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- Pour commencer, commencez par déshydrater et sécher un échantillon fixe afin de réduire la distorsion de l’échantillon causée par l’élimination des gaz et de l’eau liquide à la pression de fonctionnement réduite des microscopes électroniques à balayage conventionnels, MEB.
Pour déshydrater l’échantillon, lavez-le avec des concentrations croissantes d’éthanol dans l’eau jusqu’à ce que 100 % d’éthanol soit atteint. Répétez ensuite ce processus avec un agent de séchage chimique dans de l’éthanol jusqu’à ce que l’échantillon soit lavé avec un agent de séchage pur. Transférez l’échantillon et le sécheur dans un plat d’évaporation. Couvrez-le d’un minimum d’agent de séchage supplémentaire et laissez-le sécher dans une hotte pendant la nuit.
Ensuite, montez l’échantillon préparé sur le dessus d’un talon de microscope à l’aide de ruban adhésif en carbone. Enfin, appliquez de la peinture argentée sur les bords du talon, puis du bord du talon sur chacun des échantillons, afin de réduire l’accumulation d’électrons en excès, ce qui pourrait entraîner des artefacts d’image indésirables.
Dans cette expérience, des mouches des fruits, Drosophila melanogaster, sont préparées pour l’analyse MEB à l’aide de l’agent de séchage HMDS.
- Pour préparer Drosophila melanogaster, plongez les mouches anesthésiées dans 1 millilitre de fixitif pendant 2 heures à 4 degrés Celsius, en vous assurant qu’elles sont complètement immergées.
Utilisez une pipette en verre pour retirer le fixitif. Lavez l’échantillon fixé de drosophile dans un tube de microcentrifugation de 1,5 millilitre trois fois avec 1 millilitre de tampon phosphate 0,1 molaire pH 7,2 à température ambiante pendant 10 minutes. Utilisez une pipette en verre pour retirer chaque lavage, en prenant soin de ne pas retirer l’échantillon.
Ensuite, déshydratez l’échantillon dans un tube microfuge, dans un volume de 1 millilitre, en utilisant une série d’éthanol graduée pendant 10 minutes chacune. Utilisez une pipette en verre pour retirer chaque lavage, en prenant soin de ne pas retirer l’échantillon. Conservez l’échantillon dans le tube de microcentrifugation de 1,5 millilitre avec juste assez d’éthanol à 100 % pour le couvrir.
Pour effectuer le séchage chimique des mouches à l’aide de HMDS, remplacez d’abord la solution d’éthanol à 100 % par une solution 1 à 2 de HMDS et d’éthanol à 100 % pendant 20 minutes. Remplacez ensuite la solution par une solution 2 pour 1 de HMDS et d’éthanol à 100 % pendant 20 minutes. Enfin, remplacez cette solution par 100 % HMDS pendant 20 minutes, puis répétez le processus une fois.
Transférez l’échantillon, qui se trouve dans un tube de microcentrifugation de 1,5 millilitre et un HMDS, dans un plat de pesée en aluminium jetable. Remplacez le HMDS 100 % par juste assez de HMDS 100 % frais pour couvrir l’échantillon. Placez l’échantillon dans la boîte en aluminium directement dans une hotte chimique pour le sécher avec un couvercle amovible, tel qu’une boîte, pour éviter que des débris ne tombent sur l’échantillon, et laissez-le sécher pendant 12 à 24 heures.
Pour monter la drosophile, étiquetez le bas d’un embout de montage en aluminium. À l’aide d’une pince à épiler de précision, placez les mouches séchées dans la position souhaitée sur une languette adhésive en carbone fixée au sommet d’un talon sous un microscope à dissection. Appliquez un adhésif conducteur d’argent sur les bords extérieurs des stubbs.
Utilisez un cure-dent pour connecter la peinture argentée aux mouches, en assurant la conductivité, en vous assurant que la peinture ne touche pas la zone d’imagerie souhaitée. Placez les talons dans une boîte porte-talons. Ensuite, placez la boîte de porte-embout ouverte dans un dessiccateur et laissez la peinture argentée sécher pendant au moins trois heures.