Name: Quantifier Life Span levure chronologique par excroissance de cellules âgées (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-05-06T00:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 24 s
Description: Découvrez une méthode à haut débit pour quantifier la durée de vie chronologique de la levure Saccharomyces cerevisiae. Cette technique mesure la viabilité cellulaire par densité optique pour étudier le vieillissement cellulaire.

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Ce travail a été soutenu par des subventions du NIH 1R21AG031965-01A1. MK est une Ellison Medical Foundation New Scholar liés au vieillissement.

Partie 1: Préparation des cultures de vieillissement <ol><li> Streak souches d&#39;intérêt des stocks congelés sur des plaques de gélose YEPD (extrait de levure 1%, 2% de bacto-peptone, 2% d&#39;agar, 2% de glucose). </li><li> Incuber les cellules à 30 ˚ C pendant 48 heures ou jusqu&#39;à ce que des colonies isolées apparaissent. </li><li> Prélever des colonies unique et inoculer dans 5 ml de milieu liquide YEPD (extrait de levure 1%, 2% de bacto-peptone, 2% de glucose) dans des tubes à essai. </li><li> Cultivez des cultures nuit à 30 ˚ C, tout en maintenant une agitation constante en utilisant soit un shaker ou à tambour à rouleaux. </li><li> Inoculer 5 ml de synthèse complet (SC) moyen (Tableau 1) avec 50 uL de la culture de la nuit. Généralement trois cultures SC sont préparés pour chaque souche de fournir réplication triple biologiques de l&#39;analyse de la durée de vie pour chaque souche à l&#39;étude. </li><li> Maintenir les cultures à 30 ˚ C avec agitation constante sur un tambour à rouleaux pour toute l&#39;expérience (en général 2 semaines ou plus). </li></ol> Partie 2: Prendre une viabilité à l&#39;âge points Après deux jours de culture dans les médias SC, les cellules doivent être en phase stationnaire et le premier point de l&#39;âge est prêt à prendre. Après l&#39;âge de points doivent être pris tous les 2-3 jours pour un minimum de deux semaines. Pour chaque point de l&#39;âge: <ol><li> Préparer le Bioscreen 100 des plaques en nid d&#39;abeille pour l&#39;inoculation en remplissant chaque puits avec 145 ul de YEPD. Soyez sûr de laisser au moins un bien rempli avec seulement YEPD et non des cellules pour une analyse ultérieure des données. </li><li> Retirez les cultures du vieillissement de l&#39;incubateur. </li><li> Brièvement au vortex la première culture à être inoculés dans la plaque en nid d&#39;abeille, tout en faisant attention à ne pas répandre de la culture. </li><li> Retirer 5 pi de la culture mixte et il pipette dans le premier puits de la plaque en nid d&#39;abeille. Flamme de l&#39;embouchure de chaque tube à essai, avant et après le retrait du aliquote de 5 ul. </li><li> Répétez cette procédure pour chaque culture de vieillissement en étant sûr de noter la position bien correspondant à chaque culture. Identique positions bien doit être utilisé pour chaque période d&#39;âge tout au long point de toute l&#39;expérience. </li><li> Remplacer les cultures dans l&#39;incubateur à 30 ˚ C lorsque vous avez terminé avec les inoculations. </li></ol> Partie 3: Chargement du Bioscreen C MBR machines <ol><li> Exposer le compartiment incubateur en soulevant le couvercle et retirez le couvercle sur le plateau de l&#39;échantillon. </li><li> Insérez la plaque nouvellement ensemencé Honeycomb dans le bac de l&#39;échantillon (utiliser l&#39;emplacement de gauche si vous êtes la seule lecture une plaque). </li><li> Remettre le couvercle sur le plateau de l&#39;échantillon et abaisser le couvercle du compartiment incubateur. </li><li> Assurez-vous que le fluide caloporteur est au-dessus du niveau de remplissage minimum. Si elle est basse, ajouter plus de 1000 en utilisant une pipette uL avec le fluide caloporteur fourni. </li><li> Utilisation du logiciel Bioscreen &quot;EZExperiment&quot;, définir les paramètres suivants pour obtenir des courbes de croissance approprié pour Saccharomyces cerevisiae: <ul><li> Nombre d&#39;échantillons: Entrez le nombre de puits avec des médias ou 200 </li><li> Filtre: 420-580nm, Wideband </li><li> Température: 30 ˚ C </li><li> Longueur Expérience: 1 Jour, 0 heures, 