Cette vidéo montre la procédure pour différencier les cellules dendritiques myéloïdes de la moelle osseuse de souris. Isolement du tibia et du fémur de souris, et le traitement de la moelle osseuse sont démontrés. Photos montrant la morphologie des cellules avant et après différenciation, et les chiffres illustrant phénotype cellulaire et la maturation de production d'IL-12 suivantes à l'aide CpG sont affichés.
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Article de méthode
Culture de cellules dendritiques myéloïdes à partir de précurseurs de moelle osseuse
Dans cet article
Résumé
Résumé
Myéloïde des cellules dendritiques (CD) sont fréquemment utilisés pour étudier les interactions entre innée et adaptative des mécanismes immunitaires et la réponse précoce à l'infection. Parce que ce sont les antigènes les plus puissants des cellules présentatrices, les PED sont de plus en plus utilisé comme un vecteur de vaccin à l'étude de l'induction de l'antigène des réponses immunitaires spécifiques. Dans cette vidéo, nous démontrons la procédure pour la récolte de tibias et les fémurs d'une souris donneuse, le traitement de la moelle osseuse et de différenciation in vitro de PED. Les propriétés du changement PED après stimulation: les cellules dendritiques immatures sont des phagocytes puissants, alors que les PED matures sont capables de présentation des antigènes et l'interaction avec les cellules CD4 + et CD8 +. Ce changement dans l'activité fonctionnelle correspond à la régulation positive des marqueurs de surface cellulaire et la production de cytokines. De nombreux agents peuvent être utilisés pour les PED matures, y compris les cytokines et les ligands de récepteurs toll-like. Dans cette vidéo, nous démontrons comparaisons de cytométrie en flux de l'expression de deux molécules de co-stimulation, CD86 et CD40, et la cytokine, l'IL-12, suite à une stimulation pendant la nuit avec un traitement CpG ou une maquette. Après différenciation, les PED peut être manipulé pour être utilisé comme vecteur de vaccin ou de générer des antigènes spécifiques par des réponses immunitaires in vitro, pulsant en utilisant des peptides ou des protéines, ou transduites à l'aide de vecteurs viraux recombinants.
Protocole
Ce protocole a été adapté de Lutz et al. 1
Récolte et traitement de la moelle osseuse
- Isolement du tibia et du fémur: Euthanasier la souris donneuse et pulvériser les jambes avec de l'éthanol à 70%. Saisir la cheville premier fermement avec une pince émoussée et de commencer à couper la peau et la musculature sous-jacente pour exposer le tibia. Pour éviter d'endommager l'os, couper lentement et parallèlement au tibia, laissant intact le genou.
Pour nettoyer le fémur, immobiliser l'articulation du genou en saisissant avec une pince émoussée. Nettoyez la musculature avec une paire de ciseaux pointus et pinces courbes. Continuez vers le haut jusqu'à la hanche est exposée et les ciseaux peut être placée entre la tête du fémur et l'articulation de la hanche. Enlever les os en coupant entre les communes du fémur et de la hanche et le placer dans un tampon phosphate salin (PBS) sur la glace. - Prélèvement de moelle osseuse: Nettoyer la musculature restant de l'os en utilisant des ciseaux et des pinces courbes. Coupez les épiphyses de chaque os et de localiser la cavité centrale. En utilisant une seringue de 10 ml chargé avec du PBS et une 25G0.5 "aiguille, rincer la moelle osseuse dans un non-tissu boîte de Petri couché.
- Traitement de la moelle osseuse: Utilisez l'extrémité en caoutchouc du piston d'une seringue 1mL de dissocier la moelle osseuse dans une suspension à cellule unique (utiliser un haut et en bas, ne pas gratter le mouvement). Recueillir la moelle osseuse dans un tube conique faucon, et rincer la moelle osseuse résiduelle avec du PBS.
Culture de cellules dendritiques
- Resuspendre les cellules dans les médias et le nombre de DC DC précurseurs sur un hématimètre (figure 1). Vous verrez les cellules de tailles diverses, les précurseurs DC sont les plus importants et les plus brillants. Différentiellement compter que ces cellules. De deux fémurs et deux tibias d'un C57Bl type sauvage / 6 de la souris (6-8 semaines), vous devriez vous attendre entre 25-40 x 10 6 précurseurs DC totale.
Figure 1
- Cellules en culture à une densité de 2 x 10 précurseurs DC 5 / mL dans des milieux supplémentés avec DC 40 ng / mL recombinante GM-CSF murin. Cellules de la plaque chez les non-tissus enduits des boîtes de Pétri en polystyrène.
Ajouter des médias (jour 3)
Pour actualiser les médias, ajouter la moitié du volume total des milieux frais complété avec 40 ng / ml de GM-CSF.
Remplacer un tiers des médias (jour 6) et la maturation
Pour actualiser les médias, retirez soigneusement tiers du volume total des médias et de remplacer ce volume avec les médias DC frais complété avec 40 ng / ml de GM-CSF au jour 6 de la culture.
Si désiré, les cellules dendritiques peuvent être stimulés à l'aide à la maturation des cytokines ou des ligands du récepteur Toll-like. Dans la vidéo, les PED ont été mûri par la stimulation pendant la nuit avec 5 ng / mL CpG.
Récolte des cellules dendritiques
La culture DC est complète (figure 2). Les cellules seront à la fois en suspension et vaguement adhérer à la plaque. Cellules adhérées peut être enlevé en grattant le plat avec un grattoir culture de tissus et de rinçage avec du PBS. Le nombre total de cellules augmente 5-8 fois pendant la semaine de la culture et la période de différenciation, par conséquent, espérer récolter de 1 à 1,6 x 10 6 cellules / ml. 
Figure 2
Réactifs
- CC des médias
- RPMI-1640, complété par:
- 10% sérum de veau fœtal
- 100 UI / ml de pénicilline
- 100 pg / mL de streptomycine
- 1% de L-glutamine
- 0,1% de 2-mercaptoéthanol
- 1X non acides aminés essentiels
- 1X pyruvate de sodium
- Recombinant GM-CSF murin
- rmGM-CSF (Peprotech inc, au New Jersey, aucun catalogue. 315-03)
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Discussion
PED sont utiles pour les études d'innée et adaptative des interactions immunitaires, et peut être utilisé comme un vecteur vaccinal. Dans cette vidéo, nous avons démontré les étapes pour isoler la moelle osseuse et de différencier les cellules dendritiques myéloïdes in vitro. Après la période de culture, ces cellules peuvent être visualisés au microscope deux cellules comme adhérente, qui possèdent souvent des dendrites, et les cellules rondes non-adhérents. Les PED peuvent encore être manipulées pour la présentation des antigènes par d...
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Remerciements
JB est soutenu par des bourses d'études en sciences naturelles et en génie (CRSNG). Prise en charge de ce projet ont été fournis par les Instituts canadiens de recherche en santé, Grant RdP-67 066.
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Matériaux
| Nom | Entreprise | Numéro de catalogue | Commentaires | |
|---|---|---|---|---|
| GM-CSF murin recombinant | Réactif | Peptrotech | 315-03 |
Références
- Lutz, M. B., Kukutsch, N., Ogilvie, A. L., Rossner, S., Koch, F., Romani, N., Schuler, G. An advanced culture method for generating large quantities of highly pure dendritic cells from mouse bone marrow. J. Immunol. Methods. 223, 77-92 (1999).
- Gilboa, E. DC-based cancer vaccines. J. Clin. Invest. 117, 1195-1203 (2007).
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Réimpressions et autorisations
