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Biologie
0 vues • 2:59 min • April 30th, 2023
- Sous un microscope de dissection et dans un milieu supplémenté en sérum, retirez l’appareil reproducteur de chaque mouche à l’aide d’une pince. Tout d’abord, retirez les parties du tube digestif qui ont pu accompagner l’appareil reproducteur. Pour isoler les glandes accessoires et le canal éjaculaire, retirez les testicules, le bulbe éjaculateur et le terminalia. Lavez le mouchoir pendant une à deux minutes dans du PBS pour retirer le sérum. Ensuite, transférez-le dans une solution de dissociation.
Pour exposer les cellules à l’intérieur des glandes à la solution de dissociation, tenez le centre de chaque glande avec une pince et coupez la glande avec une paire de pinces tranchantes. Retirez la partie proximale de la glande et le canal éjaculateur pour laisser derrière vous l’extrémité distale des glandes contenant la rare population de cellules secondaires responsables de la sécrétion de protéines impliquées dans l’accouplement. Enfin, transférez les pointes de presse-étoupes accessoires dans un microtube de centrifugation en préparation de la digestion. Dans le protocole suivant, nous disséquerons les glandes accessoires afin d’isoler les cellules secondaires pour l’analyse du transcriptome.
- Avant de commencer la procédure, coupez et enflammez des pointes larges de 200 microlitres pour manipuler les glandes et passez l’ouverture de plusieurs pointes de 1000 microlitres près d’une flamme pendant moins d’une seconde pour rétrécir les ouvertures. Ensuite, triez les pointes modifiées de la plus étroite à la plus large en fonction de leur vitesse d’aspiration. Pour le curage de la glande accessoire, placez 20 à 25 drosophiles mâles dans une boîte en verre sur de la glace et utilisez une pince et un microscope de dissection pour retirer l’appareil reproducteur d’une mouche mâle.
Nettoyez la paire de glandes accessoires de tous les autres tissus, y compris les testicules et le bulbe éjaculateur, et transférez les glandes accessoires dans une plaque de verre contenant un milieu supplémenté en sérum à température ambiante. Lorsque 20 paires de glandes accessoires ont été collectées, lavez les glandes dans un plat de PBS pendant une à deux minutes à température ambiante. À la fin du lavage, transférez les glandes dans une solution de dissociation fraîchement préparée et utilisez une pince tranchante sous un microscope à dissection pour pincer fermement le milieu d’un lobe glandulaire.
À l’aide d’une deuxième paire de pinces, coupez le tissu avec la pointe pointue pour séparer la région proximale de la glande accessoire et le canal éjaculateur de la partie de la glande contenant les cellules secondaires. Ensuite, utilisez une pointe de pipette arrondie de 200 microlitres à flamme pré-humidifiée pour transférer les glandes dans un tube de 1,5 millilitre.
Cet article décrit un protocole permettant de disséquer les glandes accessoires des mâles de Drosophila afin d'isoler les cellules secondaires pour une analyse du transcriptome. La méthode consiste à retirer soigneusement les tissus reproducteurs et digestifs afin d'obtenir les glandes nécessaires à des études ultérieures.
La dissection précise et l'isolement des cellules secondaires de la glande accessoire mâle de Drosophila permettent un profilage transcriptomique de haute fidélité dans un modèle génétiquement manipulable. Ce protocole soutient la validation précoce de cibles et la réduction des risques mécanistiques dans la recherche en biologie de la reproduction et sur les voies de sécrétion. La reproductibilité et la spécificité cellulaire de cette méthode renforcent la confiance prédictive pour les applications fonctionnelles en génomique et en criblage.
Ce protocole de dissection et d'isolement s'inscrit à l'interface entre la découverte précoce et l'identification de candidats, permettant des analyses robustes spécifiques à chaque type cellulaire qui orientent la sélection des cibles et les études mécanistiques.
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Dernière mise à jour : 29 août 2026