0 secondes </li><li> Intervalle de mesure: 30 minutes </li><li> Secouer: Sur, agitation continue, haute </li></ul></li><li> Cliquez sur &quot;Démarrer&quot; pour commencer les lectures. </li></ol> Partie 4: Analyse des données Typiquement, six ans-points sont pris au cours de deux semaines. Les points à l&#39;âge sont prises au jour 2, 4, 6, 9, 11 et 13. Selon la conception expérimentale et les souches testées, il peut être souhaitable de prendre des points à l&#39;âge plus ou moins fréquemment ou pendant plus de deux semaines. Il est important de charger la plaque en nid d&#39;abeilles dans le même ordre pour chaque âge un tel point que chaque culture le vieillissement correspond à la même position et à tout âge-là, car cela fera l&#39;analyse de données beaucoup plus facile. <ol><li> Obtenir les fichiers de sortie de la machine Bioscreen C MBR. Le logiciel &quot;EZExperiment&quot; va afficher les données dans un fichier Bioscreen délimité par des tabulations qui est compatible avec Microsoft Excel ainsi que d&#39;autres logiciels. La première colonne indique à quel moment la mesure OD a été prise pendant l&#39;expérience, avec des colonnes suivantes représentent chaque puits dans les plaques en nid d&#39;abeille Bioscreen (figure 1). </li><li> Supprimer la première lecture OD de chaque colonne. Cette lecture est un «bruit». </li><li> Normaliser les données en soustrayant la valeur de DO du puits avec YEPD seul de toutes les valeurs OD dans chaque colonne. Cela supprime l&#39;absorbance de fond par les médias. </li><li> Tracer les courbes excroissance. Les courbes se déplacera en fonction de l&#39;âge (figure 2). Par exemple, en traçant les courbes excroissance de la colonne 1 (puits 1 de la plaque en nid d&#39;abeille) sur les six points du temps, il ya un déplacement vers la droite distinctes des courbes au cours du temps. </li><li> Calculer le temps de doublement (δ) pour chaque puits basée sur la cinétique de croissance de l&#39;âge de 2 jours-point. L&#39;équation utilisée pour calculer le temps de doublement is: <img src="/files/ftp_upload/1156/equat.png" alt="Équation" /> où OD 1 et OD 2 mesures successives représentent DO et T 1 et T 2 étant le temps entre les mesures. Calculer des temps de doublement seulement entre les valeurs de DO de 0,2 à 0,5. La moyenne de ces valeurs est le temps de doublement de ce bien. Calculer des temps de doublement seulement entre les valeurs de DO de 0,2 à 0,5. La moyenne de ces valeurs est le temps de doublement de ce bien. La plupart des souches de levures de type sauvage doit donner une valeur temps de doublement compris entre 85 à 90 minutes. </li><li> Pour chaque âge-point, calculer le décalage de temps (At) dans les courbes excroissance par rapport à l&#39;âge de départ-point (jour 2). Un moyen facile de le faire est de déterminer la différence dans la longueur du temps qu&#39;il a fallu pour chaque puits pour atteindre une DO de 0,3 entre les initiales d&#39;âge et chaque point de l&#39;âge subséquentes points. Le temps qu&#39;une particulière ainsi atteint une DO de 0,3 peut être calculée à partir de l&#39;équation de régression linéaire correspondant à ln (DO) en fonction du temps entre les deux points de bracketing temps DO = 0,3. </li><li> Calculer la fraction survivante à chaque âge-point afin de générer une courbe de survie (figure 3). Définir le point de départ à l&#39;âge (jour 2) à la viabilité de 100%. Pour chaque âge successifs point de calculer la survie pour cent en utilisant l&#39;équation: <img src="/files/ftp_upload/1156/equat2.png" alt="Deuxième équation" width="245" height="115" /> où s n est le pourcentage de survie, At n est le décalage dans le temps, et δ n est le temps de doublement. </li><li> Générer les courbes de survie (figure 3B) comme souhaité pour chaque bien (ou puits répliquer) en traçant la fraction (ou pour cent) de cellules viables en fonction de l&#39;âge. </li><li> Calculer la survie (SI) solidaire de chaque puits. SI est définie comme l&#39;aire sous la courbe de survie et peut être estimée par la formule: <img src="/files/ftp_upload/1156/equat3.png" alt="Équation 3" width="400" height="79" /> l&#39;âge où n est le point de l&#39;âge (par exemple 2, 4, 6, 9, 