi abdominale par une incision circonférentielle jusqu’à l’hypoderme à l’aide d’une lame de scalpel n°15.
- Placez une longue suture lâche et non absorbable de chaque côté de la marge ombilicale.
- Disséquez l’ombilic verticalement à l’aide de ciseaux Mayo, du plan superficiel au plan profond, jusqu’à ce qu’il soit complètement libéré tout en préservant son pédicule ombilical.
REMARQUE : La participation des assistants est cruciale à cette étape. Des rétracteurs Gillies doivent être utilisés pour exposer l’ombilicus, tout en appliquant une traction longitudinale douce sur la longue suture non absorbable pour faciliter la dissection. La graisse entourant le pédicule ombilical forme un cordon ferme facilement palpable lors de l’isolement ombilical, permettant une identification précise et la préservation du pédicule. - Réaliser une incision transversale basse de la peau le long de la marque préopératoire, à environ 7 cm au-dessus de la commissure vulveuse, en se courbant doucement vers les épines iliaques antérieuro-supérieures de chaque côté, à l’aide d’une lame de scalpel n° 15 ou n° 21.
- Soulevez le lambeau d’abdominoplastie supérieure dans le plan sous-cutané, en commençant par l’incision inférieure et progressant crânialement vers l’ombilicus. Utilisez une électrocautérisation monopolaire à pointe fine réglée à environ 50-70 °C et 80 W en mode coagulation pour séparer le fascia droit antérieur du tissu sous-cutané et de la peau sous-jacents tout en maintenant une hémostasie méticuleuse tout au long de la dissection.
- À l’approche du pédicule ombilical précédemment isolé, réduisez la température d’électrocautérisation à environ 20-30 °C, en maintenant la puissance réglée à 80 W en mode coagulation, puis poursuivez la dissection fine à l’aide de ciseaux Metzenbaum pour éviter les blessures du pédicule.
- Identifier et isoler soigneusement les deux perforateurs paraumbilicaux dominants issus du système épigastrique inférieur profond. Disséquez chaque perforateur de façon circonférentielle sous vision directe à l’aide de ciseaux Stevens ou de petits ciseaux Metzenbaum, préservant ainsi leurs pédicules vasculaires. Ne pas étendre la dissection au-delà du niveau de l’aponévrose du rectus antérieur (Figure 2).
REMARQUE : Les perforateurs sont sélectionnés en fonction de leur taille ; Celles qui paraissent plus grandes et pulsatiles sous vision directe sont préférées. La dissection autour de l’ombilic doit être minutieuse pour éviter d’endommager ces perforateurs. - Divisez le panniculus adipocutané longitudinalement le long de la ligne médiane, du centre de l’incision pubienne inférieure jusqu’à l’ombilicus, à l’aide d’une lame n° 15, suivie d’une électrocautérisation monopolaire réglée à environ 50-70 °C.
- Poursuivre la dissection crânien jusqu’à la région xiphoïde et le long des marges costales latérales avec une électrocautérisation réglée à environ 50-70 °C, en maintenant les pédicules du lambeau intacts et non divisés (Figure 3).
REMARQUE : Cette étape 9 peut également être retardée pour des raisons pratiques si le pédicule rend la dissection supra-ombilicale difficile et peut être réalisée après la division pédiculaire à l’étape 12, selon les conditions intraopératoires. - Contrôler les saignements mineurs avec une coagulation d’intensité moyenne, en utilisant une électrocautérisation monopolaire standard réglée à 50-60 °C et 80 W en mode coagulation pour maintenir une hémostasie précise.
- Ajustez le contour de la palette cutanée avec un stylo dermographique, en fonction des marques initiales, afin de garantir que le perforateur est inclus le long du bord médial du lambeau de chaque côté du panniculus adipocutané qui a été divisé longitudinalement à l’étape 8 (Figure 4).
