Name: Murin procédure transplantation rénale (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-07-10T00:00:00.000+00:00
Duration: 18 min 48 s
Description: Apprenez la transplantation rénale chez la souris, une technique chirurgicale complexe pour étudier la biologie des greffes. Cette méthode permet d'évaluer la fonction du greffon par surveillance de la créatinine.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Ces études ont été soutenues en partie par un financement par le NIH R01 AI36532 au GAH. Nous tenons à souligner l&#39;appui exceptionnel de la greffe de la pathologie fournies par le Dr Tibor Nâdasdy, et les précieux conseils et de la prévoyance prévu par le regretté Dr Charles G. Orosz à initier cet effort de recherche.

Récolte des donneurs d&#39;organes (2): <ol><li> Anesthésier le donneur à l&#39;aide de pentobarbital 65mg/kg IP; anesthésie est maintenue par l&#39;isoflurane (2-3%). </li><li> Faire une incision médiane du sternum au pubis pour entrer dans le ventre des bailleurs de fonds et d&#39;exposer le rein gauche en déplaçant latéralement l&#39;intestin vers le côté droit. </li><li> Isoler le rein gauche par ligature des vaisseaux, et en divisant surrénales et des testicules avec une suture 8-0 soie. </li><li> Mobiliser l&#39;aorte au-dessus de sa jonction avec l&#39;artère et la veine rénales. </li><li> Mobiliser la veine cave inférieure (VCI) ci-dessus et en dessous de sa jonction avec l&#39;artère et la veine rénales. </li><li> Ligaturer l&#39;aorte dessous de l&#39;artère rénale et la veine avec une suture de soie 8-0 à minimiser les saignements. </li><li> Disséquer l&#39;uretère gauche du hile rénal à la vessie. </li><li> Exposer la jonction urétéro-vésicale en utilisant la rétraction caudale sur le dôme de la vessie. </li><li> Accise un petit correctif elliptique de la vessie contenant la jonction urétérovésicale gauche, utilisé pour la reconstruction urinaires par une anastomose vésico-à-vessie. L&#39;uretère droit n&#39;est pas incluse avec la vessie. </li><li> Ligaturer les IVC dessous de l&#39;artère rénale et la veine avec une suture 8-0 soie. </li><li> Ligaturer l&#39;aorte au-dessus de l&#39;artère rénale et la veine, et lentement perfuser la greffe in situ avec 0.2-0.4ml froid, hépariné solution de Ringer lactate via l&#39;aorte. </li><li> Ligaturer la veine cave inférieure au-dessus de l&#39;artère rénale et la veine avec une suture 8-0 soie. </li><li> Transect la veine rénale à sa jonction avec la VCI. </li><li> Diviser l&#39;aorte en oblique, à environ 2mm dessous de l&#39;artère rénale. </li><li> Retirez le rein et sa vascularisation avec l&#39;uretère attaché à la vessie le patch en bloc. Stocker dans une solution de lactate de Ringer sur la glace. </li><li> Euthanasier la souris donneuse par dislocation cervicale sous anesthésie. </li></ol> Récipiendaire Transplantation (2): <ol><li> Anesthésier le destinataire avec 65 mg / kg de pentobarbital ip et maintenir l&#39;anesthésie par isoflurane (2-3%). </li><li> Faire une incision médiane, la couverture de l&#39;intestin avec de la gaze humide et soigneusement rétractent vers le côté gauche. </li><li> Ligaturer l&#39;uretère droit, l&#39;artère rénale et la veine, et retirer le rein droit. </li><li> Soigneusement isoler et de clampage de l&#39;aorte sous-rénale et IVC avec deux pinces de 4 mm, après ligature microvasular les branches lombaires. </li><li> Placer une suture nylon 10-0 grâce à une épaisseur totale de l&#39;aorte et se rétractent pour faire une aortaotomy elliptique en une seule coupe (environ un cinquième du diamètre du vaisseau). </li><li> Faites une venotomy longitudinale en perçant la VCI avec une aiguille de calibre 30 et d&#39;étendre de façon appropriée en utilisant microciseaux. </li><li> Rincer la fois l&#39;aorte et IVC avec une solution saline héparinée pour effacer le sang ou des caillots intraluminale. </li><li> Retirez le rein d&#39;un donneur de la glace