11 et 13) et s n est la valeur de survie à cet âge-point. </li><li> Déterminer des paramètres statistiques des puits de reproduire à partir des données du SI et de survie. Commune paramètres statistiques d&#39;intérêt comprennent moyenne, médiane, et la variance pour chaque ensemble de biologiques répétitions. Un t-test ou une analyse similaire peut être utilisée pour la comparaison par paires des SI à des fins expérimentales et différents groupes de contrôle. Il peut être également souhaitable de générer des courbes de survie, comme décrit dans 4.8 de moyenne biologiques répétitions. </li></ol> Partie 5: Les résultats représentatifs À la fin de l&#39;expérience, vous aurez tracé la courbe de survie et effectué une analyse de données suffisantes pour déterminer le potentiel de vieillissement chronologique des différentes souches ou des conditions. Si effectué correctement, les courbes de croissance obtenus à partir de la machine Bioscreen C MBR devrait ressembler à ceux de la figure 2 et les courbes de survie résultant devrait ressembler à ceux de la figure 3. Généralement, les cellules de type sauvage cultivées dans les conditions décrites ici aura une durée médiane de la vie chronologique de l&#39;ordre de 7 jours. Variation importante du taux de survie est observée dans différentes souches et sous certaines conditions, telles que la croissance dans les médias de glucose 0,05%, la médiane de survie peut dépasser 30 jours. <img src="/files/ftp_upload/1156/1156fig1.png" alt="" /> Figure 1. Sortie des données du programme &quot;EZExperiment&quot; Bioscreen. Colonne A affiche l&#39;heure à laquelle une lecture de l&#39;absorbance a été prise. Colonnes successives représentent les puits de la plaque en nid d&#39;abeille inoculées avec des cellules prélevées à partir des cultures de vieillissement. <img src="/files/ftp_upload/1156/1156fig2.png" alt="" /> Figure 2. Courbes Excroissance d&#39;une réplique biologique unique au cours d&#39;une expérience. Il ya une nette évolution dans les courbes au fil du temps que les cellules dans la culture du vieillissement perdent leur viabilité. La longueur de temps entre le point de temps initial (jour 2) et un point de temps successifs détermine la viabilité à cet âge en particulier. <img src="/files/ftp_upload/1156/1156fig3a.png" alt="" /><img src="/files/ftp_upload/1156/1156fig3b.png" alt="" /> Figure 3. A) Une courbe de survie en utilisant les données générées excroissance de la figure 1. Le point 2 est temps de jour défini comme le point de la viabilité de 100%. B) Les courbes de survie final de deux souches testées dans l&#39;expérience même. Ces courbes de survie représentent les viabilités moyenne de trois répétitions pour chaque biologiques souche. Les barres d&#39;erreur représentent l&#39;écart-type au sein biologiques répétitions. La zone hachurée sous la courbe de survie représente la survie (SI) pour la souche intégrante 1. <table border="1"><tbody><tr><td colspan="2"> Tableau 1. Synthétique milieu défini Utilisé pour des études de vieillissement chronologique (souche backgrouND BY4743) </td></tr><tr><td> Composante </td><td> Concentration (g / L) </td></tr><tr><td> D-glucose </td><td> 20 </td></tr><tr><td> Base azotée de levure (-AA/AS) </td><td> 1.7 </td></tr><tr><td> (NH 4) 2 SO 4 </td><td> 5,0 </td></tr><tr><td> Adénine </td><td> 0,04 </td></tr><tr><td> L-arginine </td><td> 0,02 </td></tr><tr><td> Acide L-aspartique </td><td> 0.1 </td></tr><tr><td> L-acide glutamique </td><td> 0.1 </td></tr><tr><td> L-histidine </td><td> 0.1 </td></tr><tr><td> L-Leucine </td><td> 0.3 </td></tr><tr><td> L-Lysine </td><td> 0,03 </td></tr><tr><td> L-Méthionine </td><td> 0,02 </td></tr><tr><td> L-phénylalanine </td><td> 0,05 </td></tr><tr><td> L-sérine </td><td> 0,375 </td></tr><tr><td> L-Thréonine </td><td> 0.2 </td></tr><tr><td> L-tryptophane </td><td> 0,04 </td></tr><tr><td> La L-Tyrosine </td><td> 0,03 </td></tr><tr><td> L-Valine </td><td> 0,15 </td></tr><tr><td> Uracile </td><td> 0.1 </td></tr></tbody></table> Note: Cette recette représente auxotrophies dans diploïde BY4743 souche. Auxotrophies acides aminés doit être compensée par l&#39;ajout d&#39;une concentration 5X final au milieu synthétique complet.