REMARQUE : Pour éviter les biais dus aux différences de surface exposées à la solution testée, les deux lamets (si deux sont prélevés) doivent avoir la même taille. L’épaisseur du lambeau est déterminée par le tissu sous-cutané du lambeau et ne peut pas être réduite chirurgicalement sans compromettre l’intégrité du lambeau. - Liguez le pédicule perforateur profond de l’artère épigastrique inférieure à l’aide de sutures résorbables 3-0 ou des clips automatiques, puis transpercez le perforateur au-dessus du fascia, sans dissection sous-fasciale. Notez l’heure de l’ischémie chaude.
REMARQUE : Une période d’ischémie en lambeau d’environ 10 minutes est observée avant le décollement complet et le traitement par injection d’agent cytoprotecteur. - Faites avancer la peau supra-ombilicale et la graisse sous-cutanée vers le bas, puis fixez le lambeau abdominal sous-estimé à la marge inférieure de l’incision à la ligne médiane à l’aide d’une suture non absorbable, laissant une extrémité du nœud allongée.
REMARQUE : Placez le patient en position semi-fléchie pendant cette étape. La traction vers le bas sur le lambeau abdominal supérieur aide à déterminer la quantité de peau excédentaire à réséquer. - Utilisez l’extrémité longue de la ligne médiane non absorbable reliant les zones supra-ombilicale et pubienne comme guide pour tracer, avec un stylo dermographique, la ligne de résection sur le pannicule adipocutané excédentaire, s’étendant latéralement vers chaque épine iliaque antérieur-supérieure, comme c’est généralement réalisé lors de l’abdominoplastie. Les volets DIEP sont situés sous cette ligne de résection marquée (Figure supplémentaire 1).
- Incisez le lambeau le long des marques préopératoires à l’aide d’une lame de scalpel n°15. Prélever le lambeau perforateur selon le plan préétabli, en utilisant une électrocautérité monopolaire réglée à environ 50-60 °C et 80 W en mode coagulation (Figure 5).
REMARQUE : C’est l’une des étapes les plus délicates, car le perforateur doit être inclus dans le lambeau. Une assistance est recommandée pour assurer une traction douce, tandis que l’opérateur maintient un contrôle visuel continu du perforateur tout au long de la dissection. La dissection au couteau froid n’est pas recommandée, car elle pourrait compromettre l’intégrité du lambeau et entraîner des fuites vasculaires. - Détachez complètement le lambeau perforant du tissu jeté environnant.
REMARQUE : Si deux lambeaux sont prélevés et soumis à des traitements différents, ils peuvent être distingués en posant une suture sur l’un d’eux. - Retirez le tissu dermo-adipeux redondant correspondant à l’excès de peau et de graisse retirés lors de l’abdominoplastie.
REMARQUE : Si le lambeau perforant est prélevé après l’excision de l’excès de tissu dermoadipeux pour des raisons pratiques, utilisez un stylo de cautérisation jetable stérile, à usage unique, alimenté par piles (grande pointe, environ 1 200 °C) pour compléter le décollement. Une électrode de retour ne peut pas être utilisée dans cette situation, car le tissu est complètement séparé du patient. Après avoir prélevé les lambes DIEP, l’équipe chirurgicale remet le lambeau à l’équipe de recherche en salle d’opération, puis procède à l’abdominoplastie en disséquant le long des lignes de résection pré-marquées pour détacher et retirer le pannicule adipocutané superflu.
Figure 2 : Vue intraopératoire de la dermolipectomie abdominale avec squelettisation des pédicules perforateurs épigastriques profonds inférieurs. L’image montre le champ opératoire avant la dissection supraombilicale et la division infra-ombilicale longitudinale. Les deux perforateurs bilatérals dominants de l’épigastrique inférieur profond paraumbilique sont exposés et mis en évidence avec des instruments chirurgicaux. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figurine.
Figure 3 : Vue intraopératoire après dissection supraombilicale montrant les perforateurs épigastriques inférieurs profonds bilatéralement. Les perforateurs ne sont pas ligaturés, et leur trajectoire et longueur sous-fasciales peuvent être mieux appréciées sous une traction douce (flèches blanches). Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figurine.