et la placer intra-abdominale dans le flanc droit de la souris. Le rein d&#39;un donneur est maintenu humide avec un tampon de gaze imbibé de sérum physiologique froid. </li><li> Placer deux points de suture séjour à l&#39;apex proximales et distales de l&#39;aortaotomy destinataires avec le brassard aortique donateurs. </li><li> Faire une anastomose de bout-en-côte entre le brassard aortique donateurs et la paroi antérieure de l&#39;aortaotomy destinataires, en utilisant 2 ~ 3 continue 10-0 sutures en nylon à l&#39;extérieur de l&#39;aorte. </li><li> Tournez la greffe rein d&#39;un donneur sur le flanc gauche de la destinataire. répétez la procédure précédente entre le brassard aortique donateurs et la paroi postérieure de l&#39;aortaotomy destinataires </li><li> Effectuer une anastomose de bout-en-latérale entre la veine rénale donateurs et la paroi postérieure de la VCI destinataires, à l&#39;aide de 4 à 5 points de suture en nylon 10-0 continue à l&#39;intérieur de la VCI. puis la paroi antérieure de la veine rénale IVC et les bailleurs de fonds sont fermées avec 4 ~ 5 points de suture continue en dehors de la VCI. </li><li> L&#39;anastomose des deux veines et l&#39;artère doit être terminée dans les 20 minutes. </li><li> Rincer la greffe avec une solution saline froide à plusieurs reprises pendant l&#39;anastomose. </li><li> Diviser le dôme de la vessie bénéficiaire, et arrêter le saignement avec cautérisation. </li><li> Faire une petite entaille sur le dôme. </li><li> Placer deux points de suture séjour de nylon 10-0 à anastomize le patch donateurs petite vessie avec le dôme vésical destinataires. Chaque côté de l&#39;anastomose est suturée avec 8 ~ 10 points de suture continue. </li><li> Fermer l&#39;abdomen en deux couches avec des continues 4-0 stérile, suture synthétique absorbable vicryl. </li><li> Donnez souris receveuses 0.4ml eau chaude salée pendant la chirurgie par injection intraveineuse intermittente. </li></ol> Soins post-opératoires du bénéficiaire <ol><li> Après la fermeture de l&#39;abdomen, une seule injection intramusculaire de pénicilline (500U/10g) est administré (2). </li><li> En outre, les bénéficiaires reçoivent 0,05 mg / kg par voie intramusculaire buprénorphine au jour 0 et après la chirurgie le jour 1 pour la douleur. Après la chirurgie, les receveurs de greffe de recevoir de l&#39;eau contenant Sulfatrim (100mg/kg) jusqu&#39;à ce que l&#39;expérience est TErminated. </li><li> Pour les premières 24h après l&#39;intervention des souris sont conservés dans un incubateur à température contrôlée. </li><li> Souris généralement récupérer de l&#39;anesthésie à 1 heure de l&#39;opération et reçoivent de la nourriture régulière et eau ad libitum. </li><li> Sutures de la peau sont retirés 2 semaines après la chirurgie. </li></ol> Récipiendaire néphrectomie <ol><li> Anesthésier le destinataire 4 ~ 7 jours après la transplantation rénale avec 65 mg / kg de pentobarbital ip; anesthésie est maintenue par l&#39;isoflurane (2-3%). </li><li> Ouvrez l&#39;abdomen par une incision médiane. </li><li> Couverture de l&#39;intestin avec une solution saline gaze imbibée et soigneusement se rétracter sur le côté droit. </li><li> Retirez le rein gauche, après ligature de la veine rénale uretère gauche, et l&#39;artère. </li><li> Fermer l&#39;abdomen en deux couches avec des continues 4-0 suture synthétique absorbable vicryl. </li></ol> Whole Mesures créatinine sanguine <ol><li> Hebdomadaire à la collecte de sang toutes les deux semaines de moins de 0,2 cc est réalisée soit submandibularly sans anesthésie ou rétro-orbital sous anesthésie à l&#39;isoflurane. </li><li> Quantitative l&#39;ensemble des taux de créatinine sanguine sont déterminés en utilisant un analyseur portatif I-Stat clinique (Heska Corp, Fort Collins, CO). </li><li> Unités conventionnelles (mg / dl) sont convertis en unités SI de micromol / L en multipliant les unités conventionnelles de 88,4. </li></ol>