<ol><li>Steinkraus, K. A., Kaeberlein, M., Kennedy, B. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Replicative+aging+in+yeast%3A+the+means+to+the+end%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Cell+Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Replicative aging in yeast: the means to the end.</a> Annu Rev Cell Dev Biol. 24, 29(2008).</li>
<li>Kaeberlein, M. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aKaeberlein%2C+M+%22Handbook+of+models+for+human+aging%22">Handbook of models for human aging</a>. Conn, P. M. , Elsevier Press. Boston. 109(2006).</li>
<li>Fabrizio, P., Longo, V. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+chronological+life+span+of+Saccharomyces+cerevisiae%5BTitle%5D)+AND+%22Aging+Cell%22%5BJournal%5D)">The chronological life span of Saccharomyces cerevisiae.</a> Aging Cell. 2 (2), 73(2003).</li>
<li>Murakami, C. J., Burtner, C. R., Kennedy, B. K., Kaeberlein, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+method+for+high-throughput+quantitative+analysis+of+yeast+chronological+life+span%5BTitle%5D)+AND+%22J+Gerontol+A+Biol+Sci+Med+Sci%22%5BJournal%5D)">A method for high-throughput quantitative analysis of yeast chronological life span.</a> J Gerontol A Biol Sci Med Sci. 63 (2), 113(2008).</li>
<li>Piper, P. W., Harris, N. L., MacLean, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preadaptation+to+efficient+respiratory+maintenance+is+essential+both+for+maximal+longevity+and+the+retention+of+replicative+potential+in+chronologically+ageing+yeast%5BTitle%5D)+AND+%22Mech+Ageing+Dev%22%5BJournal%5D)">Preadaptation to efficient respiratory maintenance is essential both for maximal longevity and the retention of replicative potential in chronologically ageing yeast.</a> Mech Ageing Dev. 127 (9), 733(2006).</li>
<li>Fabrizio, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Superoxide+is+a+mediator+of+an+altruistic+aging+program+in+Saccharomyces+cerevisiae%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Superoxide is a mediator of an altruistic aging program in Saccharomyces cerevisiae.</a> J Cell Biol. 166 (7), 1055(2004).</li>
</ol>