Figure 4 : Vue intraopératoire montrant les lambes DIEP délimitées sur la peau en forme elliptique avant la ligatura. (A) La palette cutanée est ajustée et contournée en forme elliptique à l’aide d’un stylo dermographique (cercle blanc) pour garantir l’inclusion du perforateur le long du bord médial du lambeau de chaque côté du pannicule adipocutané. (B) Vue agrandie montrant le contour du volet DIEP et le perforateur marqué par un « x » selon la cartographie Doppler préopératoire (flèche blanche). Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figurine.
Figure supplémentaire 1 : La traction vers le bas sur le lambeau abdominal supérieur aide à déterminer la quantité de peau redondante à réséquer. L’extrémité longue de la suture non absorbable de la ligne médiane reliant les régions supra-ombilicale et pubienne est utilisée comme guide. À l’aide d’un stylo dermographique, tracez la ligne de résection le long du cours de la suture (flèches blanches) sur le pannicule adipocutané redondant. Prolongez cette ligne latéralement vers chaque épine iliaque antério-supérieure. Les volets DIEP sont situés sous cette ligne de résection marquée. Veuillez cliquer ici pour télécharger ce fichier.
Figure 5 : Vue intraopératoire des lambeaux perforants profonds de l’artère épigastrique inférieure (DIEP) lors de la récolte, après la ligature pédiculaire. (A) Le lambeau DIEP, mesurant environ 10 cm × 6 cm, est délimité par un marqueur chirurgical après localisation du perforateur. (B) Une incision cutanée et un prélèvement de lambeau sont effectués le long des marques préétablies. L’incision initiale est réalisée avec une lame n° 15, suivie d’une dissection à l’aide d’une électrocautérisation monopolaire réglée à environ 50-60 °C, et 80 W en mode coagulation, lorsque l’excès de tissu cutané-adipeux reste attaché au patient. Lorsque le tissu a été complètement détaché, un stylo de cautérisage jetable, stérile, à usage unique, alimenté par piles (grande pointe, environ 1 200 °C) est utilisé pour compléter la séparation. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figurine.
3. Préparation du rabat
- Disséquez le pédicule vasculaire sous grossissement à l’aide d’instruments microchirurgicaux, et identifiez à la fois l’artère et la veine (Figure 6). Ouvrez doucement la lumière artérielle avec un dilatateur microvasculaire.
REMARQUE : Utilisez une table stérile dédiée équipée d’instruments microchirurgicaux pour préparer le lambeau. Coupez 2 à 3 mm à partir de l’extrémité artérielle pour obtenir un bord propre et régulier adapté à la cathétérise. - Pesez chaque lambeau au moment de la récolte afin de permettre une quantification ultérieure de la formation de l’œdème.
- Faites cathétériser l’artère à l’aide d’une canule 18-24 G et fixez-la dans la lumière avec une ligature de suture de soie 5-0 (Figure 7).
REMARQUE : Pour cette expérience, les lambes ont été cathétérisées à l’aide d’une canule 24-G, car l’étude impliquait l’évaluation des agents cytoprotecteurs par une seule injection. Pour les applications de perfusion machine ex vivo ou d’oxygénation par membrane extracorporelle (ECMO), la canulation doit être réalisée avec une canule plus grande de 18-20 G. En cas d’occlusion par cathéter lors d’une perfusion ex vivo , rincez doucement avec du sérum physiologique héparinisé ou remplacez la canule pour rétablir le flux. Maintenir une pression de perfusion basse (<25 mmHg) aide à prévenir la récidive. - Injectez l’agent de contraste intra-artérière par voie intra-artérielle à travers le cathéter dans l’artère perforante, et évaluez le lambeau lors de la fluoroscopie (Figure 8).
REMARQUE : L’agent de contraste doit rendre les petits capillaires uniformément radiopaques sur tout le lambeau, indiquant un territoire de perfusion adéquat fourni par le pédicule sélectionné. À ce stade, la présence de zones non perfusées peut rendre le modèle inadapté à une utilisation ultérieure en recherche ou nécessiter l’excision de la partie distale du lambeau. Les lambettes prélevées peuvent ensuite être utilisées pour des protocoles expérimentaux, placées sur une machine de perfusion, un dispositif ECMO, ou injectées avec une solution test comme agents cytoprotecteurs. Les biopsies par punch (de 1 mm à 8 mm de diamètre) peuvent être réalisées à différents moments sans compromettre l’intégrité du lambeau, permettant une évaluation cinétique des modifications histologiques des tissus.