<ol><li>Russell, P. S., Chase, C. M., Colvin, R. B., Plate, J. M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Kidney+transplants+in+mice.+An+analysis+of+the+immune+status+of+mice+bearing+long-term%2C+H-2+incompatible+transplants%5BTitle%5D)+AND+%22JExpMed%22%5BJournal%5D)">Kidney transplants in mice. An analysis of the immune status of mice bearing long-term, H-2 incompatible transplants.</a> JExpMed. 147, 1449-1468 (1978).</li>
<li>Zhang, Z., Schlachta, C., Duff, J., Stiller, C., Grant, D., Zhong, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improved+techniques+for+kidney+transplantation+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Microsurgery%22%5BJournal%5D)">Improved techniques for kidney transplantation in mice.</a> Microsurgery. 16 (2), 103-109 (1995).</li>
</ol>

Expériences sur les animaux ont été effectuées en conformité avec les directives et les règlements stipulés par le IACUC Ohio State University.

Nous avons effectué environ 1200 cas de transplantation rénale chez les souris avec un taux de succès technique de&gt; 90%. Comparé à une transplantation cardiaque, le taux de réussite de la transplantation rénale est généralement faible. Cependant, notre laboratoire a maintenu un taux de réussite élevé (&gt; 90%) de la transplantation rénale. Les points clés de la réussite sont de réduire les lésions de reperfusion au rein d&#39;un donneur à la fois et les bénéficiaires, et de minimiser les saignements et des thrombose...

<table><tbody><tr><td>i-STAT</td><td>Autre</td><td>HESKA</td><td>Cat 5101</td><td></td></tr><tr><td>Cartouche i-STAT</td><td>Autre</td><td>HESKA</td><td>CAT 5110-CREA</td><td></td></tr><tr><td>Sulfatrim</td><td>Autre</td><td>Actavis</td><td>R02109</td><td></td></tr><tr><td>Isoflurane</td><td>Autre</td><td>NOVAPLUS</td><td>CA-0474</td><td></td></tr><tr><td>Suture 10-0</td><td>Chirurgie</td><td>Sharpoint</td><td>AK0100</td><td></td></tr></tbody></table>

murin procédure transplantation rénale

Murine Renal Transplantation Procedure

La transplantation rénale orthotopique chez la souris est une procédure difficile techniquement. Bien que les premières transplantations de reins chez des souris ont été effectuées par Russell et al il ya 30 ans (1) et affiné par Zhang et al ans plus tard (2), peu de gens dans le monde ont maîtrisé cette procédure. Dans notre laboratoire, nous avons réalisé avec succès 1200 transplantations rénales orthotopique avec un taux&gt; 90% de survie. Les points clés de la réussite incluent un contrôle rigoureux des lésions de reperfusion, des saignements et des thromboses, tant durant la procédure et post-transplantation, et l&#39;utilisation de 10-0 au lieu de 11-0 de suture pour anastomoses. Soins post-opératoires et le traitement du destinataire est extrêmement important pour le succès de greffe et d&#39;évaluation. Tous les bénéficiaires du greffon rénal recevoir des antibiotiques sous la forme d&#39;une injection de pénicilline immédiatement post-transplantation et Sulfatrim dans l&#39;eau potable en permanence. La santé animale global est évalué quotidiennement et toute analyse de la créatinine sanguine sont effectuées régulièrement avec un portable i-STAT machine pour évaluer la fonction du greffon.

La transplantation rénale chez les souris est une procédure techniquement difficile qui exige attention soins post-opératoires et le traitement de la réussite.

Murin procédure transplantation rénale

La transplantation rénale orthotopique chez la souris est une procédure techniquement complexe. Bien que les premières transplantations rénales chez la souris aient été réalisées par Russell...

La procédure de transplantation rénale chez la souris commence par la récolte d'un organe donneur au cours de laquelle le rein gauche est prélevé sur la souris donneur et conservé sur glace. Le rein droit est ensuite retiré de la souris receveuse afin de faire place au rein donneur. Le rein donneur est alors sorti de la glace et transplanté dans la souris receveuse.La souris est laissée en phase de récupération pendant quatre jours avant que le rein natif restant soit retiré. Après sept jours, les niveaux de créatinine sont surveillés à l’aide d’un analyseur clinique portable I STAT afin d’évaluer la fonction de la greffe. Bonjour, je suis Sarah Heimer du laboratoire du Dr Greg Hadley et du Département de chirurgie des transplantations de l’Université d’État de l’Ohio.Aujourd'hui, nous allons vous présenter une procédure de transplantation rénale chez la souris. La chirurgie de transplantation rénale que vous allez voir aujourd'hui sera réalisée par notre neurochirurgien expert résident, Jing Wing. Veuillez utiliser cette procédure dans notre laboratoire afin d'étudier les événements immunologiques liés au rejet de greffe, ainsi que les stratégies permettant d'empêcher ce rejet.Com