Le test à haut débit chronologique la durée de vie décrit ici est une méthode efficace pour quantifier le potentiel de vieillissement d&#39;un grand nombre de souches avec une grande précision et de précision. L&#39;avance principal de cette méthode par rapport aux méthodes classiques pour déterminer la survie en comptant unités formant colonie (voir par exemple 3) est l&#39;utilisation d&#39;un dispositif de lecture secoueur / incubateur / plaque telles que la machine Bioscreen C MBR afin d&#39;obtenir des c...

<table><tbody><tr><td>Bacto Peptone</td><td>Réactif</td><td>BD Biosciences</td><td>211677</td><td></td></tr><tr><td>Extrait de levure Bacto</td><td>Réactif</td><td>BD Biosciences</td><td>288620</td><td></td></tr><tr><td>Agar Difco</td><td>Réactif</td><td>BD Biosciences</td><td>214530</td><td></td></tr><tr><td>Base d'azote de levure sans A.A. ni A.S.</td><td>Réactif</td><td>MidSci</td><td>J630-500G</td><td></td></tr><tr><td>Acides aminés</td><td>Réactif</td><td>Sigma-Aldrich</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sulfate d'ammonium</td><td>Réactif</td><td>Spectrum</td><td>AM185</td><td></td></tr><tr><td>Dextrose</td><td>Réactif</td><td>Fisher Scientific</td><td>D16-10</td><td></td></tr><tr><td>Appareil Bioscreen C MBR</td><td>Outil</td><td>Growth Curves USA</td><td>5101370</td><td></td></tr><tr><td>Plaque multicuvette Honeycomb de 100 puits Bioscreen</td><td>Outil</td><td>Growth Curves USA</td><td>9502550</td><td></td></tr></tbody></table>

quantifier life span levure chronologique par excroissance de cellules âgées

Quantifying Yeast Chronological Life Span by Outgrowth of Aged Cells

La levure bourgeonnante<em&gt; Saccharomyces cerevisiae</em&gt; S&#39;est avérée être un organisme modèle important dans le domaine de la recherche sur le vieillissement<sup&gt; 1</sup&gt;. La durée de vie réplicative et chronologique, sont deux paradigmes établis utilisés pour étudier le vieillissement chez la levure. Le vieillissement réplicative est définie comme le nombre de cellules filles une cellule de levure unique mère produit avant la sénescence, le vieillissement chronologique est définie par la longueur des cellules de temps peut survivre dans un non-séparation, la quiescence-état<sup&gt; 2</sup&gt;. Nous avons développé une méthode à haut débit pour la mesure quantitative de la durée de vie chronologique. Cette méthode implique le vieillissement des cellules dans un milieu défini sous agitation et à température constante. À chaque âge-point, une sous-population de cellules est retiré de la culture du vieillissement et inoculé dans un milieu de croissance riche. Une courbe de croissance à haute résolution est alors obtenue pour cette sous-population de cellules âgées utilisant un Bioscreen C MBR machine. Un algorithme est ensuite appliqué pour déterminer la proportion relative de cellules viables dans chaque sous-population basée sur la cinétique de croissance à chaque âge-point. Cette méthode exige beaucoup moins de temps et de ressources par rapport aux autres tests chronologiques durée de vie tout en préservant la reproductibilité et la précision. La nature à haut débit de ce test devrait permettre de grands écrans génétiques et chimiques pour identifier les modificateurs de longévité roman pour des tests supplémentaires dans les organismes plus complexes.

Vieillissement chronologique dans la levure se réfère à la perte de la viabilité cellulaire associée avec le temps dans la phase stationnaire. Nous décrivons ici une méthode à haut débit pour déterminer quantitativement la durée de vie de la levure chronologique.

Quantifier Life Span levure chronologique par excroissance de cellules âgées

La levure bourgeonnante Saccharomyces cerevisiae s'est avérée être un organisme modèle important dans le domaine de la recherche sur le vieillissement 1. Le vieillissement réplicatif et ...

