JoVE Encyclopedia of Experiments
Biologie
0 vues • 3:16 min • April 30th, 2023
- Pour orienter une larve en vue de la dissection du filet, placez-la dans un plat recouvert de silicone contenant une solution saline froide et identifiez ses faces dorsale et ventrale. Des tubes trachéaux qui s’étendent sur toute sa longueur marquent la face dorsale, tandis que des ceintures de denticules abdominaux identifient la face ventrale.
Ensuite, avec le côté ventral vers le haut, étirez doucement la larve et épinglez chaque extrémité au fond du plat. Cette position maintiendra intacts les amas dorsaux de neurones sensoriels multi-dendritiques et les cellules épidermiques associées au fur et à mesure que la dissection se poursuit.
Utilisez des ciseaux de dissection pour couper le long de la ligne médiane ventrale de la larve. Épinglez la cuticule sur la plaque pour aplatir la préparation et retirez les structures internes pour révéler le tissu musculaire sous-jacent. Ensuite, retirez soigneusement le muscle approprié pour exposer l’épiderme et accéder aux neurones préalablement obscurcis tout en préservant leur morphologie dendritique.
Dans l’exemple de protocole, nous verrons une démonstration détaillée de la préparation du filet larvaire et de l’ablation musculaire pour voir les neurones da sensoriels et les cellules épidermiques.
- Pour commencer, ajoutez suffisamment de solution saline froide dans un plat en élastomère de silicone pour couvrir la surface inférieure. Ajoutez la larve du sujet dans la boîte et placez-la sous le stéréomicroscope, en veillant à ce que la lumière soit correctement placée. Positionnez la larve avec le côté ventral vers le haut, qui peut être identifié par les ceintures denticulaires abdominales.
Étirez la larve dans le sens antéro-postérieur et, à l’aide d’épingles à insectes, épinglez la tête et la queue au fond du plat. À l’aide d’une paire de ciseaux de dissection fins, coupez le long de la ligne médiane ventrale de la larve d’un bout à l’autre. Écartez la larve et épinglez le tissu de la cuticule aux quatre coins pour qu’elle repose à plat.
À l’aide d’une pince, retirez les organes internes, y compris le SNC, l’intestin et la trachée. Ajustez les épingles à insectes de manière à ce que le filet soit tendu, mais pas étiré au maximum.
Localisez la ligne médiane dorsale de la larve, où le tissu musculaire est absent, puis placez une griffe de pince à l’intérieur de cette limite. Glissez la broche entre le muscle et l’épiderme en prenant soin de minimiser le contact avec l’épiderme.
- Pour minimiser les dommages à l’épiderme, disséquez avec les dents les plus plates possibles. Et essayez de disséquer dans une solution saline contenant du calcium. Cela pourrait aider à créer de l’espace entre le muscle et l’épiderme.
- Ensuite, tirez la pince vers le haut pour briser l’attache du muscle à la paroi du corps à un point d’ancrage. Répétez ce processus pour les segments musculaires d’intérêt restants.
Réajustez les enclos à insectes pour étirer au maximum le filet larvaire dans toutes les directions.
Cet article décrit un protocole de dissection en filet de larve afin de mettre à jour les neurones sensoriels et les cellules épidermiques. La méthode met l'accent sur une manipulation minutieuse afin de préserver la morphologie neuronale tout en éliminant le tissu musculaire.
Cette méthode permet une visualisation de haute fidélité des neurones sensoriels et des cellules épidermiques associées en éliminant les tissus musculaires gênants tout en préservant la morphologie délicate des dendrites. Pour la recherche et le développement en biopharmacie, de telles préparations soutiennent la validation de cibles en neurobiologie en fournissant un système pertinent pour étudier les relations structure-fonction neuronales. L'approche améliore la confiance prédictive en phase précoce de découverte en réduisant l'ambiguïté mécanistique dans l'analyse des voies sensorielles.
La préparation de lamelle larvaire s'inscrit dans le continuum de découverte allant de la génération d'hypothèses ciblées au développement de tests et à la validation préclinique, permettant spécifiquement la visualisation de neurones sensoriels dans un contexte épidermique proche de l'état natif.
Vidéos connexes
0 Vues
Vidéos connexes
0 Vues
Vidéos connexes
0 Vues
Vidéos connexes
0 Vues
Vidéos connexes
0 Vues
Vidéos connexes
0 Vues
Vidéos connexes
0 Vues
Vidéos connexes
0 Vues
Vidéos connexes
0 Vues
Vidéos connexes
0 Vues
Dernière mise à jour : 22 août 2026