Research

Recherche

JoVE Journal

Biology

Biologie

Différenciation dirigée des CSEh dans des cellules spécifiques a suscité beaucoup d'intérêt en médecine régénérative. Nous fournissons un résumé concis, étape par étape pour déterminer le protocole...

Cartographie sort des cellules souches embryonnaires humaines par la formation de tératome

La transplantation d'îlots isolés a été proposé pour être un traitement potentiel pour les diabétiques de type 1. Nous décrivons ici une méthode pour isoler les îlots de souris pancréas et de les transplanter à l'espace sous-capsulaire du rein.

Une méthode pour isoler l&#39;îlot murin et transplantation rénale sous-capsulaires

Ici, nous présentons un protocole pour étudier l’immunologie du rejet. Le modèle chirurgical présenté fait état d’une durée opératoire courte et d’une technique concise. Selon la combinaison de souche donneur-receveur, le rein transplanté peut développer un rejet cellulaire aigu ou des lésions chroniques de l’allogreffe, définies par une fibrose interstitielle et une atrophie tubulaire.

Souris Transplantation rénale: Les modèles de rejet des allogreffes

Ce rapport fournit une description détaillée de la transplantation de thymi murin de souris donneuses de différents âges sous la capsule rénale de receveurs de souris immunodéficientes. L’objectif de cette approche est de modéliser le développement des lymphocytes T et les événements de sélection thymique in vivo.

L&#39;isolement et la transplantation de différents âgées murins thymiques greffes.

L’objectif de ce manuscrit est de décrire les étapes nécessaires à la réalisation d’une greffe de rein chez une souris, en accordant une attention particulière aux détails de l’anastomose artérielle.

Rein murin Transplant Technique

Nous fournissons une méthode simple et efficace pour transplanter 2'-deoxyguanosine traité E18.5 thymus dans la capsule rénale d'une souris nue. Cette méthode devrait aider dans l'étude de la fonction des cellules épithéliales thymiques et de la maturation des lymphocytes T.

Transplantation sous-capsulaire rénale du thym embryonnaire Murine traité à la déoxyguanosine de 2'-Deoxyguanosine chez les souris nues

Ce protocole présente une nouvelle technique chirurgicale de transplantation rénale de souris axée sur une stratégie d’anastomose artérielle modifiée. Une technique de suture vasculaire comprenant une méthode d’anastomose uretère-vessie simple et plus sûre est également présentée. Ces modifications raccourcissent le temps d’opération et améliorent le taux de réussite de la procédure de transplantation rénale de souris.

Une technique chirurgicale modifiée pour la transplantation rénale chez la souris

Le modèle de transplantation rénale orthotopique chez le rat contribue à étudier le mécanisme du rejet de l’allogreffe rénale. Le modèle actuel augmente la survie des receveurs sans interférence avec l’apport sanguin et le reflux veineux du bas du corps en utilisant une anastomose de bout en bout de l’implantation rénale et une méthode « tunnel » de bout en bout de l’anastomose uretère-vessie.

Un modèle de transplantation rénale orthotopique de rat pour le rejet de l’allogreffe rénale

Ce protocole décrit une procédure de survie pour une lymphadenectomie rénale bilatérale murine sûre et bien tolérée.

Lymphadenectomie rénale bilatérale murine

Le modèle de souris transplantation cardiaque hétérotopique a été prouvée par de nombreux chercheurs d'être une méthode importante pour étudier les mécanismes de rejet et de la réponse immunitaire. Cependant, les techniques impliquées sont toujours difficiles. En modifiant les techniques standard, nous avons eu du succès avec plus de 1000 greffes.

Transplantation cardiaque hétérotopique chez la souris

Apprenez la transplantation rénale chez la souris, une technique chirurgicale complexe pour étudier la biologie des greffes. Cette méthode permet d'évaluer la fonction du greffon par surveillance de la créatinine.

Murin procédure transplantation rénale

Explorer plus de vidéos