Les cultures vieillissantes sont maintenues dans des tubes à essai à 30 degrés Celsius avec agitation constante. Bio, un tambour roulant, un aliquot de cellules provenant de chaque culture vieillissante est inoculé dans un puits d'une plaque honeycomb Bio Screen contenant du milieu YEPD. La machine Bio Screen CMBR incube et agite la plaque honeycomb pendant 24 heures tout en mesurant la densité optique de chaque puits.Toutes les 30 minutes, des courbes de croissance peuvent être générées à partir des données produites par le bioécran, ce qui permet de calculer la viabilité de chaque culture vieillissante. Après une incubation de 24 heures, les densités cellulaires dans les puits de la plaque en nid d'abeille peuvent varier selon la viabilité de la culture vieillissante initiale. Bonjour, je suis Chris Murakami du laboratoire du Dr Matt Capline et du Département d’anatomie pathologique de l’Université de Washington.Aujourd'hui, nous allons vous présenter la procédure permettant de quantifier la durée de vie chronologique des levures à l'aide de la croissance de cellules âgées. Nous utilisons cette procédure dans notre laboratoire pour étudier comment les facteurs génétiques et environnementaux influencent la longévité des levures. Commençons donc.Pour préparer les cultures vieillissantes, réalisez d'abord une stérilisation des souches de levure à partir de stocks congelés sur des boîtes de gélose YEPD, puis incubez les cellules à 30 degrés Celsius pendant 48 heures ou jusqu'à l'apparition de colonies isolées. Une fois les colonies isolées apparues, sélectionnez-les et inoculez-les dans cinq millilitres de milieu liquide YEPD.Dans des tubes à essai, faire croître les cultures pendant la nuit à 30 degrés Celsius dans un rouleau rotatif afin de maintenir une agitation constante. Après l'incubation nocturne, utiliser 50 microlitres de chaque culture pour ensemencer cinq millilitres de milieu synthétique complet. Généralement, trois cultures SC sont préparées pour chaque souche afin d'obtenir une réplication biologique en triple exemplaire de l'analyse de la durée de vie pour chaque souche étudiée. Maintenir les cultures à 30 degrés Celsius avec agitation constante sur un rouleau rotatif pendant toute la durée de l'expérience, qui dure généralement deux semaines ou plus après deux jours de culture.Dans le milieu SC, les cellules doivent être en phase stationnaire et le premier point d'âge est prêt à être prélevé. Les points d'âge suivants doivent être prélevés tous les deux à trois jours pendant au moins deux semaines. Pour commencer cette procédure, préparez l'appareil BioScreen.Plaques à 100 puits en nid d'abeille pour l'inoculation, en remplissant chaque puits avec 145 microlitres de YEPD. Veillez à laisser au moins un puits contenant uniquement du YEPD et aucun cellule pour l'analyse ultérieure des données. Retirez les cultures vieillissantes de l'incubateur.Brève agitation du premier milieu de culture à inoculer dans la plaque multicellulaire. Veiller à ne pas renverser de milieu. Flamber l'embouchure du tube à essai et prélever cinq microlitres du milieu à l'aide d'une pipette, puis les déposer dans le premier puits de la plaque multicellulaire.N'oubliez pas de flamber l'ouverture du tube à essai. Après avoir prélevé l'aliquot de cinq microlitres, répétez cette procédure d'inoculation pour chaque culture vieillissante. Veillez à noter précisément la position du puits correspondant à chaque culture.Les positions des puits doivent être utilisées pour chaque point d'âge ultérieur tout au long de l'expérience. Remettez les cultures dans l'incubateur à 30 degrés Celsius. Une fois les inoculations terminées, après que les cultures ont été inoculées dans la plaque multicellulaire, la plaque est chargée dans la machine Bio Screen CMBR.Pour ce faire, exposez le compartiment de l'incubateur en soulevant le couvercle. Ensuite, retirez le couvercle du plateau d'échantillons. Insérez la nouvelle plaque alvéolaire inoculée dans le plateau d'échantillons.Utilisez l'emplacement de gauche. Si vous lisez une seule plaque, remettez le couvercle sur le plateau d'échantillons et abaissez le couvercle du compartiment d'incubation. Il est important de s'assurer que le fluide de transfert thermique est au-dessus du niveau de remplissage minimal.S'il ne l'est pas, ajoutez davantage de fluide de transfert thermique à l'aide d'une pipette de 1000 microlitres. À l'aide du logiciel Easy experiment du Bio Screen, réglez les paramètres suivants pour obtenir des courbes de croissance adaptées à croce visi. Pour le nombre d'échantillons, saisissez le nombre de puits contenant le milieu ou 200, et réglez le filtre sur une bande large de quatre 20 à cinq 80 nanomètres.Régler la température à 30 degrés Celsius. La durée de l'expérience doit être d'un jour, zéro heure, zéro seconde. L'intervalle de mesure doit être de 30 minutes.Et