Figure 6 : Vue post-récolte d’un lambeau DIEP de recherche. (A) Le lambeau DIEP prélevé est montré avec le pédicule vasculaire disséqué et isolé à l’aide de pinces microchirurgicales. L’extrémité artérielle est coupée de quelques millimètres pour obtenir une coupure nette, et la lumière est délicatement ouverte à l’aide d’une pince micro-dilatatrice. (B) Vue rapprochée montrant des pinces microchirurgicales fixant l’artère perforante dominante, avec un cathéter 24-G inséré dans la lumière pour l’injection d’agent de contraste. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figurine.
Figure 7 : Cathétérisation du pédicule du lambeau DIEP. (A) Le cathéter est fixé en place par une suture en soie 5-0 nouée doucement pour éviter d’obstruer la lumière du pédicule. (B) Vue du cathéter positionné sans la seringue fixée, montrant l’étendue de l’insertion du cathéter dans la lumière vasculaire. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figurine.
Figure 8 : Fluoroscopie post-récolte du lambeau DIEP démontrant l’anatomie vasculaire. (A,B) L’agent de contraste est injecté via un cathéter 24-G dans l’artère perforante dominante, illustrant le motif de branchement et la zone vascularisée, confirmant la viabilité du lambeau sur deux lambeaux différents. Veuillez cliquer ici pour voir une version agrandie de cette figurine.
Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.
Résultats
Onze lambeaux ont été prélevés sur six patientes incluses dans cette étude. Deux chirurgiens plasticiens seniors, expérimentés en chirurgie du lambeau et en abdominoplastie, ont réalisé les dissections. Chez un patient, le lambeau a été prélevé unilatéralement en raison d’un problème de dissection. Les lambes récoltées avaient un poids moyen de 198,6 ± 24,4 g (n = 11) et une taille moyenne de 10 cm × 6 cm, ce qui correspondait aux exigences d’échantillonnage pour l’étude de conservation dans laquelle ces lamets ont été u...
Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.
Discussion
Les modèles humains contribuent à faire le lien entre les études animales et la pratique clinique, améliorant la pertinence et la prédictivité de la recherche préclinique 16,17,18. Ils doivent être soigneusement conçus pour garantir la sécurité et la conformité éthique, limitant souvent la portée et l’intrusivité des expériences17. Sur les quatre lambons prélevés, aucune dissection supplémentaire n’a été ...
Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.
Déclarations de divulgation
Les auteurs n’ont rien à divulguer.
Matériaux
| Nom | Entreprise | Numéro de catalogue | Commentaires |
|---|---|---|---|
| 1 mL et 5 mL de seringue Luer-Lok | Becton Dickinson | https://www.bd.com/en-us/products-and-solutions/products/product-page.309646 | |
| 11,5" Applique le clip pour vaisseau Surgiclip II Auto Suture Medium et Small | Covidien | N/A | |
| 22&ndash ; Canule de 24 G à pointe émoussée | Medtronic Inc | N/A | |
| Suture en soie 5-0 ; | N/A | Toute suture compatible | |
| Un stylo de cautérie jetable à usage unique, alimenté par batterie ; | Helpmedical, Europe | N/A | 1200 & degré C, grosse pointe |
| Pinces Adson | MPM | 106-2112A | |
| Pinces de coagulation bipolaire | Olsen | 20-1320I | |
| Scalpel jetable #15 & #21 | Sklar | N/A | |
| Éosine ; | Microm Microtech | U/C0363 | |
| Écarteurs Faraboeuf | Medicta Instruments | N/A | |
| Cautérisation à aiguilles fines | Cormédia | N/A | |
| OEC MiniView Max | GE Healthcare | N/A | Système de fluoroscopie |
| Pinces dilatatrices | WPI | 15910 | |
| Hématoxyline ; | Microm Microtech | U/C0303 | |
| Iohexol 300 mg I/mL | GE Healthcare Canada Inc. | N/A | |
| Microciseaux | WPI | 504492 | |
| Diathermie monopolaire de Valleylab | Medtronic Inc | ||
| Medium de contraste iodé non ionique, Omnipaque 300 mg I/mL | GE Healthcare | N/A | |
| Doppler acoustique portable, 8 MHz | Parks Medical Electronics | https://www.parksmed.com/ | |
| Solution saline 0,9 % | GenDepot | S0600-101 | |
| Ensemble standard d’instruments pour chirurgie plastique | Aesculap | N/A | y compris le manche de scalpel n° 3, les ciseaux Metzenbaum et Mayo, les pinces Adson et Gillies, les ciseaux à disséquer, les hémostaux et les porte-aiguilles. |
| Ciseaux de strabisme | Surtex | 102-4109 | |
| Stylo de marquage chirurgical | Santé cardinale | 212PR | |
| Sutures Ethilon 4.0 et 3.0 | Ethicon | 1667G | |
| Pinces tissulaires | MPM | 106-0511 |
Références
- Lupon, E., et al. vascularized composite allografts in france: An update. Ann Chir Plast Esthet. , (2024).