enfin, la secousse doit être réglée sur agitation continue et le bouton de démarrage rapide activé pour commencer les lectures. Récupérez les fichiers de sortie de la machine Bio Screen CMBR. Le logiciel Easy Experiment produira les données du Bio Screen sous forme de fichier délimité par des tabulations, compatible avec Microsoft Excel et d'autres logiciels.La première colonne, la colonne A, indique l'heure à laquelle la mesure de DO a été effectuée au cours de l'expérience. Les colonnes suivantes représentent chaque puits de la plaque honeycomb du bio screen, inoculés avec des cellules provenant des cultures vieillissantes. Supprimez la première lecture de DO dans chaque colonne, car cette lecture correspond à un bruit.Normalisez les données en soustrayant la valeur de densité optique du puits contenant uniquement le YEPD des valeurs de densité optique de chaque colonne. Cela élimine l'absorbance de fond due au milieu. Les courbes de croissance.Les courbes se déplaceront en fonction de l'âge ; par exemple, en traçant les courbes de croissance du puits un de la colonne un de la plaque alvéolaire pour les six points temporels, on observe un décalage net vers la droite des courbes au fil du temps. La durée entre le point temporel initial, le jour deux, et un point temporel ultérieur détermine la viabilité à cet âge particulier. Calculez le temps de doublement pour chaque puits en fonction de la cinétique de croissance au point temporel du jour deux.L'équation utilisée pour calculer le temps de doublement est la suivante, où OD un et OD deux représentent des mesures successives de densité optique et T un et T deux sont le temps écoulé entre les mesures. Calculez les temps de doublement uniquement entre des valeurs d'OD comprises entre 0,2 et 0,5. La moyenne de ces valeurs correspond au temps de doublement pour ce cas.Eh bien, la plupart des souches de levure de type sauvage devraient présenter un temps de doublement compris entre 85 et 90 minutes pour chaque point d'âge. Calculez le décalage temporel delta T dans les courbes de croissance par rapport au point d'âge initial, qui correspond au jour deux. Une méthode simple consiste à déterminer la différence de durée nécessaire à chaque puits pour atteindre une DO de 0,3 entre le point d'âge initial et chaque point d'âge ultérieur.Le temps nécessaire pour qu’un puits particulier atteigne une DO de 0,3 peut être calculé à partir de l’équation de régression linéaire correspondant au logarithme naturel de la densité optique. Calculez la fraction survivante à chaque point d’âge afin de générer une courbe de survie, le point d’âge initial du deuxième jour représentant une viabilité de 100 % pour chaque point d’âge ultérieur. Calculez le pourcentage de survie à l’aide de l’équation suivante.Où SN est le pourcentage de survie. Delta TN est le décalage temporel, et Sigma N est le temps de doublement. Générez des courbes de survie selon les besoins pour chacun.En traçant la fraction de cellules viables en fonction de l'âge, calculez l'intégrale de survie pour chaque puits ; l'IS est définie comme l'aire sous la courbe de survie et peut être estimée à l'aide de cette formule, où l'âge N correspond au point d'âge et SN à la valeur de survie à ce point d'âge. Déterminez les paramètres statistiques des puits répliqués à partir des données d'IS et de survie. Les paramètres statistiques couramment étudiés incluent la moyenne, la médiane et la variance pour chaque ensemble de répliques biologiques. Un test T ou une analyse similaire peut être utilisé pour comparer par paires les IS entre différents groupes expérimentaux et témoins.Il peut également être souhaitable de générer des courbes de survie à partir de la moyenne des réplicats biologiques. À la fin de l'expérience, vous aurez tracé la courbe de survie et effectué une analyse de données suffisante pour déterminer le potentiel de vieillissement chronologique de plusieurs souches ou conditions différentes. Si l'expérience est correctement réalisée, les courbes de croissance obtenues à partir du dispositif Bio Screen CMBR devraient être similaires à cette courbe. En général, les cellules de type sauvage cultivées dans les conditions décrites ici présenteront une espérance de vie chronologique médiane de l'ordre de sept jours.On observe des variations importantes de la survie entre différentes souches, et dans certaines conditions, comme la croissance en milieu contenant 0,05 % de glucose, la survie médiane peut dépasser 30 jours. Nous venons de vous présenter une méthode à haut débit permettant de déterminer quantitativement la durée de vie chronologique de la levure. Croce visier.Il est important de se rappeler que lors de la réalisation de cette procédure, l'entretien courant de l'appareil Bio Screen CMBR est essentiel pour obtenir des données reproductibles et précises. Voilà tout. Bonne chance dans vos expériences.

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Nous présentons une méthode pour quantifier les phénotypes de croissance de cellules de levure individuelles à mesure qu'elles se développent dans des colonies sur des milieux solides en utilisant une microscopie temporelle, une évaluation doublée d'une cellule de Living Arrays of Yeast (ODELAY). L'hétérogénéité des populations de cellules génétiquement identiques qui se développent dans des colonies peut être directement observée et quantifiée.

ODELAY: une méthode à grande échelle pour la quantification multiparamétrique de la croissance de la levure

Nous présentons ici un protocole afin d’évaluer le métabolisme respiratoire et fermentatif en ajustant la croissance exponentielle des Saccharomyces cerevisiae à l’équation de croissance exponentielle. Calcul des paramètres cinétiques permet le dépistage des influences de substances/composés sur la fermentation ou la respiration mitochondriale.

Saccharomyces cerevisiae Cinétique de croissance exponentielle en Culture pour analyser le métabolisme respiratoire et fermentatif

Ici, nous présentons une implémentation de MATLAB de la détection automatisée et de la description quantitative des gouttelettes de lipide dans les images de microscopie de fluorescence des cellules de fission et de levure en herbe.

Analyse du contenu des gouttelettes lipidiques dans les levures de fission et les levures en herbe à l'aide du traitement automatisé de l'image

Voici un protocole pour identifier les interactions génétiques grâce à un écran suppresseur de nombre de copie accru dans Saccharomyces cerevisiae. Cette méthode permet aux chercheurs d’identifier, cloner et tester les suppresseurs chez les mutants de levure de courte durée. Nous testons l’effet de l’augmentation du nombre de copie de SIR2 sur la durée de vie dans un mutant null autophagie.

Un écran suppresseur pour la caractérisation des liens génétiques régulant la durée de vie chronologique dans Saccharomyces cerevisiae

Dans cet article nous présentons un protocole général pour la mesure de la durée de vie des nématodes maintenu sur un support solide avec UV-tué alimentaire bactérienne.

Mesure Caenorhabditis elegans</emDurée de vie> sur des milieux solides

Découvrez une méthode à haut débit pour quantifier la durée de vie chronologique de la levure Saccharomyces cerevisiae. Cette technique mesure la viabilité cellulaire par densité optique pour étudier le vieillissement cellulaire.

Quantifier Life Span levure chronologique par excroissance de cellules âgées

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