- Messner, F., Grahammer, J., Hautz, T., Brandacher, G., Schneeberger, S. Ischemia/reperfusion injury in vascularized tissue allotransplantation: Tissue damage and clinical relevance. Curr Opin Organ Transplant. 21 (5), 503-509 (2016).
- Berkane, Y., et al. advances and perspectives in vascularized composite allotransplantation preservation. Bull Acad Natl Med. 208, 1299-1308 (2024).
- Baker, C. E., et al. Pretreatments of ex vivo vascularized composite allografts: A scoping review. Ann Plast Surg. , (2025).
- Njessi, P., et al. Preservation strategies for vascularized composite allotransplantation: An updated systematic review of a rapidly expanding field. bioRxiv. , (2025).
- Cougnon, M., et al. Inhibition of eif5a hypusination enhances antioxidant defense to prevent kidney ischemia/reperfusion injury. Redox Biol. 86, 103814(2025).
- Le Meur, Y., et al. First-in-human use of a marine oxygen carrier (m101) for organ preservation: A safety and proof-of-principle study. Am J Transplant. 20 (6), 1729-1738 (2020).
- Nicholson, M. L., Hosgood, S. A. Renal transplantation after ex vivo normothermic perfusion: The first clinical study. Am J Transplant. 13 (5), 1246-1252 (2013).
- Muss, T. E., et al. Ex-vivo perfusion of limb vascularized composite allotransplants: A systematic review of published protocols. Transpl Int. 38, 14132(2025).
- Muss, T. E., et al. A guide to the implementation and design of ex vivo perfusion machines for vascularized composite allotransplantation. Plast Reconstr Surg Glob Open. 12 (11), e6271(2024).
- Mcgonigle, P., Ruggeri, B. Animal models of human disease: Challenges in enabling translation. Biochem Pharmacol. 87 (1), 162-171 (2014).
- Pound, P., Ritskes-Hoitinga, M. Is it possible to overcome issues of external validity in preclinical animal research? Why most animal models are bound to fail. J Transl Med. 16 (1), 304(2018).
- Pirnay, J. P., et al. Access to human tissues for research and product development: From eu regulation to alarming legal developments in belgium. EMBO Rep. 16 (5), 557-562 (2015).
- Charmode, S., Ratanpara, L., Sheikh, N., Ravi, K. S., Mehra, S. Legal frameworks upholding deceased individuals' rights and enabling the use of cadavers in anatomy education and research: A systematic review. Cureus. 16 (4), e58473(2024).
- Lupon, E., et al. Engineering Vascularized Composite Allografts Using Natural Scaffolds: A Systematic Review. Tissue Eng Part B Rev. 28 (3), 677-693 (2022).
- Van Lier, D., Geven, C., Leijte, G. P., Pickkers, P. Experimental human endotoxemia as a model of systemic inflammation. Biochimie. 159, 99-106 (2019).
- Olesen, A. E., Andresen, T., Staahl, C., Drewes, A. M. Human experimental pain models for assessing the therapeutic efficacy of analgesic drugs. Pharmacol Rev. 64 (3), 722-779 (2012).
- Littman, B. H., Williams, S. A. The ultimate model organism: Progress in experimental medicine. Nat Rev Drug Discov. 4 (8), 631-638 (2005).
- Ozturk, M. B., et al. Extracorporeal free flap perfusion using extracorporeal membrane oxygenation device: An experimental model. Ann Plast Surg. 83 (6), 702-708 (2019).
- Kreidstein, M. L., Pang, C. Y., Levine, R. H., Knowlton, R. J. The isolated perfused human skin flap: Design, perfusion technique, metabolism, and vascular reactivity. Plast Reconstr Surg. 87 (4), 741-749 (1991).
- Parente, A., et al. Machine perfusion techniques for liver transplantation - a meta-analysis of the first seven randomized-controlled trials. J Hepatol. 79 (5), 1201-1213 (2023).
- Drivas, E. M., et al. Reply: A guide to the implementation and design of ex vivo perfusion machines for vascularized composite allotransplantation. Plast Reconstr Surg Glob Open. 13 (5), e6763(2025).
- Lupon, E., et al. A new method for preparation of decellularized human scaffolds for facial reconstruction. Curr Issues Mol Biol. 47 (4), (2025).
- Lupon, E., et al. Optimized decellularization of a porcine fasciocutaneaous flap. Bioengineering (Basel). 11 (4), (2024).
- Moris, D., Cendales, L. C. Sensitization and desensitization in vascularized composite allotransplantation. Front Immunol. 12, 682180(2021).
- Perraudin, T., et al. Vascularized composite hand allograft procurement and preparation for distal and proximal forearm allotransplantation: A stepwise approach. J Vis Exp. (219), e67767(2025).
- Perraudin, T., et al. Vascularized composite upper limb allograft harvesting for proximal arm allotransplantation. J Vis Exp. (220), e68170(2025).
- Barbat, P., et al. Procurement for a vascularized and reinnervated abdominal wall allotransplantation. J Vis Exp. (221), e68418(2025).
- Lupon, E. Perforator identification for propeller flap harvest: Technical insights from a case serie. Int J Surg Case Rep. 135, 111921(2025).
- Villavisanis, D. F., et al. Assisting in microsurgery: Operative and technical considerations. J Hand Surg Glob Online. 5 (3), 358-362 (2023).
- Saaiq, M., Zaib, S., Ahmad, S. Electrocautery burns: Experience with three cases and review of literature. Ann Burns Fire Disasters. 25 (4), 203-206 (2012).
- Pomahac, B., Diaz-Siso, J. R., Bueno, E. M. Evolution of indications for facial transplantation. J Plast Reconstr Aesthet Surg. 64 (11), 1410-1416 (2011).
- Barret, J. P. From partial to full-face transplantation: Total ablation and restoration, a change in the reconstructive paradigm. Int J Surg. 12 (2), 109-112 (2014).
- Dubernard, J. M., et al. Outcomes 18 months after the first human partial face transplantation. N Engl J Med. 357 (24), 2451-2460 (2007).
- Barklin, A. Systemic inflammation in the brain-dead organ donor. Acta Anaesthesiol Scand. 53 (4), 425-435 (2009).
- Slater, N. J., et al. Ex-vivo oxygenated perfusion of free flaps during ischemia time: A feasibility study in a porcine model and preliminary results. J Surg Res. 205 (2), 292-295 (2016).
- Lupon, E., et al. Microsurgery in low- and middle-income countries: Results of 20 years of experience in cambodia. J Plast Reconstr Aesthet Surg. 98, 161-169 (2024).
- Berkane, Y., et al. Reconstruction of a complex foot defect with a chimeric triple-component osteocutaneous scip-siea free flap: A case report and literature review. Arch Plast Surg. 52 (5), 310-316 (2025).
- Albadia, R., et al. Management of a large abdominal dermatofibrosarcoma protuberans requiring a life-threatening excision: A case report. Int J Surg Case Rep. 133, 111579(2025).
Accès restreint. Veuillez vous connecter ou commencer un essai pour afficher ce contenu.
Réimpressions et autorisations
